Name: 应用新型磁吻合技术 Suprahepatic 腔静脉重建大鼠原位肝移植模型的研究 (视频) | JoVE Journal
Uploaded: 2018-03-19T12:30:00.000+00:00
Duration: 14 min 33 s
Description: 了解新型磁吻合技术在大鼠原位肝移植中重建肝上腔静脉的方法。该技术显著缩短无肝期，提高术后存活率至85%，为肝脏移植研究提供可靠模型。

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

本工作得到了中国教育部创新团队发展计划（编号：IRT16R57）、国家自然科学基金（编号：81470896）以及西安交通大学青年人才引进计划研究基金（RW）的资助。

该实验方案严格遵循《实验动物护理与使用指南》的要求，并经中国陕西省西安市西安交通大学实验动物伦理委员会批准。
注意：本方案中的任何步骤均未在手术显微镜下进行。
1. 术前准备
<ol>
	<li>磁环的设计与形状（图1）
	<ol>
		<li>通过配对钕铁硼磁环组装磁性吻合装置。</li>
		<li>根据大鼠SHVC的参数设计磁环，其长轴直径、短轴直径、厚度和重量分别为8 mm、5.5 mm、1 mm和0.5 g。</li>
		<li>采用线电极切割技术将磁环弯曲成所需形状，然后用氧化钛喷雾涂层处理所获得的磁环，并在55–60 °C条件下使用500 mg/L环氧乙烷灭菌6小时。</li>
	</ol>
	</li>
	<li>套管（图2）
	<ol>
		<li>通过切割聚乙烯管制备用于IHVC和PV吻合的套管。确保套管主体长度为5 mm，套管延伸部分为2 mm。 
		注：PV套管的内径和外径分别为1.8 mm和2.1 mm，而IHVC套管的内径和外径分别为2.6 mm和2.8 mm。</li>
	</ol>
	</li>
	<li>支架（图2）
	<ol>
		<li>通过切割24G静脉留置针制备用于BD吻合的支架，长度为5 mm，并在两端切成斜面。</li>
	</ol>
	</li>
	<li>实验动物
	<ol>
		<li>选用体重在250至280 g之间的雄性Sprague Dawley大鼠作为供体和受体。确保受体体重与供体相同或略重（&#60; 10 g）。</li>
		<li>术前将大鼠饲养于环境可控的房间内，自由摄食和饮水。</li>
	</ol>
	</li>
</ol>
2. 供体手术
<ol>
	<li>术前1小时皮下注射布托啡诺（0.05 mg/kg）作为镇痛剂。</li>
	<li>通过异氟烷吸入麻醉供体大鼠。使用5 vol%异氟烷，以1.5 L/min的流速在有机玻璃箱中诱导麻醉，随后以2 vol%异氟烷，0.6–0.8 L/min的流速通过锥形面罩维持麻醉。通过夹捏足趾和皮肤来确认麻醉深度。</li>
	<li>使用电动剃须刀剃除大鼠整个腹部的皮肤毛发，以便更清晰地暴露手术区域。用聚维酮碘溶液对相应皮肤进行消毒。</li>
	<li>使用手术剪从阴茎根部开始，沿腹中线向上至剑突上方1厘米处，做十字形切口以打开腹腔 白线，从纵切口的中点延伸至腋中线。将胃肠道向左侧外翻，并用湿纱布覆盖。</li>
	<li>用止血钳夹住剑突并朝头部方向牵拉。解剖镰状韧带及肝脏周围的结缔组织。分离并用6-0丝线结扎左下膈静脉。</li>
	<li>将支架置入胆管。
	<ol>
