Name: 细胞聚集法评价果蝇切口与反式配体的结合及其对顺式配体的抑制作用 (视频) | JoVE Journal
Uploaded: 2018-01-02T14:00:00.000+00:00
Duration: 5 min 48 s
Description: 学习使用体外细胞聚集法评估果蝇Notch受体与反式配体的结合及其受顺式配体抑制的影响。该方法可排除内源性配体干扰，帮助研究者深入理解Notch信号通路的调控机制。

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作者感谢美国国立卫生研究院/普通医学科学研究所（NIH/NIGMS，项目号 R01GM084135，授予 HJN）和水谷糖科学基金会（Mizutani Foundation for Glycoscience，资助号 #110071，授予 HJN）提供的支持，并感谢 Tom V. Lee 在实验方法方面的讨论和建议，同时感谢 Spyros Artavanis-Tsakonas、Hugo Bellen、Robert Fleming、Ken Irvine 以及果蝇基因组资源中心（Drosophila Genomics Resource Center, DGRC）提供质粒和细胞系。

1. 用于 Shams 基因沉默的双链RNA（dsRNA）的制备
<ol>
	<li>PCR扩增产物
	<ol>
		<li>使用野生型 黄色 白色 (y w基因组DNA和 pAc5.1-EGFP 以该模板和以下引物对扩增用于合成dsRNA的DNA片段。采用以下PCR扩增程序：变性（95 °C，30 s）、退火（58 °C，30 s）和延伸（72 °C，1 min）。 
		增强型绿色荧光蛋白 (EGFP) dsRNA 引物（5'-3'）- 
		上游引物 - GAAATTAATACGACTCACTATAGGGGGTGAGCAAGGGCGAGGAG 
		反向引物- GAAATTAATACGACTCACTATAGGGGGTCTTTGCTCAGGGCGG 
		Shams dsRNA 引物（5'-3'）- 
		上游引物- TTAATACGACTCACTATAGGGGAGATGCTGTATGTGGACACGGAT 
		反向引物- TTAATACGACTCACTATAGGGGAGATCCGTGGATAACCTTAACGA 
		注意： EGFP dsRNA 用作阴性对照。</li>
	</ol>
	</li>
	<li>使用商品化的凝胶回收试剂盒，按照生产商提供的操作说明对聚合酶链式反应（PCR）产物进行凝胶纯化。</li>
	<li>执行 体外 使用商业产品，按照制造商方案，从T7启动子进行转录。</li>
	<li>使用RNA纯化试剂盒，按照生产商说明书纯化双链RNA，并于-80 °C保存。</li>
	<li>评估效率 假手术组 使用以下步骤进行敲低（1.5.1–1.5.5）。
	<ol>
		<li>使用血细胞计数板手动计数细胞，并接种 5 x 105 6 孔板中每孔加入 1 mL Schneider 培养基，培养基中添加 10% 胎牛血清（FBS）和 100 U/mL 青霉素-链霉素，每孔接种 S2 细胞。</li>
		<li>加入 7.5 µg 的 EGFP- 或 假手术组 将dsRNA加入每孔，25 °C孵育24 h。</li>
		<li>收获对照组（EGFP dsRNA处理）和 假手术组 通过轻柔吹打使经dsRNA处理的S2细胞悬浮，随后在25 °C下以1,000 × g离心5分钟收集细胞沉淀，按照试剂盒说明书使用RNA提取试剂盒进行RNA提取。</li>
