Name: 核糖体剖面对芽殖酵母中翻译的全基因组定量 (视频) | JoVE Journal
Uploaded: 2017-12-21T14:00:00.000+00:00
Duration: 12 min 57 s
Description: 学习核糖体剖面技术以定量分析酿酒酵母全基因组翻译水平，识别mRNA翻译区域并研究翻译调控机制。该方法具有高灵敏度，可应用于其他模式生物。

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本研究工作由美国国立卫生研究院基金 AG040191 和 AG054566&#160;资助 VML。该研究是在VML获得美国老化研究联合会（AFAR）研究基金期间开展的。

1. 提取物制备
<ol>
	<li>从冷冻保存的菌种中在YPD平板（1%酵母提取物、2%蛋白胨、2%葡萄糖和2%琼脂）上划线分离酵母菌株以获得单菌落。在30 °C下培养2天。</li>
	<li>从YPD平板上挑取单菌落接种于50 mL锥形离心管中的15 mL YPD培养基（1%酵母提取物、2%蛋白胨、2%葡萄糖），在30 °C下振荡培养过夜（200–250 rpm）。</li>
	<li>将过夜培养物转接至2 L无菌烧瓶中的500 mL YPD培养基中，使初始OD600 &#60; 0.1。在30 °C下振荡培养3–5小时，直至OD600 = 0.5（对数生长中期）。</li>
	<li>使用玻璃滤器装置通过0.45 μm膜滤器过滤收集细胞。用刮刀刮下菌体沉淀，液氮速冻后于-80 °C保存。预期冷冻菌体沉淀量约为0.2–0.5 g。 
	注意：液氮温度极低，操作时需佩戴适当防护装备。</li>
	<li>使用前立即配制新鲜裂解缓冲液（20 mM Tris-HCl pH 8.0、140 mM KCl、5 mM MgCl2、100 μg/mL环己酰亚胺、0.5 mM DTT、1% Triton X-100），并置于冰上保存。</li>
	<li>向1.8 mL不锈钢研磨管中加入3颗铬钢珠（3.2 mm），在液氮中预冷后加入冷冻菌体沉淀，并用硅胶塞密封。以4200 rpm进行冷冻研磨，每次10秒，重复10次。每轮研磨之间将管子在液氮中冷却至少10秒。 
	注意：务必始终保持样品处于冷冻状态。</li>
	<li>加入1 mL裂解缓冲液，用移液器充分混匀。转移至新的1.5 mL离心管中。</li>
	<li>在4 °C下以20,000 × g离心5分钟，于冰上操作，将上清液转移至新的1.5 mL离心管中。取100 μL裂解液转移至另一新的1.5 mL离心管中用于poly(A) mRNA的分离。立即进行RNA提取，或在液氮中速冻保存。测定剩余裂解液的OD260值（用于后续核糖体印迹提取），并在液氮中速冻后于-80 °C保存裂解液。</li>
</ol>
2. 足迹提取
<ol>
	<li>蔗糖梯度的制备
	<ol>
		<li>配制50%、40%、30%、20%和10%的蔗糖溶液，溶剂为梯度缓冲液（20 mM Tris-HCl pH 8.0，140 mM KCl，5 mM MgCl₂）2100 μg/mL 放线菌酮，0.5 mM DTT</li>
		<li>将2.2 mL已配制的50%蔗糖缓冲液用移液器加入13.2 mL薄壁聚丙烯管底部，于-80 °C冷冻10分钟图2然后将2.2 mL的40%蔗糖缓冲液覆盖在已冷冻的50%蔗糖缓冲液上，于-80 °C冷冻10分钟。按照相同操作，依次叠加30%、20%和10%的蔗糖缓冲液。在叠加过程中避免产生气泡。将蔗糖梯度保存在-80 °C直至使用。蔗糖梯度液应至少在实验前一天制备，并储存在-80 °C。</li>
	</ol>
	</li>
	<li>核酸酶消化
	<ol>
		<li>实验前一晚在 4 °C 下解冻蔗糖梯度。</li>
		<li>在冰上解冻细胞裂解液（足迹样本）。转移含有50 OD的细胞裂解液等分试样260&#160;将单位转移至新的1.5 mL离心管中，并加入新鲜裂解缓冲液至1 mL。将剩余裂解物于-80 °C保存。加入10 μL RNase I（100 U/μL），在室温下于翻转式旋转仪上轻柔旋转孵育1小时。</li>
		<li>（可选）在 4 °C 条件下以 20,000 × g 离心 5 分钟澄清样品，并将上清液转移至新的 1.5 mL 离心管中。</li>
	</ol>
	</li>
	<li>超速离心
	<ol>
		<li>将裂解样品轻轻铺加到10-50%蔗糖梯度的顶部。</li>
		<li>使用SW-41 Ti转子在4 °C下以210,000 × g（35,000 rpm）超速离心聚丙烯管3小时。</li>
	</ol>
	</li>
	<li>梯度分馏系统设置
	<ol>
		<li>打开组件，让紫外监测器预热至少30分钟。</li>
		<li>如果使用数字记录软件，启动计算机上的软件，并将图表的缩放范围设置为 -0.01 和 1。</li>
		<li>用Chase溶液（20 mM Tris-HCl pH 8.0，140 mM KCl，5 mM MgCl₂）填充注射器2，60% 蔗糖），去除注射器和套管内的任何气泡。</li>
		<li>安装装有无RNase水的超速离心管。用套管穿刺管壁，直至看到两个黑色标记。以1 mL/min的流速启动注射泵。</li>
		<li>当水流经流过池时，按压 &#34;自动归零&#34; 按下紫外监测仪上的按钮，将基线调整至0。将紫外监测仪的灵敏度设置为 &#34;2.0 AU&#34;在建立稳定的基线后，停止注射泵。回收追迹溶液，并取出超速离心管。</li>
	</ol>
	</li>
	<li>单核糖体分离
	<ol>
		<li>安装并穿刺含有蔗糖梯度的超速离心管。以1 mL/min启动注射泵，收集1 mL馏分并监测A254 值。将代表80S单体峰的组分合并至一个离心管中，置于冰上（图3).</li>
		<li>当Chase溶液到达流路池时，停止注射泵。回收Chase溶液并移除超速离心管。从步骤2.5.1开始，对剩余样品重复分级分离操作。 
		注意：实验结束后，使用至少 30 mL 无 RNase 水清洗分级分离系统。用温水彻底冲洗管路、注射器及所有可拆卸部件。</li>
		<li>使用 0.5 mL 离心滤器（100 kDa 截留分子量）在 4 °C 条件下以 12,000 × g 离心 10 分钟过滤各组分，弃去滤过液，重复操作直至体积小于 &#60; 100 μL。加入400 μL洗脱缓冲液（20 mM Tris-HCl pH 7.0，2 mM EDTA，40 U/mL RNase抑制剂），用移液器吹打混匀，冰上孵育10分钟，将装置转移至新的收集管中。在4 °C下以12,000 × g离心10分钟，收集穿流液。</li>
	</ol>
	</li>
	<li>足迹片段纯化
	<ol>
		<li>将含有足迹RNA片段的流穿液转移至新的1.5 mL离心管中，加入20 μL 20% SDS（终浓度为1%），用移液器吹打混匀。</li>
		<li>加入等体积酸性酚-氯仿（pH 4.5），涡旋振荡10秒。 
		注意：酸性酚-氯仿具有毒性，避免接触皮肤和吸入。</li>