		<li>在胃十二指肠静脉汇入门静脉的位置稍上方用微血管夹夹闭胆总管，并用显微镊轻轻牵拉以保持轻微张力。然后进行 &#34;V&#34; 用显微剪刀在胆管汇合处近端约5 mm的前壁做一长约1 mm的切口。</li>
		<li>使用弯头显微镊将支架插入胆管管腔内，确保至少有半段支架位于胆管外。</li>
		<li>用6-0丝线固定支架。剪断缝线的一端，保留另一端用于后续吻合时牵拉。在支架下方横断胆管，并确保胆汁可从支架中流出。</li>
	</ol>
	</li>
	<li>分离下腔静脉至左侧肾静脉水平。使用棉签解剖法从前方和侧方周围组织中游离下腔静脉，直至下腔静脉完全裸化。分别以6-0丝线结扎右侧肾上腺静脉和右侧肾静脉。</li>
	<li>通过阴茎背静脉注射将50 U肝素溶于2 mL生理盐水中，对大鼠进行肝素化处理。</li>
	<li>灌注肝脏。
	<ol>
		<li>在左肾静脉下方分离腹主动脉。将22号导管插入主动脉。</li>
		<li>行胸廓切开术，使用显微镊夹闭胸主动脉。</li>
		<li>通过主动脉中的导管，使用输液泵以 3 mL/min 的速度向供体肝脏灌注 20 mL 含 25 U 肝素的生理盐水溶液（4 °C）。同时，剪断右肾静脉下方的下腔静脉&#160;使灌注液从肝脏流出。</li>
		<li>当供体肝脏变为苍白时，在左肾静脉水平横断下腔静脉（SHVC）、部分膈肌和下腔静脉（IHVC）。</li>
	</ol>
	</li>
	<li>用两把显微镊子分离PV周围的结缔组织。使用8-0 Prolene缝线结扎并切断幽门静脉。在脾静脉水平横断PV。切除供体肝脏，并用冷生理盐水冲洗。将其置于4 °C的冷盐水浴中。</li>
</ol>
3. 移植物制备
注意：肝脏移植物制备的所有操作均在4 °C的冷盐水浴中进行。
<ol>
	<li>将套管连接至供体的下腔静脉（IHVC）（图3）。
	<ol>
		<li>将IHVC插入其套管中，使套管的延伸部分朝向肝脏方向，并将套管延伸部分置于IHVC的后壁。使用弯头显微镊子固定套管延伸部分和IHVC，并通过文件夹将镊子固定在浴槽容器上。</li>
		<li>使用两把显微镊子将IHVC远端外翻覆盖在套管主体上。</li>
		<li>用6-0丝线固定边缘。确保操作过程中IHVC未发生扭转。</li>
	</ol>
	</li>
	<li>对门静脉（PV）重复步骤3.1，以将套管连接至供体的PV。</li>
	<li>将磁环连接至供体的上腔静脉（SHVC）（图4）。
	<ol>
		<li>通过四把镊子牵拉膈肌，并修剪SHVC。</li>
		<li>使用钛合金显微镊子将SHVC穿过磁环。</li>
		<li>将SHVC远端外翻覆盖在磁环上。</li>
		<li>用6-0丝线固定磁环。确保操作过程中SHVC未发生扭转。</li>
		<li>切除肝脏周围多余的膈肌组织。</li>
	</ol>
	</li>
	<li>将供体肝脏浸入冷生理盐水浴中，并在4 °C条件下保存。</li>
</ol>
4. 受体操作
注意：受体大鼠中移植物植入的示意图见图5。
<ol>
	<li>术前1小时皮下注射布托啡诺（0.05 mg/kg）作为镇痛剂。通过吸入异氟烷麻醉供体大鼠。使用5 vol%异氟烷以1.5 L/min的流速在亚克力盒中诱导麻醉，随后以2 vol%异氟烷以0.6–0.8 L/min的流速通过锥形面罩维持麻醉。</li>
	<li>剃除大鼠整个腹部皮肤的毛发，并用聚维酮碘溶液对相应皮肤进行消毒。</li>