		<li>使用分光光度计定量RNA，并取100 ng RNA，采用商用qPCR试剂和引物/探针进行一步法qRT-PCR，PCR扩增程序如下：变性（95 °C，15 s）和退火/延伸（60 °C，1 min）。 
		注意：请参见 材料表 有关引物/探针组合及所用仪器的信息 假手术组 以及在这些研究中进行的对照qRT-PCR实验。</li>
		<li>计算相对值 假手术组 使用2的mRNA水平-ΔΔCT 方法16.</li>
	</ol>
	</li>
</ol>
2. Notch 受体与反式配体结合能力的评估
<ol>
	<li>制备信号接收细胞（表达Notch受体的S2细胞）。
	<ol>
		<li>使用血细胞计数板手动计数细胞，并接种 5 x 105 在6孔板的每孔中加入1 mL Schneider培养基，培养基中添加10% FBS和100 U/mL青霉素-链霉素，分别接种S2细胞和稳定的S2-Notch细胞。 
		注意：S2-Notch 细胞可从 果蝇 基因组资源中心（DGRC），在培养基中加入200 nM甲氨蝶呤。配制0.5 mM甲氨蝶呤储备液时，首先将甲氨蝶呤溶于250 µL 1 M NaOH中，配制成20 mM溶液；随后用1 M磷酸盐缓冲液将其稀释至0.5 mM，并于-20 °C保存。在S2-Notch细胞中，Notch蛋白的表达由 果蝇 金属硫蛋白启动子在 pMT 载体</li>
		<li>向每个孔中加入 7.5 µg 的 dsRNA，在 25 °C 下孵育 24 小时。</li>
		<li>加入 0.7 mM CuSO₄4 诱导 Notch 表达，并在 25 °C 下培养 3 天。 
		注意：CuSO4 用于诱导由金属硫蛋白启动子控制的蛋白表达。</li>
	</ol>
	</li>
	<li>准备信号发送细胞（表达 Delta 或 Serrate 配体的 S2 细胞）。
	<ol>
		<li>使用血细胞计数板手动计数细胞，并接种约 5 x 106 稳定的 S2-Delta 或 S2-Serrate汤姆 6 孔板中每孔加入 1 mL 添加 10% FBS 和 100 U/mL 青霉素-链霉素的 Schneider 培养基，接种细胞。 
		注意：S2-Delta 细胞添加 200 nM 甲氨蝶呤，S2-Serrate 细胞添加 100 µg/mL 潮霉素汤姆 培养基中的细胞。Delta 和 Serrate 的表达汤姆—一种带有Tomato标签的功能性Serrate蛋白12—处于 果蝇 金属硫蛋白启动子在 pMT 载体</li>
		<li>加入 0.7 mM CuSO₄4 诱导配体表达，并在25 °C下孵育3小时。</li>
	</ol>
	</li>
	<li>在信号发送细胞与信号接收细胞之间进行聚集。
	<ol>
		<li>通过轻柔吹打收集经dsRNA处理的S2（对照）和S2-Notch细胞，并将2.5 × 10⁵个细胞接种于培养板中5 细胞/孔，接种于24孔板，通过血细胞计数板手动计数后确定。</li>
		<li>加入 5 x 105 稳定的 S2-Delta 或 S2-Serrate汤姆 200 µL 含10% 胎牛血清和100 U/mL 青霉素-链霉素的Schneider培养基中的细胞 
		注意：所有S2细胞操作（包括铺板、诱导和dsRNA处理）均在生物安全柜中进行。</li>
		<li>将培养板置于转速为150 rpm（942.48 rad/min）的摇床中。</li>