		<li>65 °C 加热 5 分钟，冰上放置 1 分钟。在 4 °C 条件下以 12,000 x g 离心 5 分钟，将上层水相转移至新的 1.5 mL 离心管中。</li>
		<li>加入1/10体积的醋酸钠（NaOAc，pH 5.5）、1/100体积的糖原（10 mg/mL）和2.5体积的100%乙醇，沉淀足迹RNA片段。在-20 °C孵育至少1小时。</li>
	</ol>
	</li>
</ol>
3. 聚腺苷酸 mRNA 提取
<ol>
	<li>总RNA提取
	<ol>
		<li>将100 μL细胞裂解液（总RNA样品）在冰上解冻，加入300 μL 20 mM Tris-HCl（pH 7.0）和20 μL 20% SDS（终浓度为1%），用移液器吹打混匀。</li>
		<li>加入1体积（400 μL）酸性酚:氯仿（pH 4.5），涡旋振荡10秒。</li>
		<li>65 °C加热5分钟，冰上放置1分钟。在4 °C下以12,000 x g离心5分钟，转移上层水相至新的1.5 mL离心管中。</li>
		<li>进行第二次酚抽提。加入1体积酸性酚:氯仿（pH 4.5），涡旋振荡10秒；65 °C加热5分钟，冰上放置1分钟。在4 °C下以12,000 x g离心5分钟，将上层水相转移至新的1.5 mL离心管中。</li>
		<li>沉淀RNA：加入1/10体积3 M NaOAc（pH 5.5）、1/100体积糖原（10 mg/mL）和2.5体积100%乙醇。在-20 °C孵育至少1小时。</li>
	</ol>
	</li>
	<li>多聚(A) mRNA分离
	<ol>
		<li>在4 °C下以20,000 x g离心RNA样品30分钟，去除乙醇。最大转速短暂离心30秒，用加样枪头吸除残余乙醇，将沉淀在空气中干燥5分钟。</li>
		<li>将沉淀溶解于300 μL多聚(A) mRNA分离试剂盒中的裂解/结合缓冲液中。按照多聚(A) mRNA分离试剂盒制造商的操作说明进行多聚(A) mRNA提取。</li>
		<li>通过加入1/10体积3 M NaOAc（pH 5.5）、1/100体积糖原（10 mg/mL）和2.5体积100%乙醇沉淀mRNA样品。在-20 °C孵育至少1小时。</li>
	</ol>
	</li>
	<li>mRNA片段化
	<ol>
		<li>在4 °C下以20,000 x g离心mRNA样品30分钟，去除乙醇。短暂离心30秒，用加样枪头吸除残余乙醇，将沉淀在空气中干燥5分钟。</li>
		<li>将mRNA重悬于18 μL无RNase的水中，加入2 μL 10× RNA片段化缓冲液。在94°C孵育5分钟。将离心管转移至冰上冷却。</li>
		<li>通过加入1/10体积3 M NaOAc（pH 5.5）、1/100体积糖原（10 mg/mL）和2.5体积100%乙醇进行沉淀。在-20 °C孵育至少1小时。</li>
	</ol>
	</li>
</ol>
4. 去磷酸化
<ol>
	<li>用T4多核苷酸激酶处理足迹（Footprint）和片段化mRNA样品。具体操作为：将样品在4 °C下以20,000 × g离心30分钟，去除乙醇；再以最大转速离心30秒，用加样枪头吸除残留乙醇；将沉淀在空气中干燥5分钟。</li>
	<li>将沉淀重悬于7.75 µL水中，加入1 µL 10× T4多核苷酸激酶缓冲液、1 µL T4多核苷酸激酶（10,000 U/mL）和0.25 µL RNase抑制剂（20 U/µL），在37 °C孵育1小时。</li>
	<li>（可选）使用1× TBE缓冲液，在180 V条件下预电泳15% TBE-尿素凝胶15分钟。</li>
	<li>向每份足迹（Footprint）和mRNA样品各取10 µL，加入10 µL 2× TBE-尿素上样缓冲液。为足迹样品准备对照：包含1 µL 10 µM上端大小标记寡核苷酸（32 nt）、1 µL 10 µM下端大小标记寡核苷酸（28 nt）、8 µL水和10 µL 2× TBE-尿素上样缓冲液。为mRNA样品准备对照：包含1 µL 10 µM RNA大小标记寡核苷酸（63 nt）、9 µL水和10 µL 2× TBE-尿素上样缓冲液。</li>
	<li>将样品和对照在75 °C孵育3分钟，短暂离心后置于冰上1分钟。将每个样品分别上样至15% TBE-尿素凝胶的两个加样孔中，在180 V条件下进行凝胶电泳分离RNA片段，持续1小时。</li>
	<li>用核酸凝胶染料（按10,000倍稀释于水中）染色5分钟，并避光保存。</li>
	<li>在蓝光透射仪下，使用洁净的剃须刀片切取足迹样品中位于28 nt与32 nt标记之间的正确条带（图4A），以及mRNA样品中约50–70 nt范围内的条带（图4B）。将切下的聚丙烯酰胺凝胶条带于-80 °C冷冻至少10分钟。</li>
	<li>按以下步骤从聚丙烯酰胺凝胶中提取RNA：将凝胶条带在70 °C加热2分钟，使用一次性研磨棒充分研磨；加入300 µL洗脱缓冲液（20 mM Tris-HCl pH 7.0，2 mM EDTA）洗脱RNA，再加入1 µL RNase抑制剂（20 U/µL），于37 °C孵育3小时。</li>
	<li>将样品在4 °C下以12,000 × g离心5分钟，收集上清液，加入1/10体积的乙酸钠（NaOAc，pH 5.5）、1/100体积的糖原（10 mg/mL）和2.5体积的100%乙醇进行沉淀，在-20 °C孵育至少1小时。</li>
</ol>
5. 3'-接头连接
<ol>
	<li>在 4 °C 条件下，以 20,000 × g 离心 Footprint 和 mRNA 样品 30 分钟，去除乙醇。以最大转速离心 30 秒，用加样枪头吸除残留乙醇，沉淀在空气中干燥 10 分钟。</li>
	<li>将沉淀重悬于 4.75 µL 无核酸酶水、2 µL 50% PEG8000、1 µL 10× T4 RNA 连接酶缓冲液、1 µL 3'-接头（100 ng/µL）、0.25 µL RNase 抑制剂（20 U/µL）和 1 µL T4 RNA 连接酶 2 截短型 KQ（200,000 U/mL）中，16 °C 过夜孵育。</li>
	<li>次日早晨，向连接反应体系中直接加入 0.5 µL 5'-脱腺苷酸酶（10 U/µL）和 0.5 µL Rec J 核酸外切酶（10 U/µL），以去除过量接头。30 °C 孵育 30 分钟。</li>
	<li>对样品进行沉淀处理：加入 30 µL 无核酸酶水、1 µL 糖原（10 mg/mL）、1/10 体积的乙酸钠（NaOAc，pH 5.5）和 2.5 体积的 100% 乙醇，-20 °C 孵育至少 1 小时。</li>
</ol>
6. 逆转录
<ol>
	<li>在 4 °C 条件下，以 20,000 × g 离心样品 30 分钟，去除乙醇。以最大转速短暂离心 30 秒，用加样枪头吸除残留乙醇。将沉淀在空气中干燥 10 分钟。</li>
	<li>将沉淀重悬于 11.5 µL 无核酸酶水中，加入 0.5 µL 8 µM 的逆转录引物（RT 引物）和 1 µL dNTP 混合液（10 mM）。在 65 °C 下孵育 5 分钟，然后置于冰上。</li>