	<li>通过一条4 cm长的腹正中切口打开腹腔。放置腹腔牵开器，将肋骨尽可能向两侧拉开。</li>
	<li>使用止血钳夹住剑突并向头部方向牵拉。解剖肝脏周围的结缔组织和韧带。结扎并切断肝食管韧带。使用8-0聚丙烯缝线结扎并切断肝动脉。</li>
	<li>从第一肝门处游离出胆总管。在胆总管分叉下方用6-0丝线环绕胆总管并进行结扎。</li>
	<li>向下解剖下腔静脉至右肾静脉水平。结扎并切断右肾上腺静脉。将一条牵引带穿过肝脏的肝上腔静脉（SHVC）。</li>
	<li>使用微血管夹在右肾静脉上方夹闭下腔静脉（IHVC）。使用微血管夹在幽门静脉水平夹闭门静脉（PV）。
	<ol>
		<li>为冲洗肝脏内的血液，通过门静脉缓慢注入2 mL生理盐水。通过牵拉先前放置的牵引带将肝脏向下牵拉。使用Satinsky钳夹闭肝上腔静脉及部分膈肌。</li>
		<li>在靠近肝实质处切断下腔静脉，在肝门处切断门静脉。在肝脏上方稍远处切断肝上腔静脉以完整切除供体肝脏。迅速移除受体肝脏。</li>
	</ol>
	</li>
	<li>将磁性环连接至受体的肝上腔静脉（SHVC）。
	<ol>
		<li>将受体残余的肝上腔静脉插入磁性环内。</li>
		<li>通过磁力将磁性环固定在Satinsky钳上。</li>
		<li>将肝上腔静脉外翻覆盖在磁性环上，直至血管完全覆盖环的边缘。</li>
	</ol>
	</li>
	<li>将供体肝脏移植物原位植入，并用冷湿纱布覆盖。</li>
	<li>用生理盐水充满供体和受体肝上腔静脉（SHVC）的管腔，彻底排除气泡以防止空气栓塞。通过磁力将嵌入供体和受体SHVC中的磁性环对接，完成SHVC的重建。</li>
	<li>重建门静脉（PV）。
	<ol>
		<li>通过牵拉8-0聚丙烯缝线来牵引受体门静脉的左右分支，以维持门静脉张力。</li>
		<li>将受体门静脉的夹子从幽门静脉下移至脾静脉，以充分暴露静脉。</li>
		<li>切开受体门静脉前壁，用生理盐水充满PV管腔。</li>
		<li>用弯头镊子夹住供体门静脉的套管延伸部分。</li>
		<li>在持续用生理盐水冲洗PV管腔的同时，将供体门静脉的套管主体插入受体门静脉内。</li>
		<li>使用6-0丝线行环形结扎固定。松开PV和SHVC上的夹子，恢复移植物肝脏的血流。</li>
	</ol>
	</li>
	<li>对下腔静脉（IHVC）重复步骤4.11，完成IHVC的重建。</li>
	<li>采用支架技术重建胆管。
	<ol>
		<li>在受体胆总管前壁切开一个&#34;V&#34;形切口。</li>
		<li>将供体支架插入受体胆管（BD）管腔，并用6-0丝线行环形缝合固定。将两根胆管上的缝线拉紧并打结，使胆管紧密对合。</li>
		<li>用大网膜组织包裹吻合口，防止胆汁渗漏。</li>
	</ol>
	</li>
	<li>用温热的生理盐水冲洗腹腔。使用连续的3-0不可吸收外科缝线分两层关闭腹部切口。</li>
	<li>术后立即皮下注射头孢呋辛（16 mg/kg，抗生素）和布托啡诺（0.05 mg/kg，镇痛剂）。</li>
	<li>将大鼠置于清洁笼中，自由摄食和饮水ad libitum。</li>
	<li>每12小时向腹腔内注射头孢呋辛（16 mg/kg）和布托啡诺（0.05 mg/kg），持续3天。</li>
</ol>