		<li>1分钟后，混匀各孔中的内容物，取出20 µL用于计数聚集体数量。
		<ol>
			<li>在倒置复式显微镜下使用10倍放大倍数（PLL 10/0.25物镜）同时拍摄代表性图像。</li>
			<li>手动计数聚集体（&#62;6 个细胞）使用血细胞计数板。</li>
		</ol>
		</li>
		<li>将培养板置于摇床中。</li>
		<li>在聚集后5分钟和15分钟时重复进行图像采集和计数。</li>
	</ol>
	</li>
	<li>进行定量分析 转结合
	<ol>
		<li>计算S2细胞与S2-Delta或S2-Serrate之间每毫升的聚集体数量汤姆 作为背景对照的细胞。</li>
		<li>计算 S2-Notch 与 S2-Delta 或 S2-Serrate 之间的聚集体数量（每毫升）汤姆 细胞（幅度的） 转-结合）</li>
	</ol>
	</li>
</ol>
3. Notch与配体结合抑制作用的评估 转录-配体通过 顺式-配体
<ol>
	<li>制备信号接收细胞。
	<ol>
		<li>接种 5 × 105 6 孔板中每孔加入 1 mL Schneider 培养基，培养基中添加 10% 胎牛血清和 100 U/mL 青霉素-链霉素，每孔接种 S2 细胞。</li>
		<li>向每个孔中加入 7.5 µg 的 dsRNA，在 25 °C 下孵育 24 小时。</li>
		<li>将经dsRNA处理的细胞共转染 pBluescript 和 pMT-Notch11 （DGRC）单独或与 pMT-Notch 和 pMT-Delta11 （DGRC）或 pMT-Serrate17 使用商品化转染试剂，按照生产商说明书操作，使每孔总DNA浓度达到2 µg。 
		注意： pBluescript 用作对照。共转染的细胞将称为 S2-Notch&amp;#38;Delta瞬时的 或 S2-Notch&amp;#38;Serrate瞬时的 细胞（下文简称细胞）。</li>
		<li>将瞬时转染的S2细胞在25 °C下孵育24小时。</li>
		<li>加入 0.7 mM CuSO₄4 诱导 Notch 及其配体的表达，并在 25 °C 下孵育 3 天。</li>
	</ol>
	</li>
	<li>按照2.2节所述制备信号发送细胞。</li>
	<li>按照第2.3节所述，进行信号发送细胞与信号接收细胞之间的聚集。</li>
	<li>量化抑制作用 转结合 顺式-配体。
	<ol>
		<li>计算S2细胞与S2-Delta或S2-Serrate细胞之间每毫升的聚集体数量，作为背景对照。</li>
		<li>通过定量分析抑制程度 顺式-配体如下。
		<ol>
			<li>定义 A S2-Notch 之间的聚集体数量瞬时的 和 S2-Delta 细胞。</li>
			<li>定义 B S2细胞瞬时共转染Notch和Delta后形成的聚集体数量（S2-Notch&amp;#38;Delta瞬时以及 S2-Delta 细胞。</li>
			<li>计算相对聚集度 C = (B ×100)/A</li>
			<li>计算抑制程度 顺式-配体（Delta 或 Serrate）作为 100 – C. 
			注意：例如，如果相对聚集率为45%，则 顺式-配体被认为可抑制 转结合率降低55%。</li>
		</ol>
		</li>
	</ol>
	</li>
</ol>