	<li>加入 4 µL 5× 第一链缓冲液、2 µL 0.1 M DTT、0.5 µL RNase 抑制剂（20 U/µL）和 0.5 µL 逆转录酶（200 U/µL）。在 48 °C 下孵育 30 分钟，随后在 65 °C 下孵育 1 分钟，在 80 °C 下孵育 5 分钟。</li>
	<li>无需沉淀，立即进行 RNA 水解：加入 0.8 µL 2 M NaOH，于 98 °C 孵育 30 分钟。加入 0.8 µL 2 M HCl 以中和反应体系。</li>
	<li>对样品进行沉淀处理：加入 20 µL 无核酸酶水、1 µL 甘油（10 mg/mL）、1/10 体积的 NaOAc（pH 5.5）和 2.5 倍体积的 100% 乙醇。在 -20 °C 下孵育至少 1 小时。</li>
	<li>在 4 °C 条件下，以 20,000 × g 离心样品 30 分钟，去除乙醇。以最大转速短暂离心 30 秒，用加样枪头吸除残留乙醇。将沉淀在空气中干燥 10 分钟。</li>
	<li>将沉淀重悬于 5 µL 无核酸酶水中，加入 5 µL 2× TBE-尿素上样缓冲液。在 75 °C 下孵育 3 分钟，短暂离心后置于冰上 1 分钟。</li>
	<li>（可选）使用 1× TBE 缓冲液，在 180 V 条件下预电泳 10% TBE-尿素凝胶 15 分钟。</li>
	<li>将样品上样至 10% TBE-尿素凝胶的一个泳道中。在 180 V 条件下进行凝胶电泳分离逆转录反应产物，持续 50 分钟。作为对照，制备一份包含 1 µL 2.5 µM RT 引物、1 µL 2.5 µM 128 nt 标记寡核苷酸、3 µL 水和 5 µL 2× TBE-尿素上样缓冲液的样品，并上样至凝胶的另一独立泳道中运行。</li>
	<li>用核酸染料（以水稀释 10,000 倍）染色凝胶 5 分钟，避光操作。使用蓝光透射仪，用洁净的剃刀切下约 128 nt 及以上大小的条带（图 5）。将聚丙烯酰胺凝胶碎片在 -80 °C 冷冻至少 10 分钟。</li>
	<li>将凝胶碎片在 70 °C 加热 2 分钟，使用一次性研磨棒研磨。加入 300 µL 20 mM Tris-HCl（pH 7.0）溶液洗脱 DNA，并在 37 °C 下孵育 3 小时。</li>
	<li>在 4 °C 条件下，以 12,000 × g 离心样品 5 分钟，收集上清液，并通过加入 1/10 体积的 NaOAc（pH 5.5）、1/100 体积的甘油（10 mg/mL）和 2.5 倍体积的 100% 乙醇进行沉淀。在 -20 °C 下孵育至少 1 小时。</li>
</ol>
7. 环化
<ol>
	<li>在 4 °C 条件下，以 20,000 × g 离心样品 30 分钟，去除乙醇。以最大转速离心 30 秒，用加样枪头吸除残留乙醇，将沉淀在空气中干燥 10 分钟。</li>
	<li>将沉淀重悬于 16.75 µL 无核酸酶水中。加入 2 µL 10× 单链 DNA（ssDNA）连接酶缓冲液、1 µL 50 mM MnCl2 和 0.25 µL ssDNA 连接酶（100 U/µL）。在 60 °C 下孵育 1 小时，然后在 80 °C 下孵育 10 分钟。无需沉淀，将单链 DNA 连接反应产物储存于 -20 °C。</li>
</ol>
8. PCR文库扩增
<ol>
	<li>在冰上操作，于PCR管中混合以下组分：146 µL无核酸酶水、2 µL 20 µM正向引物、2 µL 20 µM带索引的反向引物、40 µL 5x高保真DNA聚合酶缓冲液、4 µL dNTPs（10 mM）、4 µL单链DNA连接反应产物，以及2 µL高保真DNA聚合酶。对于每个将进行测序文库合并（multiplexing）的样本，选择不同的带索引反向引物。将50 µL PCR混合液分装至4个新的PCR管中。</li>
	<li>使用以下程序，以不同循环数（8、10、12、14）进行PCR扩增： 
	98 °C预变性1分钟 
	8至14个循环： 
	94 °C变性15秒 
	55 °C退火5秒 
	65 °C延伸10秒 
	65 °C终末延伸2分钟</li>
	<li>通过加入1/10体积的3 M NaOAc（pH 5.5）、1/100体积的糖原（10 mg/mL）和2.5体积的100%乙醇，沉淀PCR产物。于-20 °C孵育至少1小时。</li>
	<li>在4 °C条件下以20,000 × g离心30分钟，弃去乙醇。以最大转速离心30秒，用加样枪头吸除残留乙醇，将沉淀空气干燥。</li>
	<li>将沉淀重悬于8 µL无核酸酶水中，加入2 µL非变性5x核酸上样缓冲液。将样品上样至非变性8% TBE凝胶的一个加样孔中。在150 V电压下电泳35分钟以分离DNA产物。作为对照，制备一个包含0.5 µL 10 bp DNA Ladder（1 µg/µL）、7.5 µL水和2 µL非变性5x核酸上样缓冲液的样品，并上样至凝胶的另一泳道中运行。</li>
	<li>用核酸染料染色凝胶5分钟（以水稀释10,000倍），避光操作。使用蓝光透射仪，用洁净的剃须刀片切下约150 bp处的条带（用于footprint样品）和约180 bp处的条带（用于mRNA样品）（图6）。将凝胶片段于-80 °C保存至少10分钟。</li>
	<li>将凝胶片段在70 °C加热2分钟，使用一次性研磨杵充分研碎。加入300 µL 20 mM Tris-HCl（pH 7.0）洗脱DNA，并在37 °C孵育3小时。</li>
	<li>在4 °C条件下以12,000 × g离心5分钟，收集上清液，并通过加入1/10体积NaOAc（pH 5.5）、1/100体积糖原（10 mg/mL）和2.5体积100%乙醇进行沉淀。于-20 °C孵育至少1小时。</li>
	<li>在4 °C条件下以20,000 × g离心30分钟，弃去乙醇。以最大转速离心30秒，用加样枪头吸除残留乙醇，将沉淀空气干燥。最后，将文库重悬于20 µL无核酸酶水中，并进行定量、质量控制及测序。</li>
</ol>
9. 文库定量与高通量测序
<ol>
	<li>在将样品送测序之前，需确定PCR扩增文库的产量和质量。足迹图谱（Footprint）和mRNA测序文库的代表性图谱如图7所示。Footprint样品的PCR扩增文库预期大小为148–152 bp，mRNA样品为170–190 bp。</li>
	<li>若多个带有不同条形码的样品将被混合后进行测序，请使用基于qPCR的测序文库定量检测方法对文库进行准确定量。</li>
	<li>以等摩尔比例混合文库。将混合文库的总体积计算为3 µL × 需混合的样品总数。计算每种文库需加入的体积，使各文库以等摩尔比例混合，最终达到10 nM的混合文库浓度。将计算好的各文库体积加入一个新的1.5 mL离心管中，用移液器吹打混匀。加水至计算所得的总体积。将混合后的文库储存于-20 °C。</li>
	<li>取部分混合文库，使用Illumina测序平台进行50 bp单端测序。我们通常在一个测序运行中 multiplex（多重混合）12个样品，每个测序通道可获得约2亿条reads。 
	注意：每个样品最终获得的足迹图谱reads数量取决于起始材料的量以及rRNA污染的程度。</li>
</ol>