<ol><li>Aller, M. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+half+century+%281961-2011%29+of+applying+microsurgery+to+experimental+liver+research%5BTitle%5D)+AND+%22World+journal+of+hepatology%22%5BJournal%5D)">A half century (1961-2011) of applying microsurgery to experimental liver research.</a> World journal of hepatology. 4, 199-208 (2012).</li>
<li>Aller, M. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+value+of+microsurgery+in+liver+research%5BTitle%5D)+AND+%22Liver+international+%3A+official+journal+of+the+International+Association+for+the+Study+of+the+Liver%22%5BJournal%5D)">The value of microsurgery in liver research.</a> Liver international : official journal of the International Association for the Study of the Liver. 29, 1132-1140 (2009).</li>
<li>Lee, S., Charters, A. C., Chandler, J. G., Orloff, M. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+technique+for+orthotopic+liver+transplantation+in+the+rat%5BTitle%5D)+AND+%22Transplantation%22%5BJournal%5D)">A technique for orthotopic liver transplantation in the rat.</a> Transplantation. 16, 664-669 (1973).</li>
<li>Kamada, N., Calne, R. Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Orthotopic+liver+transplantation+in+the+rat.+Technique+using+cuff+for+portal+vein+anastomosis+and+biliary+drainage%5BTitle%5D)+AND+%22Transplantation%22%5BJournal%5D)">Orthotopic liver transplantation in the rat. Technique using cuff for portal vein anastomosis and biliary drainage.</a> Transplantation. 28, 47-50 (1979).</li>
<li>Oldani, G., Lacotte, S., Morel, P., Mentha, G., Toso, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Orthotopic+liver+transplantation+in+rats%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+visualized+experiments+%3A+JoVE%22%5BJournal%5D)">Orthotopic liver transplantation in rats.</a> Journal of visualized experiments : JoVE. , (2012).</li>
<li>Nagai, K., Yagi, S., Uemoto, S., Tolba, R. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Surgical+procedures+for+a+rat+model+of+partial+orthotopic+liver+transplantation+with+hepatic+arterial+reconstruction%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+visualized+experiments+%3A+JoVE%22%5BJournal%5D)">Surgical procedures for a rat model of partial orthotopic liver transplantation with hepatic arterial reconstruction.</a> Journal of visualized experiments : JoVE. , e4376(2013).</li>
<li>Liu, X., He, C., Huang, T., Gu, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Development+of+a+New+Technique+for+Reconstruction+of+Hepatic+Artery+during+Liver+Transplantation+in+Sprague-Dawley+Rat%5BTitle%5D)+AND+%22PloS+one%22%5BJournal%5D)">Development of a New Technique for Reconstruction of Hepatic Artery during Liver Transplantation in Sprague-Dawley Rat.</a> PloS one. 10, e0145662(2015).</li>
<li>Jamshidi, R., Stephenson, J. T., Clay, J. G., Pichakron, K. O., Harrison, M. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Magnamosis%3A+magnetic+compression+anastomosis+with+comparison+to+suture+and+staple+techniques%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+pediatric+surgery%22%5BJournal%5D)">Magnamosis: magnetic compression anastomosis with comparison to suture and staple techniques.</a> Journal of pediatric surgery. 44, 222-228 (2009).</li>
<li>Pichakron, K. O., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Magnamosis+II%3A+Magnetic+compression+anastomosis+for+minimally+invasive+gastrojejunostomy+and+jejunojejunostomy%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+the+American+College+of+Surgeons%22%5BJournal%5D)">Magnamosis II: Magnetic compression anastomosis for minimally invasive gastrojejunostomy and jejunojejunostomy.</a> Journal of the American College of Surgeons. 212, 42-49 (2011).</li>
<li>Gonzales, K. D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Magnamosis+III%3A+delivery+of+a+magnetic+compression+anastomosis+device+using+minimally+invasive+endoscopic+techniques%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+pediatric+surgery%22%5BJournal%5D)">Magnamosis III: delivery of a magnetic compression anastomosis device using minimally invasive endoscopic techniques.</a> Journal of pediatric surgery. 47, 1291-1295 (2012).</li>
<li>Wall, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((MAGNAMOSIS+IV%3A+magnetic+compression+anastomosis+for+minimally+invasive+colorectal+surgery%5BTitle%5D)+AND+%22Endoscopy%22%5BJournal%5D)">MAGNAMOSIS IV: magnetic compression anastomosis for minimally invasive colorectal surgery.</a> Endoscopy. 45, 643-648 (2013).</li>
<li>Xue, F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Choledochojejunostomy+with+an+innovative+magnetic+compressive+anastomosis%3A+How+to+determine+optimal+pressure%3F%5BTitle%5D)+AND+%22World+journal+of+gastroenterology%22%5BJournal%5D)">Choledochojejunostomy with an innovative magnetic compressive anastomosis: How to determine optimal pressure?</a> World journal of gastroenterology. 22, 2326-2335 (2016).</li>
<li>Yan, X., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Portacaval+shunt+established+in+six+dogs+using+magnetic+compression+technique%5BTitle%5D)+AND+%22PloS+one%22%5BJournal%5D)">Portacaval shunt established in six dogs using magnetic compression technique.</a> PloS one. 8, e76873(2013).</li>
<li>Dorman, R. M., Vali, K., Harmon, C. M., Zaritzky, M., Bass, K. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Repair+of+esophageal+atresia+with+proximal+fistula+using+endoscopic+magnetic+compression+anastomosis+%28magnamosis%29+after+staged+lengthening%5BTitle%5D)+AND+%22Pediatric+surgery+international%22%5BJournal%5D)">Repair of esophageal atresia with proximal fistula using endoscopic magnetic compression anastomosis (magnamosis) after staged lengthening.</a> Pediatric surgery international. 32, 525-528 (2016).</li>
<li>Russell, K. W., Rollins, M. D., Feola, G. P., Scaife, E. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Magnamosis%3A+a+novel+technique+for+the+management+of+rectal+atresia%5BTitle%5D)+AND+%22BMJ+case+reports%22%5BJournal%5D)">Magnamosis: a novel technique for the management of rectal atresia.</a> BMJ case reports. , (2014).</li>
<li>Shi, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Magnetic+ring+anastomosis+of+suprahepatic+vena+cava%3A+novel+technique+for+liver+transplantation+in+rat%5BTitle%5D)+AND+%22Transplant+international+%3A+official+journal+of+the+European+Society+for+Organ+Transplantation%22%5BJournal%5D)">Magnetic ring anastomosis of suprahepatic vena cava: novel technique for liver transplantation in rat.</a> Transplant international : official journal of the European Society for Organ Transplantation. 28, 89-94 (2015).</li>
</ol>