<ol><li>de Celis, J. F., Bray, S., Garcia-Bellido, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Notch+signalling+regulates+veinlet+expression+and+establishes+boundaries+between+veins+and+interveins+in+the+Drosophila+wing%5BTitle%5D)+AND+%22Development%22%5BJournal%5D)">Notch signalling regulates veinlet expression and establishes boundaries between veins and interveins in the Drosophila wing.</a> Development. 124 (10), 1919-1928 (1997).</li>
<li>Fortini, M. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Notch+signaling%3A+the+core+pathway+and+its+posttranslational+regulation%5BTitle%5D)+AND+%22Dev+Cell%22%5BJournal%5D)">Notch signaling: the core pathway and its posttranslational regulation.</a> Dev Cell. 16 (5), 633-647 (2009).</li>
<li>del Alamo, D., Rouault, H., Schweisguth, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mechanism+and+significance+of+cis-inhibition+in+Notch+signalling%5BTitle%5D)+AND+%22Curr+Biol%22%5BJournal%5D)">Mechanism and significance of cis-inhibition in Notch signalling.</a> Curr Biol. 21 (1), R40-R47 (2011).</li>
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<li>Schneider, I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cell+lines+derived+from+late+embryonic+stages+of+Drosophila+melanogaster%5BTitle%5D)+AND+%22J+Embryol+Exp+Morphol%22%5BJournal%5D)">Cell lines derived from late embryonic stages of Drosophila melanogaster.</a> J Embryol Exp Morphol. 27 (2), 353-365 (1972).</li>
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<li>Fleming, R. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((An+extracellular+region+of+Serrate+is+essential+for+ligand-induced+cis-inhibition+of+Notch+signaling%5BTitle%5D)+AND+%22Development%22%5BJournal%5D)">An extracellular region of Serrate is essential for ligand-induced cis-inhibition of Notch signaling.</a> Development. 140 (9), 2039-2049 (2013).</li>
<li>Saj, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+combined+ex+vivo+and+in+vivo+RNAi+screen+for+notch+regulators+in+Drosophila+reveals+an+extensive+notch+interaction+network%5BTitle%5D)+AND+%22Dev+Cell%22%5BJournal%5D)">A combined ex vivo and in vivo RNAi screen for notch regulators in Drosophila reveals an extensive notch interaction network.</a> Dev Cell. 18 (5), 862-876 (2010).</li>
<li>Fiuza, U. M., Klein, T., Martinez Arias, A., Hayward, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mechanisms+of+ligand-mediated+inhibition+in+Notch+signaling+activity+in+Drosophila%5BTitle%5D)+AND+%22Dev+Dyn%22%5BJournal%5D)">Mechanisms of ligand-mediated inhibition in Notch signaling activity in Drosophila.</a> Dev Dyn. 239 (3), 798-805 (2010).</li>
<li>Ahimou, F., Mok, L. P., Bardot, B., Wesley, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+adhesion+force+of+Notch+with+Delta+and+the+rate+of+Notch+signaling%5BTitle%5D)+AND+%22J+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">The adhesion force of Notch with Delta and the rate of Notch signaling.</a> J Cell Biol. 167 (6), 1217-1229 (2004).</li>
<li>Livak, K. J., Schmittgen, T. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Analysis+of+relative+gene+expression+data+using+real-time+quantitative+PCR+and+the+2%28-Delta+Delta+C%28T%29%29+Method%5BTitle%5D)+AND+%22Methods%22%5BJournal%5D)">Analysis of relative gene expression data using real-time quantitative PCR and the 2(-Delta Delta C(T)) Method.</a> Methods. 25 (4), 402-408 (2001).</li>
<li>Okajima, T., Xu, A., Irvine, K. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Modulation+of+notch-ligand+binding+by+protein+O-fucosyltransferase+1+and+fringe%5BTitle%5D)+AND+%22J+Biol+Chem%22%5BJournal%5D)">Modulation of notch-ligand binding by protein O-fucosyltransferase 1 and fringe.</a> J Biol Chem. 278 (43), 42340-42345 (2003).</li>
<li>Acar, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Rumi+is+a+CAP10+domain+glycosyltransferase+that+modifies+Notch+and+is+required+for+Notch+signaling%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Rumi is a CAP10 domain glycosyltransferase that modifies Notch and is required for Notch signaling.</a> Cell. 132 (2), 247-258 (2008).</li>
<li>Bruckner, K., Perez, L., Clausen, H., Cohen, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Glycosyltransferase+activity+of+Fringe+modulates+Notch-Delta+interactions%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Glycosyltransferase activity of Fringe modulates Notch-Delta interactions.</a> Nature. 406 (6794), 411-415 (2000).</li>
<li>Yamamoto, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+mutation+in+EGF+repeat-8+of+Notch+discriminates+between+Serrate%2FJagged+and+Delta+family+ligands%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">A mutation in EGF repeat-8 of Notch discriminates between Serrate/Jagged and Delta family ligands.</a> Science. 338 (6111), 1229-1232 (2012).</li>
</ol>