<ol><li>Holcik, M., Sonenberg, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Translational+control+in+stress+and+apoptosis%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Rev+Mol+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Translational control in stress and apoptosis.</a> Nat Rev Mol Cell Biol. 6 (4), 318-327 (2005).</li>
<li>Tanenbaum, M. E., Stern-Ginossar, N., Weissman, J. S., Vale, R. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Regulation+of+mRNA+translation+during+mitosis%5BTitle%5D)+AND+%22Elife%22%5BJournal%5D)">Regulation of mRNA translation during mitosis.</a> Elife. 4, (2015).</li>
<li>Ingolia, N. T., Ghaemmaghami, S., Newman, J. R., Weissman, J. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Genome-wide+analysis+in+vivo+of+translation+with+nucleotide+resolution+using+ribosome+profiling%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Genome-wide analysis in vivo of translation with nucleotide resolution using ribosome profiling.</a> Science. 324 (5924), 218-223 (2009).</li>
<li>Ingolia, N. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Genome-wide+translational+profiling+by+ribosome+footprinting%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+Enzymol%22%5BJournal%5D)">Genome-wide translational profiling by ribosome footprinting.</a> Methods Enzymol. 470, 119-142 (2010).</li>
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<li>Wolin, S. L., Walter, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ribosome+pausing+and+stacking+during+translation+of+a+eukaryotic+mRNA%5BTitle%5D)+AND+%22EMBO+J%22%5BJournal%5D)">Ribosome pausing and stacking during translation of a eukaryotic mRNA.</a> EMBO J. 7 (11), 3559-3569 (1988).</li>
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<li>Guydosh, N. R., Green, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dom34+rescues+ribosomes+in+3%27+untranslated+regions%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Dom34 rescues ribosomes in 3' untranslated regions.</a> Cell. 156 (5), 950-962 (2014).</li>
<li>Ingolia, N. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ribosome+profiling%3A+new+views+of+translation%2C+from+single+codons+to+genome+scale%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Rev+Genet%22%5BJournal%5D)">Ribosome profiling: new views of translation, from single codons to genome scale.</a> Nat Rev Genet. 15 (3), 205-213 (2014).</li>
<li>Gerashchenko, M. V., Lobanov, A. V., Gladyshev, V. N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Genome-wide+ribosome+profiling+reveals+complex+translational+regulation+in+response+to+oxidative+stress%5BTitle%5D)+AND+%22Proc+Natl+Acad+Sci+U+S+A%22%5BJournal%5D)">Genome-wide ribosome profiling reveals complex translational regulation in response to oxidative stress.</a> Proc Natl Acad Sci U S A. 109 (43), 17394-17399 (2012).</li>
<li>Weinberg, D. E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Improved+ribosome-footprint+and+mRNA+measurements+provide+insights+into+dynamics+and+regulation+of+yeast+translation%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Rep%22%5BJournal%5D)">Improved ribosome-footprint and mRNA measurements provide insights into dynamics and regulation of yeast translation.</a> Cell Rep. 14 (7), 1787-1799 (2016).</li>
<li>Park, J. E., Yi, H., Kim, Y., Chang, H., Kim, V. N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Regulation+of+poly%28A%29+tail+and+translation+during+the+somatic+cell+cycle%5BTitle%5D)+AND+%22Mol+Cell%22%5BJournal%5D)">Regulation of poly(A) tail and translation during the somatic cell cycle.</a> Mol Cell. 62 (3), 462-471 (2016).</li>
<li>Howard, M. T., Carlson, B. A., Anderson, C. B., Hatfield, D. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Translational+redefinition+of+UGA+codons+is+regulated+by+selenium+availability%5BTitle%5D)+AND+%22J+Biol+Chem%22%5BJournal%5D)">Translational redefinition of UGA codons is regulated by selenium availability.</a> J Biol Chem. 288 (27), 19401-19413 (2013).</li>
<li>Gerashchenko, M. V., Gladyshev, V. N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ribonuclease+selection+for+ribosome+profiling%5BTitle%5D)+AND+%22Nucleic+Acids+Res%22%5BJournal%5D)">Ribonuclease selection for ribosome profiling.</a> Nucleic Acids Res. 45 (2), e6(2017).</li>
<li>Gerashchenko, M. V., Gladyshev, V. N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Translation+inhibitors+cause+abnormalities+in+ribosome+profiling+experiments%5BTitle%5D)+AND+%22Nucleic+Acids+Res%22%5BJournal%5D)">Translation inhibitors cause abnormalities in ribosome profiling experiments.</a> Nucleic Acids Res. 42 (17), e134(2014).</li>
<li>O'Connor, P. B., Andreev, D. E., Baranov, P. V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Comparative+survey+of+the+relative+impact+of+mRNA+features+on+local+ribosome+profiling+read+density%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Commun%22%5BJournal%5D)">Comparative survey of the relative impact of mRNA features on local ribosome profiling read density.</a> Nat Commun. 7, 12915(2016).</li>
</ol>

