2018年4月5日
Detection of circulating ribonucleic acid (cRNA) from blood is an unmet need in clinical diagnostics. Here we describe methods that characterize cRNA from non-small cell lung cancer patients using sensitive and specific digital polymerase chain reaction. The tests meet design requirements to detect fusion variants within 72 hours.
该程序的总体目标是通过液滴数字 PCR 从全血样本中分离和表征肿瘤来源的循环核糖核酸。这种方法可以帮助回答肿瘤诊断领域的关键问题。例如如何从循环 RNA 和血液样本中检测肿瘤衍生的基因融合转录物。
该技术的主要优点是它使用高度优化的方法来稳定、提取和检测低频和血液样本中存在的 RNA 变体。基于血液的检测是传统组织活检的补充,其优点是利用微创技术,可以快速提供结果。虽然这种方法可以提供对临床上显着突变和 NSCLC 的见解,但它也可以应用于需要可访问和快速识别全血中循环 RNA 分子的其他系统。
用于逆转录反应的循环 RNA 如文本方案中所述,从供体的血液样品中分离出来。使用市售的逆转录反应试剂盒(包括随机引物)将浓缩的循环 RNA 样品转化为 cDNA。包括无反向转汇酶对照样品和无 RNA 对照样品。
逆转录反应完成后,使用市售的 DNA 浓缩离心柱从反应混合物中分离 cDNA。此步骤有助于去除酶、引物和游离的脱氧核苷酸三磷酸。如果 cDNA 不会立即用于 PCR 反应,请在负 80 摄氏度下储存。
执行此程序时,请穿上一次性实验服和丁腈手套,并有专门的试剂制备区域。盖住探针以保护它们免受光线照射,因为连续的光线会使附着在探针上的荧光染料变白。首先制备 PCR 混合物,最终反应体积为 20 μL,如下表所示,但尚未添加 cDNA。
接下来,将混合物加盖避光运输到位于单独预扩增区域的 PCR 洁净罩中。将混合物分配到 PCR 板中。将要检测的 cDNA 添加到 PCR 混合物中。
用可拆卸的板密封剂覆盖板。短暂离心板以收集孔底部的样品。在摇板机上以较低的设置混合 10 秒钟。
再次短暂离心板以收集孔底部的样品。在执行手动液滴生成之前去除板密封剂。加载样品时,尽量减少移液器吸头中的气泡,然后将液滴从小柱缓慢转移到板中,以防止液滴损坏。
小心地将 20 μL PCR 混合物转移到液滴发生柱上的样品孔中。加入 70 微升液滴生成油。盖上橡胶垫圈,将小柱转移到手动液滴发生器中,以开始产生液滴。
液滴生成后,使用制造商推荐的吸头将液滴转移到新的 PCR 板中。缓慢吸液和分配液滴,每个液滴需要 5 到 6 秒,不要将吸头末端接触液滴小柱或板。用铝箔板密封机密封板。
使用以下设置在热循环仪中进行 PCR。热循环仪运行完成后,使用微滴读数仪读取板。为微孔板检测仪软件创建板布局,识别对照和样品的位置,并加载到软件中以开始读取。
使用市售软件分析微孔板读取结果。首先导航到分析菜单以查看二维或 2D 振幅图。通过检查快捷批处理数据来评估数据的总体质量。
使用 events 菜单,评估接受的事件总数的数据。每个井应有超过 10, 000 个事件。如果不是,则必须仔细评估数据是否存在其他问题。
接下来,检查数据中是否有令人讨厌的荧光振幅。重复样品之间的显著振幅差异和浓度差异表明样品处理或混合不良。记下在 45 度轴上带有喷雾图案的液滴簇,这表示液滴质量差或样品有问题。
首先检查阳性对照、无逆转录酶对照和无 RNA 对照的数据。选择所有对照样品并通过 2D 图检查簇质量以获得适当的阈值,液滴簇之间的明显分离应该是明显的。对于每个分析变体,根据对照孔设置阈值。
使用十字准线工具在 2D 图上设置阈值,以在 x 轴上将双阴性液滴群与对照基因群分开,在 y 轴上将变异基因群(如果存在)分开。单个样品的每个复制体孔中的一些副本。最后,将测试结果表示为检测到的变体拷贝数。
使用表达 SDC4-ROS1 融合和 CCDC6-RET 融合的细胞系,在人野生型 RNA 总 RNA 的背景下稀释,每个融合变异的检测限为 0.2%。未检测到 5% 脱离靶细胞系来源的 RNA 制备,证明检测特异性。在同一天的三次运行中测量高、中和低浓度的分析多重 RNA 标准品。
连续三天运行三次,由两名独立作员作。结果表明,准确检测了感兴趣的融合转录本以及内部对照基因 GUSB。每个临床样本也用阳性对照、无逆转录酶对照和无 RNA 模板对照进行运行。
融合变体沿 y 轴表示,而 GUSB 在 x 轴上。当在 21 天内评估批次对照时,在所有运行中观察到 ROS1 和 RET 的融合阳性液滴和 GUSB 对照基因液滴。在无逆转录酶对照中存在污染、无 RNA 对照中存在污染、液滴共享和聚结以及 PCR 条件优化不佳或 PCR 抑制的情况下,显示了代表性的次优结果。
一旦掌握,整个方案可以在大约 12 小时内完成。在尝试此程序时,使用处理 RNA 和人类血液样本的最佳实践非常重要。分离 RNA 后,可以进行其他方法,如下一代测序,以回答其他问题,例如鉴定新的融合变体。
观看此视频后,您应该对如何从全血和血浆中分离循环 RNA,然后处理回收的 RNA 以识别循环中的罕见变异(如 RET 和 ROS1)有很好的了解。开发后,这项技术为从全血中检测临床可作的突变铺平了道路。我们已经扩展了这些方法以检查流通中过度表达的转录本。
本文介绍了一种从非小细胞肺癌(NSCLC)患者血液样本中分离和表征循环核糖核酸(cRNA)的方法。该技术利用微滴数字PCR,可在72小时内检测基因融合转录本,满足了肿瘤学诊断中的关键需求。
这种基于血液的液体活检方法通过快速、微创地检测循环RNA中的ROS1和RET融合转录本,解决了肿瘤学诊断领域中一项重要的未满足需求。该方法支持非小细胞肺癌及其他实体瘤中早期治疗假设验证和基于生物标志物的患者分层。通过在72小时内提供结果,可加速靶点验证和先导物筛选工作流程中的决策进程。
该方法可融入从靶点验证到先导化合物筛选的整个发现流程,通过液体活检实现生物标志物评估,从而指导化合物筛选及后续机制研究。