作者无利益冲突。

经典的Notch信号通路依赖于Notch受体与其配体之间的相互作用5。尽管大多数关于Notch通路的研究主要关注相邻细胞间Notch与配体的结合（trans），但Notch也能与同一细胞内的配体发生相互作用，这类所谓的cis相互作用可在Notch信号传导中发挥抑制作用3,4。因此，为了阐明某种调控因子对经典Notch信号通路影响的机制，通常有必要同时研究这两种类型的Notch-配体相互作用（trans和cis）。然而，在动物发育的许多情况下，这两种相互作用及其反馈调控的共同参与使得体内（in vivo）研究变得复杂1,6。在本实验方案中，我们提供了一种详细的体外（in vitro）细胞聚集实验方法，利用果蝇（Drosophila）S2...

经典的Notch信号通路是一种短程的细胞间通讯机制，需要相邻细胞之间的直接接触，以促进Notch受体与其配体之间的相互作用1。Notch受体（位于信号接收细胞表面）与配体（位于信号发送细胞表面）之间的相互作用启动Notch信号通路，该过程被称为反式激活2。相反，Notch与其配体在同一细胞内的相互作用则会抑制Notch通路，被称为顺式抑制3。反式与顺式相互作用之间的平衡对于确保配体依赖性的最佳Notch信号传导至关重要4。Drosophila仅具有一个Notch受体和两种配体（Delta和Serrate），而哺乳动物则具有四个Notch受体和五种配体［Jagged 1（JAG1）、JAG2、delta样1（DLL1）、DLL3和DLL4］5。由于这种简单性，Drosophila模型便于解析或研究通路调节因子对Notch-配体相互作用以及后续Notch信号通路的影响。在动物发育过程中的某些情况下（包括Drosophila的翅发育），顺式和反式相互作用均参与实现适当的Notch信号传导和细胞命运决定1,6。在这些背景下，区分Notch通路调节因子对Notch与其配体之间顺式与反式相互作用的不同影响具有重要意义。
我们课题组先前报道过，将一种称为木糖的碳水化合物残基添加到 果蝇 Notch 在某些情况下（包括翅发育过程）对 Notch 信号通路起负向调控作用7. 缺失 假手术组 （使Notch发生木糖基化的酶）导致 &#34;翅脉缺失&#34; 表型7最近，通过基因剂量实验和克隆分析表明，基因的丢失 假手术组 增强Delta介导的Notch信号传导。为了区分Notch信号增强是由于 假手术组 突变体的表型是由于减少所致 顺式抑制或增加 转-利用幼虫翅成虫盘中Notch配体的异位过表达研究进行激活 dpp-GAL4 进行了驱动实验。这些实验提供的证据表明 Shams 具有调控作用 转- 在不影响 Notch 的情况下通过 Delta 激活 Notch 顺式-配体抑制8然而，反馈调节机制以及内源性配体的作用可能会使异位过表达研究的结果解释变得复杂1,6,9.
为了解决这个问题， 果蝇 S2细胞10 被使用，其提供了一种简单的方法 体外 用于Notch-配体相互作用研究的系统11,12S2 细胞不表达内源性 Notch 受体和 Delta 配体11 并表达低水平的 Serrate13，这不会影响Notch-配体聚集实验8因此，可通过稳定或瞬时转染使S2细胞表达Notch和/或单个配体（Delta或Serrate），从而获得仅表达Notch受体、单一配体或二者组合的细胞。将表达Notch的S2细胞与表达配体的S2细胞混合后，可通过受体-配体结合介导形成异型聚集体。11,12,14聚集体形成的量化提供了衡量指标 转Notch 及其配体之间的结合15 (图1）。类似地，S2 细胞可与 Notch 及 Delta 或 Serrate 配体共转染（即 顺式-配体） 顺式-ligands 在这些表达 Notch 的 S2 细胞中会阻断 Notch 与 转-配体，导致聚集体形成减少8,12,14由聚集体形成相对减少所导致的 顺式-配体提供了抑制作用的度量 顺式-配体对Notch与结合的影响 转-配体（图2）。因此，采用细胞聚集实验来检测失去木糖基化对 转- 和 顺式Notch 及其配体之间的相互作用
在此，我们提供了一种用于评估Notch与配体结合能力的细胞聚集实验的详细方案 转-配体及其抑制作用 顺式-配体的使用 果蝇 S2细胞。例如，我们提供了使我们能够确定Notch木糖基化对Notch与配体之间结合影响的数据 转-Δ8这些简单的检测方法可对 Notch-配体相互作用进行半定量评估 体外 并有助于确定其潜在的分子机制 体内 Notch 通路调节剂的作用