作者声明不存在任何竞争性经济利益。

核糖体谱分析技术（Ribo-Seq）已成为研究mRNA翻译的有力工具 体内 在全基因组水平上 3采用这种方法的研究能够以单密码子分辨率监测翻译过程，增进了我们对翻译调控机制的理解。尽管如此，核糖体谱分析（Ribo-Seq）仍存在若干局限性。在分离核糖体保护片段的过程中，核糖体RNA（rRNA）片段总会伴随共纯化，从而降低Ribo-Seq实验中可获得的有效测序读段的产量。 9,25我们的数据表明，rRNA污染可能占所有测序读长的40-50%图8）。克服这一限制的方法之一是提高测序深度。应进行额外的测序轮次，直至每个分析样本达到所需的测序读数。采用本方案制备的测序文库分析显示，当在Illumina HiSeq 2000平台上进行标准的50 bp单端测序并同时 multiplex 12个样本时，每个足迹文库可获得超过500万条足迹读数。然而，若观察到明显的rRNA污染，可选择性地进行rRNA去除步骤。<...

mRNA 翻译是细胞中的一项基本过程，在蛋白质表达的调控中起着重要作用。因此，mRNA 翻译会针对不同的内外生理刺激受到严格调控1,2。然而，翻译调控的机制仍研究不足。本文中，我们描述了通过核糖体谱分析在芽殖酵母中进行全基因组水平翻译定量的实验方案。核糖体谱分析技术的总体目标是研究并定量特定 mRNA 在不同细胞条件下的翻译情况。该技术利用下一代测序对全基因组范围内的核糖体占据情况进行定量分析，从而以单密码子分辨率在体内监测蛋白质合成速率in vivo3,4。目前，该方法是测量蛋白质翻译水平最先进的手段之一，已被证明是一种有效的发现工具，能够提供其他现有技术（如微阵列或翻译状态阵列分析（TSAA））无法揭示的信息5。由于核糖体谱分析同时反映转录本水平和翻译输出的综合变化，因此相比其他方法具有更高的灵敏度。
该方法基于对核糖体保护的mRNA片段进行深度测序3。在蛋白质翻译过程中，核糖体会保护约28 nt长度的mRNA片段（称为足迹片段）6。通过测定这些受核糖体保护的片段序列，Ribo-Seq可精确定位核糖体在翻译中mRNA上的位置，并识别mRNA中哪些区域可能正在被主动翻译成蛋白质3,7。此外，通过统计比对到特定mRNA转录本的足迹片段数量，我们可对mRNA的翻译水平进行定量测量。
为了分离核糖体保护的片段，首先用翻译抑制剂处理细胞裂解液，使核糖体停滞，随后进行核糖核酸酶消化。游离的mRNA以及未被核糖体保护的mRNA区域会被核糖核酸酶降解，而受核糖体保护的mRNA片段则可通过纯化完整的核糖体足迹复合物得以回收。这些mRNA足迹随后被转化为cDNA文库，并通过深度测序进行分析（图1）。在进行核糖体谱分析的同时，从同一样本中提取完整的mRNA并进行测序。通过将Ribo-Seq检测到的翻译水平与mRNA丰度数据进行比较，可以鉴定在翻译水平上特异性上调或下调的基因，并在全基因组范围内计算mRNA的翻译效率。尽管本文所述方案专用于酵母，但也应适用于&#160;尝试在其他系统中建立Ribo-Seq实验流程的研究人员。