作者无任何利益冲突需要披露。

许多肝脏移植领域的临床进展均可归功于动物研究。大鼠原位肝移植（OLT）是器官保存、移植免疫学、生理学及病理学研究中广泛使用且被普遍接受的模型。然而，该手术操作极为复杂，需要高超的显微外科技术。尽管大鼠OLT手术已有多项改进，但肝上下腔静脉（SHVC）吻合仍是一个具有挑战性的步骤。本文中，我们介绍一种用于大鼠OLT中SHVC重建的新型磁性吻合技术。该技术的应用使SHVC重建时间缩短至2分钟以内，大鼠OLT的无肝期缩短至约10分钟。我们认为，该技术在移植研究领域具有重要意义。
采用磁性吻合技术重建下肝静脉（SHVC）的关键步骤是将磁环分别固定在供体和受体的SHVC上。操作时应格外小心，避免扭转SHVC。此外，在连接两个磁环时，应彻底排除SHVC内的气泡。
该技术的应用存在一些局限性。某些大鼠品系，如Fischer-344大鼠和Buffalo大鼠，其肝上下腔静脉（SHVC）极短，无法在其SHVC上安装磁环，因此不适合使用该技术。然而，该技术可轻松应用于大多数大鼠品系的原位肝移植（OLT），包括Sprague Dawley大鼠、Lew...

大鼠原位肝移植（OLT）模型对移植研究至关重要1,2。首例大鼠OLT由Lee et al. 于1973年报道3。在该模型中，所有血管均采用手工缝合技术进行重建。手工缝合技术需要高超的显微外科技能，因而显著限制了其应用。此后，已有多种对原始大鼠OLT方案的改良方法被报道。其中，Kamada et al. 于1979年报道的用于门静脉（PV）和肝下腔静脉（IHVC）吻合的套管技术，被认为是该模型的重要改进，因其显著简化了重建过程4。然而，由于受体肝上腔静脉（SHVC）前壁较短，套管技术难以应用于SHVC的重建。目前该领域大多数研究者仍采用手工缝合技术进行SHVC重建，使其成为大鼠OLT中的瓶颈步骤5,6,7。
磁性吻合技术（即，磁吻合（magnamosis）是一种利用两个磁体之间的吸引力连接两个血管或其他管状结构的方法8,9,10,11磁力逐渐压缩并重塑组织，形成牢固的无缝合吻合。12,13这种压缩吻合术在人体中已被证明是有效的14,15我们专门设计了一对用于大鼠次肝静脉（SHVC）吻合的磁环。我们最近的研究表明，在大鼠原位肝移植（OLT）中，磁性吻合技术在SHVC重建方面优于手工缝合技术。16本文的目的是提供一种利用新型磁性吻合技术在大鼠中进行肝下腔静脉重建的详细分步操作方案。