<table><tbody><tr><td>BioWhittaker Schneider&amp;rsquo;果蝇培养基，改良型</td><td>Lonza</td><td>04-351Q</td><td></td></tr><tr><td>HyClone 青霉素-链霉素 100X 溶液</td><td>GE Healthcare lifescience&amp;nbsp;</td><td>SV30010</td><td></td></tr><tr><td>CELLSTAR 6 孔板</td><td>Greiner Bio-One</td><td>657 160</td><td></td></tr><tr><td>CELLSTAR 24 孔板</td><td>Greiner Bio-One</td><td>662160</td><td></td></tr><tr><td>VWR迷你摇床</td><td>Marshell Sceintific</td><td>12520-956</td><td></td></tr><tr><td>血细胞计数板</td><td>Fisher Scientific&amp;nbsp;</td><td>267110</td><td></td></tr><tr><td>FuGENE HD 转染试剂</td><td>Promega</td><td>E2311</td><td></td></tr><tr><td>MEGAscrip T7 转录试剂盒</td><td>Ambion</td><td>AM1334</td><td></td></tr><tr><td>Quick-RNA MiniPrep（RNA纯化试剂盒）</td><td>Zymo Research</td><td>R1054</td><td></td></tr><tr><td>VistaVision 倒置显微镜</td><td>VWR</td><td></td><td></td></tr><tr><td>9MP USB2.0 显微镜数字相机 + 高级软件</td><td>AmScope</td><td>MU-900</td><td>使用 ToupView 软件进行图像采集</td></tr><tr><td>PureLink 快速凝胶回收试剂盒</td><td>Invitrogen</td><td>K210012</td><td></td></tr><tr><td>胎牛血清</td><td>GenDepot</td><td>F0600-050</td><td></td></tr><tr><td>甲氨蝶呤</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>A6770-10</td><td></td></tr><tr><td>潮霉素B</td><td>Invitrogen</td><td>HY068-L6</td><td></td></tr><tr><td>硫酸铜</td><td>Macron Fine Chemicals</td><td>4448-02</td><td></td></tr><tr><td>S2细胞</td><td>Invitrogen</td><td>R69007</td><td></td></tr><tr><td>S2-Serrate&lt;sup&gt;汤姆 &lt;/sup&gt;细胞</td><td></td><td></td><td>R. Fleming 惠赠（Fleming 等，Development，2013）</td></tr><tr><td>S2-Delta 细胞</td><td>果蝇基因资源中心</td><td>152</td><td></td></tr><tr><td>S2-Notch细胞</td><td>果蝇基因资源中心</td><td>154</td><td></td></tr><tr><td>pMT-Delta 载体</td><td>果蝇基因组资源中心</td><td>1021</td><td>S. Artavanis-Tsakonas 惠赠</td></tr><tr><td>pMT-Serrate 载体</td><td></td><td></td><td>Ken Irvine 惠赠（Okajima 等，JBC，2003）</td></tr><tr><td>pMT-Notch 载体</td><td>DGRC</td><td>1022</td><td>S. Artavanis-Tsakonas 惠赠</td></tr><tr><td>pAc5.1-EGFP</td><td></td><td></td><td>Hugo Bellen 惠赠</td></tr><tr><td>TaqMan RNA-to-Ct 1-&lt;em&gt;步骤&lt;/em&gt; 试剂盒</td><td>应用生物系统</td><td>1611091</td><td></td></tr><tr><td>CG9996（Shams）TaqMan 基因表达检测</td><td>应用生物系统</td><td>Dm02144576_g1&amp;nbsp;</td><td>使用 FAM-MGB 染料</td></tr><tr><td>CG7939（RpL32）TaqMan 基因表达检测</td><td>应用生物系统</td><td>Dm02151827_g1</td><td>使用 FAM-MGB 染料</td></tr><tr><td>Applied Biosystems 7900HT Fast Real-Time PCR 系统</td><td>应用生物系统</td><td>4351405</td><td>96孔板模块</td></tr></tbody></table>