<table><tbody><tr><td>0.45 &amp;mu;M 膜过滤器</td><td>Millipore</td><td>HVLP04700</td><td></td></tr><tr><td>0.5 M EDTA</td><td>Invitrogen</td><td>AM9261</td><td></td></tr><tr><td>0.5 mL 离心过滤器（100 kDa 截留分子量）</td><td>Millipore</td><td>UFC510024</td><td></td></tr><tr><td>1 M Tris-HCl，pH 7.0</td><td>Invitrogen</td><td>AM9850G</td><td></td></tr><tr><td>1 M Tris-HCl，pH 7.5（4&amp;deg;C 时 pH 8.0）</td><td>Invitrogen</td><td>15567-027</td><td></td></tr><tr><td>10X TBE 缓冲液</td><td>Invitrogen</td><td>AM9863</td><td></td></tr><tr><td>10% TBE-尿素凝胶</td><td>Invitrogen</td><td>EC6875BOX</td><td></td></tr><tr><td>15% TBE-尿素凝胶</td><td>Invitrogen</td><td>EC6885BOX</td><td></td></tr><tr><td>2 M MgCl&lt;sub&gt;2&lt;/sub&gt;</td><td>RPI</td><td>M24500-10.0</td><td></td></tr><tr><td>2X TBE-尿素上样缓冲液</td><td>Invitrogen</td><td>LC6876</td><td></td></tr><tr><td>3M NaOAc，pH 5.5</td><td>Invitrogen</td><td>AM9740</td><td></td></tr><tr><td>5' 脱腺苷酸酶（10 U/&amp;mu;L）</td><td>Epicentre</td><td>DA11101K</td><td></td></tr><tr><td>5X 核酸上样缓冲液</td><td>Bio-Rad</td><td>161-0767</td><td></td></tr><tr><td>8% TBE 凝胶</td><td>Invitrogen</td><td>EC6215BOX</td><td></td></tr><tr><td>酸性酚:氯仿，pH 4.5（含 IAA，125:24:1）</td><td>Invitrogen</td><td>AM9722</td><td></td></tr><tr><td>蓝光透射仪</td><td>Clare Chemical Research</td><td>DR-46B</td><td></td></tr><tr><td>铬钢珠，3.2 mm</td><td>BioSpec Products</td><td>11079132c</td><td></td></tr><tr><td>冷冻研磨机</td><td>Biospec product</td><td>3110BX</td><td></td></tr><tr><td>放线菌酮</td><td>RPI</td><td>C81040-5.0</td><td></td></tr><tr><td>数据采集系统</td><td>DATAQ Instruments</td><td>DI-245</td><td></td></tr><tr><td>脱氧核苷三磷酸（dNTP）溶液混合物（10 mM）</td><td>NEB</td><td>N0447L</td><td></td></tr><tr><td>糖原</td><td>Invitrogen</td><td>AM9510</td><td></td></tr><tr><td>梯度分馏系统</td><td>Brandel</td><td>BR-184X</td><td></td></tr><tr><td>高保真 DNA 聚合酶（2,000 U/mL）</td><td>NEB</td><td>M0530S</td><td>随附 5X Phusion HF 缓冲液</td></tr><tr><td>下一代测序文库定量试剂盒</td><td>Kapa Biosystems</td><td>KK4824</td><td></td></tr><tr><td>核酸凝胶染色剂</td><td>Invitrogen</td><td>S11494</td><td></td></tr><tr><td>Optima XE-90 超速离心机</td><td>Beckman Coulter</td><td>A94471</td><td></td></tr><tr><td>聚(A) mRNA 分离试剂盒</td><td>Invitrogen</td><td>61011</td><td></td></tr><tr><td>Rec J 外切核酸酶（10 U/&amp;mu;L）</td><td>Epicentre</td><td>RJ411250</td><td></td></tr><tr><td>逆转录酶（200 U/&amp;mu;L）</td><td>Invitrogen</td><td>18080093</td><td>随附 5X 第一链缓冲液和 0.1 M DTT</td></tr><tr><td>RNA 断裂缓冲液</td><td>NEB</td><td>E6186A</td><td></td></tr><tr><td>RNase I（100 U/&amp;mu;L）</td><td>Invitrogen</td><td>AM2295</td><td></td></tr><tr><td>RNase 抑制剂（20 U/&amp;mu;L）</td><td>Invitrogen</td><td>AM2696</td><td></td></tr><tr><td>硅橡胶帽</td><td>BioSpec Products</td><td>2008</td><td></td></tr><tr><td>单链 DNA 连接酶（100 U/&amp;mu;L）</td><td>Epicentre</td><td>CL9021K</td><td>随附 10X CircLigase II 缓冲液和 50 mM MnCl&lt;sub&gt;2&lt;/sub&gt;</td></tr><tr><td>不锈钢微量管，1.8 mL</td><td>BioSpec Products</td><td>2007</td><td></td></tr><tr><td>蔗糖</td><td>RPI</td><td>S24060-5000.0</td><td></td></tr><tr><td>SW-41 Ti 转子</td><td>Beckman Coulter</td><td>331362</td><td></td></tr><tr><td>注射泵</td><td>New Era Pump Systems</td><td>NE-300</td><td></td></tr><tr><td>T4 多核苷酸激酶（10,000 U/mL）</td><td>NEB</td><td>M0201S</td><td>随附 10X T4 多核苷酸激酶缓冲液</td></tr><tr><td>T4 RNA 连接酶 2 截短型 KQ（200,000 U/mL）</td><td>NEB</td><td>M0373S</td><td>随附 10X T4 RNA 连接酶缓冲液和 50% PEG8000</td></tr><tr><td>PCR 仪</td><td>Bio-Rad</td><td>1851148</td><td></td></tr><tr><td>薄壁聚烯烃管，13.2 mL</td><td>Beckman Coulter</td><td>331372</td><td></td></tr><tr><td>Triton X-100</td><td>Sigma Aldrich</td><td>X100-100ML</td><td></td></tr><tr><td>紫外监测仪</td><td>Bio-Rad</td><td>7318160</td><td></td></tr><tr><td>酿酒酵母菌株 BY4741</td><td>Open Biosystems</td><td>YSC1048</td><td></td></tr></tbody></table>

通过核糖体图谱分析对芽殖酵母进行全基因组翻译定量分析

Genome-wide Quantification of Translation in Budding Yeast by Ribosome Profiling

mRNA翻译成蛋白质是一个涉及多层调控的复杂过程。人们通常认为mRNA转录水平的变化反映了蛋白质合成的变化，但已观察到许多例外情况。近年来，一种称为核糖体谱分析（或Ribo-Seq）的技术 emerged 作为一种强大方法，能够高精度地鉴定mRNA中哪些区域被翻译为蛋白质，并可在全基因组水平上量化翻译过程。本文介绍了一种在芽殖酵母中利用Ribo-Seq进行全基因组翻译定量的通用实验方案。此外，将Ribo-Seq数据与mRNA丰度测量相结合，可使我们在同一样本中同时量化数千个mRNA转录本的翻译效率，并比较这些参数在实验干预或不同生理状态下发生的变化。我们详细描述了通过核酸酶消化生成核糖体足迹、通过蔗糖梯度离心分离完整的核糖体-足迹复合物、以及为深度测序制备DNA文库的完整流程，同时包括确保in vivo翻译准确分析所必需的适当质量控制步骤。

核糖体谱分析数据的生物信息学详细分析流程此前已有描述8,9。此外，多个研究团队已开发出针对核糖体谱分析方法特异性的生物信息学工具，用于差异基因表达分析和测序数据处理10,11,12,13,14,15,16,17,18。Ribo-Seq 数据分析的第一步是使用 ...

