2018年5月3日
该方法可用于测量RNA合成。将5-溴尿苷加入细胞中,并掺入新合成的RNA。通过标记后立即提取RNA,随后对标记的RNA进行针对5-溴尿苷的免疫沉淀,并通过逆转录和定量聚合酶链式反应分析,从而测定RNA合成水平。
本实验的总体目标是通过溴尿苷标记和免疫沉淀来检测RNA合成的变化。该方法可通过测定RNA水平的变化是否由RNA合成改变所引起,从而帮助回答RNA代谢领域的关键问题。该技术的主要优势在于,它可应用于任何首选类型的细胞培养,且所用材料易于获取。
开始实验方案时,将3.5 × 10⁶个HEK293T细胞接种于10厘米培养皿中,加入10毫升生长培养基,以确保48小时后提取时获得总量超过40微克的RNA。将细胞维持在37°C、5% CO₂条件下培养。接种48小时后,吸除8毫升生长培养基,保留2毫升以防止细胞干燥。向生长培养基中加入2毫摩尔的溴尿苷(bromouridine)进行处理,并在重新加入含8毫升溴尿苷的生长培养基之前,先将细胞中残留的2毫升培养基移除。
接着,将细胞孵育一小时。孵育结束后,用 5 毫升 Hank's 缓冲液洗涤细胞,并加入 2 毫升 0.05% 胰蛋白酶消化细胞 5 分钟。加入 8 毫升培养基以终止反应,将细胞转移至 15 毫升离心管中,在 1,000 ×g 条件下离心 2 分钟。
然后,去除上清液,并使用RNA提取试剂盒从细胞沉淀中提取总RNA,用无RNase的水洗脱RNA。该技术非常灵敏,因此使用高质量的RNA至关重要。RNA提取是一个关键步骤,但借助现有的RNA提取试剂盒,该步骤也相对容易完成。
将要检测的样本数量加1(以补偿移液和涡旋混匀过程中的损失)作为一批次准备磁珠。通过涡旋混匀充分重悬抗小鼠IgG磁珠,并在无RNase的1.5毫升离心管中每样本取20 µL磁珠。将1.5毫升离心管置于磁力架上20秒,使磁珠吸附至管壁一侧。
弃去上清液,将离心管从磁力架上取下,用移液器加入40 µL 1×溴尿苷免疫沉淀缓冲液重悬磁珠。在台式离心机中离心2秒,再将离心管放回磁力架,弃去上清液。接下来,使用肝素封闭磁珠上的非特异性结合位点。
将珠子重悬于1毫升1倍溴尿苷-IP缓冲液中,另加1毫克/毫升肝素,混匀后旋转孵育30分钟。随后将珠子洗涤1次。将珠子重悬于1毫升1倍溴尿苷-IP缓冲液中,每样本加入1.25微克抗-α-溴脱氧尿苷抗体。
将珠子在旋转条件下孵育一小时。孵育结束后,用缓冲液洗涤珠子三次。将洗涤后的珠子重悬于每样品50 µL的1倍溴尿苷-IP缓冲液中,缓冲液中添加1 mM溴尿苷,然后继续在旋转条件下孵育30分钟。
旋转后,用一倍体积的溴尿苷免疫沉淀缓冲液(bromouridine-IP buffer)将磁珠洗涤三次,并将磁珠重悬于每份样品50 µL的上述缓冲液中。使用紫外-可见分光光度法测定RNA提取物中的RNA浓度,并将每份样品中的40 µg RNA用无RNase的水稀释至总体积为200 µL。将RNA在80°C下变性2分钟后,将样品在台式离心机中短暂离心。
离心后,向每个样品中加入200微升的两倍溴尿苷-IP缓冲液(含BSA和RNase抑制剂)。然后,向每个样品中加入50微升重悬并制备好的磁珠,室温旋转孵育1小时。孵育结束后,将磁珠洗涤四次。
用 200 微升洗脱缓冲液重悬珠子以洗脱 RNA,并迅速加入 200 微升 pH 6.6 的苯酚,以去除样品中任何非 RNA 分子。涡旋混匀样品,在台式离心机中以 25,000 × g 离心 3 分钟。随后,尽可能吸出上层相,约 190 微升,转移至含有 200 微升 pH 6.6 苯酚-氯仿的离心管中。
确保在各样本之间吸取相同体积的液体。涡旋混匀样本后进行离心。离心后,吸取约180微升的上层水相,并将其转移至含有200微升氯仿的离心管中,进行氯仿抽提。
涡旋混匀后离心样品。吸取约170微升的水相上层,转移至含有17微升3摩尔、pH为6的醋酸钠溶液的离心管中,以中和并沉淀水相中的RNA。接着,加入2微升糖原,糖原将与RNA共同沉淀,使沉淀物更易观察。
加入 500 µL 的 96% 乙醇以增强盐离子与 RNA 之间的结合,通过倒置离心管数次进行混匀。将离心管在 -20 °C 下过夜或在干冰中放置 15 分钟。离心冷却后的样品,弃去上清液,注意不要扰动沉淀,然后用 185 µL 的 75% 乙醇洗涤沉淀,以去除任何残留的盐分。
然后,在 4 °C 条件下以 25,000 × g 离心 5 分钟。彻底弃去上清液,注意不要扰动沉淀,将管盖打开,让沉淀在空气中干燥 5 至 10 分钟。用 10 µL 无 RNase 的水重悬沉淀,将水加在管壁侧面,以避免扰动沉淀。
AsPC-1 细胞分别用溴尿苷处理 0、1、2 和 4.5 小时,随后提取总 RNA 并进行溴尿苷免疫沉淀(bromouridine-IP)。在溴尿苷免疫沉淀的 RNA 中检测 GAS5 和 GAPDH,结果显示,与背景相比,1 小时标记即可达到 9 倍和 44 倍的变化。在 HEK293T 细胞中,2 毫摩尔的溴尿苷处理无论是 1 小时还是更长的 4 小时,均未引起任何形态学变化。
PLK-2 抑制导致输入样本和溴尿苷免疫沉淀物中的 α-突触核蛋白 mRNA 增加,表明稳态 RNA 的增加是由 RNA 合成增加所致。观看本视频后,您应充分了解如何使用溴尿苷标记新合成的 RNA,并对溴尿苷及其标记的 RNA 进行后续的免疫沉淀操作。
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该方法可通过溴尿苷标记和免疫沉淀来测量RNA合成,有助于确定RNA水平的变化是否源于RNA合成的改变。
利用5-溴尿苷标记和免疫沉淀直接测量RNA合成,可使生物制药团队区分转录生成与RNA降解,这是靶点验证和机制去风险化中的关键转折点。该方法通过阐明所观察到的RNA水平变化是否源于合成速率的改变,从而在早期发现阶段提供可预测的置信度。该方法与多种细胞系统及下游定量分析兼容,具有广泛的适用性。
该方法通过提供RNA合成的直接读出结果,融入从发现到临床前研究的连续过程,支持假设验证和定量分析。