<table><tbody><tr><td>麻醉机</td><td>哈佛大学</td><td>&amp;nbsp;台式</td><td>动物麻醉</td></tr><tr><td>PLX7000B HF 移动式数字化 C 形臂系统</td><td>Perlong Medical</td><td>PLX7000B</td><td>主要用于各种手术的血管造影和摄影</td></tr><tr><td>注射泵</td><td>迈瑞</td><td>BeneFusion SP5</td><td>静脉输注</td></tr><tr><td>异氟烷</td><td>RWD生命科学有限公司</td><td></td><td>麻醉剂：用于麻醉的诱导和维持</td></tr><tr><td>碘海醇</td><td>上海通用制药有限公司</td><td></td><td>&amp;nbsp;血管内对比剂&amp;nbsp;&amp;nbsp;</td></tr><tr><td>肝素钠注射液</td><td>SPH No.1 生化培养基 &amp;amp;制药有限公司&amp;nbsp;</td><td></td><td>&amp;nbsp;预防血栓形成&amp;nbsp;</td></tr><tr><td>头孢呋辛&amp;nbsp;</td><td>葛兰素史克英国运营有限公司&amp;nbsp;</td><td></td><td>一种抗生素</td></tr><tr><td>丁丙诺啡&amp;nbsp;</td><td>TIPR Pharmaceutical Responsible Co.,Ltd</td><td></td><td>一种镇痛药</td></tr><tr><td>弯曲显微镊</td><td>上海医疗器械（集团）有限公司</td><td>W40350</td><td>手术器械</td></tr><tr><td>止血钳（直型）</td><td>上海医疗器械（集团）有限公司</td><td>J31010</td><td>手术器械</td></tr><tr><td>止血钳（弯型）</td><td>上海医疗器械（集团）有限公司</td><td>J31020</td><td>手术器械</td></tr><tr><td>Satinsky钳</td><td>上海医疗器械（集团）有限公司</td><td>XEC050</td><td>手术器械</td></tr><tr><td>持针器</td><td>上海医疗器械（集团）有限公司</td><td>J32010</td><td>手术器械</td></tr><tr><td>微针贴片 holder</td><td>上海医疗器械（集团）有限公司</td><td>WBA040</td><td>手术器械</td></tr><tr><td>带凹口镊子</td><td>上海医疗器械（集团）有限公司</td><td>J42010</td><td>手术器械</td></tr><tr><td>带钩组织镊</td><td>上海医疗器械（集团）有限公司</td><td>J41010</td><td>手术器械</td></tr><tr><td>组织剪</td><td>上海医疗器械（集团）有限公司</td><td>Y00040</td><td>手术器械</td></tr><tr><td>手术剪</td><td>上海医疗器械（集团）有限公司</td><td>Y00030</td><td>手术器械</td></tr><tr><td>微型剪刀</td><td>上海医疗器械（集团）有限公司</td><td>MR-S121T</td><td>手术器械</td></tr><tr><td>微血管夹</td><td>上海医疗器械（集团）有限公司</td><td>XEC240</td><td>手术器械</td></tr><tr><td>直头显微镊（钛合金）</td><td>上海医疗器械（集团）有限公司</td><td>WCC010</td><td>手术器械</td></tr><tr><td>弯曲显微镊&amp;nbsp; （钛合金）</td><td>上海医疗器械（集团）有限公司</td><td>WCC020</td><td>手术器械</td></tr></tbody></table>

一种采用新型磁性吻合技术进行肝上腔静脉重建的原位肝移植大鼠模型

A Rat Model of Orthotopic Liver Transplantation Using a Novel Magnetic Anastomosis Technique for Suprahepatic Vena Cava Reconstruction