用于评估结合能力的细胞聚集实验 果蝇 缺口与 转录-配体及其抑制作用 顺式-配体

Cell Aggregation Assays to Evaluate the Binding of the Drosophila Notch with Trans-Ligands and its Inhibition by Cis-Ligands

Notch 信号通路是一种在进化上保守的细胞间通讯系统，广泛参与动物的发育过程及成体组织的维持。当 Notch 受体与邻近细胞上的配体相互作用时，可诱导该信号通路的激活。转-活化），而与同一细胞上的配体相互作用则会抑制信号传导（顺式-抑制）。适当的平衡 转-激活和 顺式-抑制有助于在动物发育的某些情况下建立最佳的Notch信号水平。由于Notch与其配体在多种细胞类型中存在表达区域的重叠以及反馈机制的存在，研究特定翻译后修饰对 转- 与 顺式Notch 及其配体的相互作用 体内 很困难。在此，我们描述了一种使用 果蝇 S2 细胞在细胞聚集实验中用于评估敲低 Notch 信号通路调控因子对 Notch 与各配体结合的影响 转 以及在 顺式稳定或瞬时转染表达Notch载体的S2细胞与表达各Notch配体的细胞（S2-Delta或S2-Serrate）混合。 转录受体与配体结合导致异型细胞聚集体的形成，其结果以每毫升中由...组成的聚集体数量来衡量 &#62;6 个细胞。为检测抑制作用 顺式-配体，共表达Notch和每种配体的S2细胞与S2-Delta或S2-Serrate细胞混合，聚集体数量的定量方法如上所述。由于存在该配体导致的聚集体数量相对减少程度 顺式-配体提供了一种度量方法 顺式配体介导的抑制作用 转-结合。这些简单的实验可提供关于基因或药物干预对Notch与其配体结合影响的半定量数据，并有助于解析潜在的分子机制 体内 此类操作对 Notch 信号通路的影响。

我们的 体内 观察表明，木糖基转移酶基因的缺失 假手术组 导致Delta介导的Notch信号通路激活增强 转- 在不影响的情况下激活 Notch cis-配体介导的 Notch 抑制8为了验证这一观点， 体外 细胞聚集实验已进行。首先， 假手术组 在S2细胞中通过使用...实现表达敲低 假手术组 dsRNA EGFP 以dsRNA作为对照。通过实时PCR检测基因敲低（KD）效率，结果显示效率高于80%8然后，Notch受体与 转通过聚集实验检测sham KD后Delta的变化。在S2-Notch细胞与S2-Delta细胞混合后的不同时间点检测其聚集情况。以普通S2细胞与S2-Delta细胞之间的聚集作为背景对照。 图3 显示混合后不同时间点（1、5、15 和 ...