转录后调控在控制蛋白质丰度中起着重要作用。本文中，我们描述了一种用于定量分析芽殖酵母 Saccharomyces cerevisiae 翻译水平的高通量方法。

mRNA翻译成蛋白质是一个涉及多层调控的复杂过程。人们通常认为，mRNA转录水平的变化……

本实验的主要目标是鉴定信使RNA（mRNA）中哪些区域被翻译成蛋白质，并在全基因组水平上对酿酒酵母（Saccharomyces cerevisiae）中的蛋白质翻译进行定量测量。核糖体谱分析可用于监测蛋白质合成速率及其在疾病中的变化，也可用于研究翻译调控的分子机制。该技术的主要优势在于，与其他方法相比，其灵敏度显著提高，尤其能够在单核苷酸分辨率下对活体内的蛋白质合成及疾病相关过程进行测量。尽管本实验方案专为芽殖酵母设计，但对于试图在其他模式系统（如哺乳动物细胞和组织）中建立核糖体谱分析的研究人员也同样具有参考价值。提取物将从生长至对数中期的酵母细胞中制备。使用玻璃滤器组件通过0.45 µm膜滤器过滤培养物。用刮勺刮取沉淀，液氮速冻，并于-80摄氏度保存。将三颗直径为3.2毫米的铬钢珠放入1.8毫升不锈钢管中，并将管子在液氮中预冷。加入冷冻的沉淀物，用硅橡胶帽盖住钢管。以4200 rpm的转速进行冷冻研磨10秒以均质化样品。为确保整个研磨过程中样品保持冷冻状态，每次研磨之间必须将离心管置于液氮中预冷至少10秒。均质化完成后，向样品中加入1毫升含有环己酰亚胺的裂解缓冲液。用移液器充分混匀，将样品转移至新的1.5毫升离心管中。在4°C条件下，以20,000 × g离心5分钟。将上清液转移至新的1.5毫升离心管中。取100微升裂解液转移至另一个新的1.5毫升离心管中，用于poly(A)mRNA的分离。将含有mRNA样品的剩余裂解液分装管在液氮中速冻，并于-80摄氏度保存，用于后续的核糖体印迹提取。在进行核糖体印迹提取的前一晚，于4摄氏度条件下解冻先前制备好的蔗糖梯度。次日，将细胞裂解液置于冰上解冻。取含有 50 OD260 单位的细胞裂解液等分试样，转移至新的 1.5 毫升离心管中，加入新鲜裂解缓冲液至总体积为 1 毫升，并加入 10 微升 RNase One。在室温下，使用翻转混匀仪轻柔旋转孵育 1 小时。接下来，将裂解液样品轻轻铺加到聚合物管中10%至50%的蔗糖梯度溶液上方。使用SW41 ti转子，在4°C条件下以35,000 rpm超速离心3小时。在超速离心过程中，设置梯度分馏系统。打开各组件，使紫外监测仪预热至少30分钟。用追加溶液填充注射器，并去除注射器和套管内的所有气泡。超速离心完成后，安装并穿刺含有蔗糖梯度的超速离心管。以每分钟1毫升的流速启动注射泵，同时监测A254值并收集每1毫升的组分。收集代表ADS单体峰的组分并合并。将合并后的组分通过0.5毫升离心过滤器，在4°C、12,000 ×g条件下离心10分钟，弃去滤过液，重复此步骤直至体积小于100 µL。加入400微升洗脱缓冲液，用移液器吹打混匀，冰上孵育10分钟。将套管转移至新的收集管中，在4°C、12,000 × g条件下离心10分钟。收集穿流液。随后，纯化足迹片段，并按照文本方案中所述，采用乙醇沉淀法沉淀样品。开始此实验步骤时，将沉淀的足迹法产物和片段化的 mRNA 样品在 20,000 × g、4 °C 条件下离心 30 分钟。去除乙醇并空气干燥沉淀后，将每个沉淀重悬于 7.75 µL 水中。向每个沉淀中加入 1 µL 10×T4 多核苷酸激酶缓冲液、1 µL T4 多核苷酸激酶和 0.25 µL RNase 抑制剂。在37摄氏度孵育一小时。向每份足迹（footprint）和mRNA样品各取10微升，加入10微升2X TBE尿素上样缓冲液。将样品及相应的对照在75摄氏度孵育三分钟，离心，然后置于冰上一分钟。将每个样品加入到15% TBE尿素凝胶的两个孔中，在180伏电压下进行电泳分离RNA片段，持续1小时。用核酸染料染色凝胶，避光孵育5分钟。在蓝光透射成像仪下观察凝胶时，切下对应于足迹样品28至32个核苷酸之间以及mRNA样品约50至70个核苷酸大小的条带。在从聚丙烯酰胺凝胶中提取 RNA 之前，将切下的聚丙烯酰胺凝胶条置于 -80 摄氏度冷冻至少 10 分钟。在进行逆转录之前，按照文本方案中所述进行 3' 端接头连接，并对样品进行沉淀处理。将每个沉淀物重悬于 11.5 µL 无核酸酶的水中。然后加入0.5 µL的8 µM逆转录引物和1 µL的dNTP混合物。在65 °C孵育5分钟，随后置于冰上。向每个样品中加入4 µL的5×第一链缓冲液、2 µL的0.1 M DTT、0.5 µL RNase抑制剂和0.5 µL逆转录酶。在 48 摄氏度孵育 30 分钟，65 摄氏度孵育 1 分钟，80 摄氏度孵育 5 分钟。立即进行 RNA 水解：向每个样本中加入 0.8 µL 2 M 氢氧化钠，并在 98 摄氏度孵育 30 分钟。加入 0.8 µL 2 M 盐酸以中和反应。按照文本方案中所述沉淀样品后，将每个沉淀物重悬于5 µL无核酸酶水中，并加入5 µL 2×TBE尿素上样缓冲液。在75 °C孵育3分钟，离心收集，冰浴1分钟。将样品上样至10% TBE尿素凝胶的一个加样孔中。将逆转录反应产物通过凝胶电泳分离，180伏特下电泳50分钟。用核酸凝胶染色剂避光染色5分钟。使用蓝光透射仪，切下约128个核苷酸及更大片段的条带。在从聚丙烯酰胺凝胶中提取DNA之前，将聚丙烯酰胺凝胶切片置于-80摄氏度冷冻至少10分钟。为环化DNA，将每个DNA沉淀重悬于16.75 µL无核酸酶的水中。加入2 µL 10×单链DNA连接酶缓冲液、1 µL 50 mM氯化锰和0.25 µL单链DNA连接酶。在60摄氏度孵育1小时，随后在80摄氏度孵育10分钟。单链DNA连接反应产物无需沉淀，于-20摄氏度保存。随后，按照文本方案中所述进行PCR文库扩增，接着进行文库定量和高通量测序。展示了mRNA样本的PCR扩增后足迹文库和测序文库的代表性生物分析仪图谱。足迹文库的预期平均大小为148至152个核苷酸，mRNA文库的预期大小为170至190个核苷酸。该图显示了野生型样本和hbs1缺失突变体两个独立生物学重复实验中获得的mRNA、足迹和rRNA测序读段的总数。在足迹文库中，50%至60%的测序读段对应于核糖体保护的足迹片段。相比之下，在mRNA文库中仅观察到3%的rRNA片段，表明poly(A) mRNA分离可有效去除rRNA读段。足迹文库和mRNA样本文库均表现出良好的重复性，匹配样本间的皮尔逊相关系数约为0.99。将核糖体谱分析与 mRNA 表达量测定相结合，可实现对不同实验条件下翻译效率变化的测量。在 hbs1 缺失突变体中显著上调和下调的基因，根据其是否受到 mRNA 转录、翻译效率变化或共同效应的影响进行分组。掌握该技术后，整个实验方案可在约 11 天内完成。在进行该实验操作时，务必注意佩戴手套，并全程使用无RNase的试剂和耗材，以避免RNase污染，降低样本中RNA降解的风险。观看本视频后，您应能够充分掌握如何通过核酸酶消化生成核糖体保护片段，利用蔗糖梯度离心分离完整的核糖体保护复合物，以及构建用于深度测序的DNA文库。请务必注意，操作液氮具有极高的危险性，在接触极低温物质时，必须采取佩戴护目镜和低温手套等安全防护措施。