大鼠原位肝移植（OLT）模型对移植研究至关重要。该模型技术要求高，学习曲线陡峭。套管技术在门静脉（PV）和肝下腔静脉（IHVC）吻合中的应用显著简化了大鼠肝移植手术。然而，由于受体肝上腔静脉（SHVC）前壁较短，套管技术难以用于SHVC的重建。该领域大多数研究人员仍采用手工缝合技术进行SHVC重建，这使其成为大鼠原位肝移植中的瓶颈步骤。磁性吻合技术（即 magnamosis）是一种利用两块磁铁之间的吸引力连接两个血管的方法。我们近期的研究表明，在大鼠SHVC重建中，磁性吻合技术优于手工缝合技术。本文中，我们展示了采用新型磁性吻合技术进行大鼠SHVC重建的逐步操作方案。在该模型中，PV和IHVC的重建采用标准套管技术，胆管（BD）重建采用支架技术，未进行肝动脉再通。磁性吻合技术使SHVC重建更加简便，并显著缩短了无肝期。经过合理的学习过程后，即使不具备高级显微外科技能的研究人员，也能利用该大鼠OLT模型获得可靠且可重复的结果。

经过约10次尝试后，一名无显微外科训练背景的研究人员成功掌握了用于SHVC重建的磁性吻合技术。SHVC重建耗时少于2分钟。受体大鼠的无肝期约为10分钟。再灌注后1天、5天和30天，SHVC吻合部位未观察到血栓形成、出血或血管狭窄。移植术后2周行下腔静脉造影。如图所示 图6，磁环保持完整，经SHVC吻合处血流通畅。移植后存活率在第1天为95%，第3天为90%，第7至30天为85%（图7).
<img alt="椭圆形垫片的制备；带尺寸标注的示意图及完成后的垫片照片（含比例尺）。" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/56933/56933fig1.jpg" data-altupdatedat="1788250015000" data-alt="图1"> 
<strong class="xf...

在大鼠原位肝移植中，肝上腔静脉（SHVC）的重建仍是一个困难的步骤。本文介绍了一种利用新型磁性吻合技术进行大鼠SHVC重建的逐步操作方案。

原位肝移植（OLT）的大鼠模型对移植研究至关重要。该模型技术复杂，需要较高的手术技巧和学习曲线。

本方案的总体目标是介绍一种采用磁性吻合技术进行肝上腔静脉重建的大鼠原位肝移植模型。该方法有助于解决肝移植模型中关于肝上腔静脉重建的关键问题。该技术的主要优势在于能够缩短肝移植过程中的无肝期，并显著提高术后存活率。首先，剃除大鼠整个腹部的皮肤。使用聚维酮碘溶液对相应皮肤进行消毒。解剖肝脏周围的镰状韧带。接下来，分离并结扎左侧膈下静脉。在前壁做V形切口。将支架插入胆管腔内。确保支架至少有一半位于胆管外。用6-0丝线缝合固定支架。剪断缝线的一端。保留另一侧以用于后续吻合。游离下腔静脉至左肾静脉水平，继续解剖直至下腔静脉完全游离。分离并结扎右侧肾上腺静脉。分离并结扎右侧肾静脉。通过阴茎背静脉向大鼠注射肝素。在左肾静脉下方将22号导管插入腹主动脉。进行开胸手术。使用显微镊夹闭胸主动脉。通过主动脉中的导管灌注供体肝脏。横断肝上腔静脉。同时，于右肾静脉下方切断腔静脉，以使灌注液流出肝脏。解剖门静脉周围的结缔组织。结扎并切断幽门静脉。在脾静脉水平横断门静脉。在左肾静脉水平横断下腔静脉。肝脏移植物的制备在4°C的生理盐水浴中进行。将下腔静脉插入其套管中，套管的延伸部分朝向肝脏。将肝下腔静脉远端翻转至套管主体上，用6-0丝线固定边缘。对门静脉重复上述步骤，将套管连接至供体门静脉。将膈肌穿过镊子，并修剪上肝静脉。将上肝静脉穿过磁环。将上肝静脉的远端翻转覆盖在磁环上。用6-0丝线固定环状结构，随后切除肝脏周围多余的膈肌。放置一条6-0丝线并结扎胆总管。从第一肝门处游离出胆总管。结扎并切断右肾上腺静脉。在肝脏的肝上腔静脉处放置一根牵引带。用微血管夹在右肾静脉上方夹闭下腔静脉肝下段。在幽门静脉水平夹闭门静脉。通过门静脉缓慢注入2 mL生理盐水，以冲洗肝脏中的血液。通过牵拉先前放置的带子向下拖动肝脏。使用Satinsky钳夹住肝上腔静脉和部分膈肌。在肝脏上方不远处横断肝上腔静脉，以切除肝脏。在靠近肝实质处横断下腔静脉，并在肝门处横断门静脉。将受体残余的上腔静脉插入磁性环中。通过磁性吸引将磁性环固定在Satinsky钳上。将肝上腔静脉翻转至磁环上。将供体肝脏移植物正位放置，并用生理盐水充满管腔，使磁环对接以完成血管重建。重建门静脉。用生理盐水填充门静脉管腔。将供体门静脉的套管部分插入受体门静脉中，并用一圈6-0丝线结扎固定。移除肝上腔静脉的Satinsky钳。在胆总管前壁切开一个V形切口。将供体支架插入受体胆管的管腔内。用6-0丝线行环形缝合固定。将两根胆管上的缝线拉拢并打结，使胆管相互贴近。术后两周血管造影显示肝上腔静脉吻合口血流通畅。移植后存活率在术后第30天达到85%。磁性吻合技术使得大鼠肝上腔静脉重建变得简便且快速。观看本视频后，即使不具备高级显微外科技术，也能利用该大鼠肝移植模型获得可靠且可重复的结果。