复杂性 体内 系统使得区分 Notch 受体的激活与抑制变得困难 转- 和 顺式-配体。在此，我们介绍一种基于 体外 用于定性与半定量评估结合能力的细胞聚集实验 果蝇 Notch 到 转-配体与 顺式-配体。

Notch 信号通路是一种在进化上保守的细胞间通讯系统，广泛参与动物的发育过程及成体组织的维持。Notch 受体与配体之间的相互作用……

本聚集实验的总体目标是评估 Notch 受体与反式配体的结合及其被顺式配体抑制的情况。该方法有助于回答一个关键问题：遗传或药理学因素将如何影响 Notch 受体与其配体的结合，并进而改变信号传导？该技术的主要优势在于，能够同时评估 Notch 受体与其配体之间的反式结合和顺式结合。有趣的是，在不涉及内源性配体重叠效应的情况下，开始检测时先将信号接收细胞离心沉淀，然后重悬于Schneider培养基中。使用血细胞计数板手动计数细胞。在六孔板的每个孔中，分别接种五次方10的S2细胞和稳定的S2-Notch细胞，每孔加入1毫升Schneider培养基。接着，向每孔加入7.5微克双链RNA，并在25°C下孵育细胞24小时。然后加入0.7毫摩尔硫酸铜以诱导Notch表达，并将细胞在25°C下继续孵育三天。孵育后，使用血细胞计数板手动计数信号发送细胞。将5×10⁶个稳定细胞接种至6孔板的每孔中，每孔加入1毫升添加物的Schneider培养基。然后加入0.7 mmol/L硫酸铜以诱导配体表达，并将细胞在25°C条件下孵育3小时。通过轻柔吹打收集经双链RNA处理的S2-control和S2-Notch细胞。将每孔2.5 × 10⁵个细胞接种至24孔板中。向补充了添加剂的Schneider培养基中加入5 × 10⁵个稳定的S2-Delta或S2-Serrate Tomato细胞，终体积为200 µL。将培养板置于150 rpm的摇床上。一分钟后，混匀每孔中的内容物，取出20 µL进行聚集体计数。同时，在倒置显微镜下使用10倍物镜拍摄代表性图像。为了观察细胞，将相机安装在显微镜上，并连接软件以获取图像。使用血细胞计数板手动计数聚集体。将培养板置于摇床上。在聚集开始后5分钟和15分钟时重复进行图像采集和计数。通过计算每毫升S2细胞与S2-Delta或S2-Serrate Tomato细胞之间的聚集体数量（作为背景对照），以及每毫升S2-Notch细胞与S2-Delta或S2-Serrate Tomato细胞之间的聚集体数量，进行反式结合定量分析。将信号接收细胞接种于6孔板中，每孔加入1毫升补充型Schneider培养基，每孔接种5 × 10⁵个S2细胞。向每个孔中加入 7.5 µg 双链 RNA，并将培养板在 25 °C 下孵育 24 小时。孵育后，使用商用转染试剂对经双链 RNA 处理的细胞进行共转染，每孔总 DNA 浓度为 2 µg。将瞬时转染的 S2 细胞在 25 °C 下孵育 24 小时。第二天，加入0.7毫摩尔的硫酸铜以诱导Notch及其配体的表达，在25摄氏度下孵育三天。按照前文所述方法制备信号发送细胞。最后，按照前述方法进行信号发送细胞与信号接收细胞的聚集实验。在1至5分钟之间，聚集体数量出现急剧增加。随后，聚集体数量继续增加至30分钟，但增速减缓。在三个时间点显示聚集情况的图像表明，经EGFP双链RNA处理的S2-Notch细胞与S2-Delta细胞形成聚集体，且聚集体数量随时间推移而增加。相比之下，经sham和双链RNA处理的S2-Notch细胞形成聚集体的速度更快，且聚集体更大、数量更多，表明降低shams水平可增强Notch与Delta的反式结合。将等量的Notch和Delta表达载体转染至S2细胞后，这些细胞与S2-Delta细胞之间形成的聚集体数量显著减少。此外，顺式 Delta 含量的减少会导致聚集体数量增加，表明在本实验所用的 Notch/顺式 Delta 比例范围内，顺式 Delta 能够以剂量依赖的方式抑制 Notch 与反式 Delta 之间的结合。对相对聚集程度的定量分析显示，在 EGFP 和对照双链 RNA 处理条件下，对聚集的抑制作用相当。所有试剂准备好后，该检测操作简便，可在几小时内完成。

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