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Research

科研

JoVE Journal

Biochemistry

生物化学

核糖体剖面对芽殖酵母中翻译的全基因组定量

本文介绍了一种用于分析真核细胞在应激条件下mRNA翻译起始变化的方法。该方法基于正在翻译的核糖体与非翻译核糖体在蔗糖梯度中沉降速度的差异进行分离。...

应激条件下通过多聚核糖体分析检测翻译起始

核糖体在蛋白质合成中起着核心作用。通过蔗糖密度梯度离心法对多核糖体（多聚体）进行分级分离，可直接在全基因组范围内测定各个mRNA的翻译效率。此外，该方法还可用于对与核糖体和多核糖体相关的分子（如分子伴侣和信号分子）进行生物化学分析。...

多聚核糖体分级分离及哺乳动物转译组的全基因组规模分析

细胞适应应激的能力对其存活至关重要。mRNA 翻译的调控即为一种此类适应策略，可实现对蛋白质组的快速调控。本文提供了一种标准化的多聚体分析流程，用于鉴定在应激条件下被选择性翻译的特定...

通过多聚体图谱分析评估哺乳动物细胞中mRNA的选择性翻译

本文描述了一种用于可视化并定量亚细胞区室中局部翻译事件的方法。该方法仅需基础的共聚焦成像系统及试剂，具有快速、经济高效的特点。...

定量免疫荧光法检测全局限域性翻译

本文所述方案基于对经4-硫尿嘧啶标记的酵母细胞中纯化的新生mRNA进行全基因组水平的定量分析。该方法能够将mRNA合成与mRNA降解过程分离，从而准确测量RNA聚合酶II的转录活性。...

Saccharomyces cerevisiae 中利用 4-硫代尿嘧啶进行代谢标记及新合成 mRNA 的定量作为 RNA 聚合酶 II 活性的替代指标

本文描述了细菌RIBO-seq中样本采集与制备的各个步骤。按照本指南构建文库并进行测序，可获得足够数据用于全面的生物信息学分析。我们所介绍的实验方案简便，仅需使用常规实验室设备，从裂解到获得文库共需七天。...

细菌中的RIBO-seq：用于高通量测序的样品收集与文库构建方案

我们介绍一种利用甲醛交联在活酵母和哺乳动物细胞中快速稳定翻译（蛋白质生物合成）复合物的技术。该方法能够解析瞬时中间产物以及动态的RNA:蛋白质相互作用。交联后的复合物可用于多种下游应用，例如基于深度测序的分析方法、显微镜观察和质谱分析。...

快速 体内 真核细胞中翻译复合物的固定与分离

本实验方案描述了如何在不使用自动梯度生成仪或梯度分段收集系统的情况下，制备多聚核糖体图谱。...

无需梯度混合器或组分分离系统的多聚核糖体分析

共翻译相互作用在新生肽链的修饰、定位、折叠和组装过程中起着关键作用。本文介绍了选择性核糖体谱分析法，这是一种用于在模式真核生物Saccharomyces...

通过选择性核糖体谱分析全局鉴定共翻译相互作用网络

核糖体在翻译过程中以每密码子三个核苷酸的规律解码生成肽链。核糖体沿mRNA移动的过程通过核糖体谱型分析（ribosome...

从头合成 利用核糖体谱分析数据鉴定活跃翻译的开放阅读框

学习核糖体剖面技术以定量分析酿酒酵母全基因组翻译水平，识别mRNA翻译区域并研究翻译调控机制。该方法具有高灵敏度，可应用于其他模式生物。

通过核糖体图谱分析对芽殖酵母进行全基因组翻译定量分析

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