a-rat-model-orthotopic-liver-transplantation-using-novel-magnetic

Research

科研

JoVE Journal

Medicine

医学

应用新型磁吻合技术 Suprahepatic 腔静脉重建大鼠原位肝移植模型的研究

我们介绍一种易于建立的、用于大鼠原位肝移植的经典双袖套技术的改良方法。...

大鼠原位肝移植

大鼠原位肝移植是生物医学研究中不可或缺的实验模型。本文介绍了我们采用50%部分移植物并进行肝动脉重建的大鼠原位肝移植手术操作步骤。...

部分原位肝移植伴肝动脉重建的大鼠手术操作

我们介绍了“快速连接器”装置的设计，该装置可简化大鼠原位肝移植手术。...

制造用于简化大鼠肝移植的器械与工具

我们介绍了一种大鼠异位腹部心肺联合移植（HAHLT）的新技术。该移植构型可实现移植物循环的部分负荷，从而允许对功能进行直接评估。此模型可用于研究移植移植物的急性或慢性功能及免疫状态。...

大鼠异位腹部心脏/单肺联合移植在容量负荷配置下的手术方法

本文介绍了一种大鼠部分肝脏移植联合动脉再通的实验方案。具体而言，切除了70%的肝脏 体内...

再动脉化大鼠部分肝移植术 在体 以血管为导向的70%肝切除术

本研究的目的是改进大鼠原位肝移植模型，以更好地模拟人类肝移植并提高受体存活率。本方法通过将供体肝脏的肝总动脉与受体肝脏的肝固有动脉相吻合，重建肝脏动脉血流。...

异位肝移植大鼠模型中动脉重建后并发症减少

在本实验方案中，我们探讨了在小鼠中成功实施原位肝移植（OLT）模型的方法。此外，还讨论了在小鼠成功进行OLT后，用于进一步分析同种异体移植物通畅性的辅助技术，特别是利用微型计算机断层扫描（microCT）成像的方法。...

利用显微计算机断层扫描血管造影术在小鼠中成功实施原位肝移植

本方案提供了利用套管技术在小鼠原位肝移植中进行血管重建的技术信息。...

小鼠原位肝移植中采用套管技术进行血管重建

本文所述的大鼠异位辅助性肝移植方案为研究肝同种异体移植物排斥反应的机制提供了一种实用的实验工具。该模型有助于减轻大鼠原位肝移植过程中的手术难度和动物应激反应。...

利用输尿管肝管吻合术的异位辅助性全肝大鼠移植模型用于同种异体移植物排斥研究

本视频展示了大鼠原位主动脉移植模型，作为一种研究移植血管病变（TVP）发生的简单模型。...

原位主动脉移植：一种研究慢性血管病变发生的大鼠模型

了解新型磁吻合技术在大鼠原位肝移植中重建肝上腔静脉的方法。该技术显著缩短无肝期，提高术后存活率至85%，为肝脏移植研究提供可靠模型。

一种采用新型磁性吻合技术进行肝上腔静脉重建的原位肝移植大鼠模型

探索更多视频