2018年3月28日
本文所述的两种不同的3'端cDNA快速扩增(3' RACE)方案利用两种不同的DNA聚合酶,通过从不同癌细胞系提取的RNA来定位包含开放阅读框(ORF)片段、终止密码子以及转录本完整3'非翻译区(3' UTR)的序列。
本实验的总体目标是利用转录本特异性的嵌套引物,通过两轮连续的 PCR 扩增,并对纯化的 PCR 产物进行测序,从而确定 mRNA 转录本从 3' 末端至蛋白质编码区内部区域的序列。该方法有助于回答遗传学领域的关键问题,例如确定转录本的多聚腺苷酸化信号、终止密码子以及 3' 非翻译区的序列。该技术的主要优势在于,只要已知开放阅读框小片段的序列,即可应用于任何转录本。该技术的应用前景延伸至癌症诊断领域,因为它能够检测肿瘤特异性的融合基因和剪接变异体。
我们最初在鉴定出具有先前未表征的3'非翻译区的新型转录本时,产生了本方法的构想。开始实验前,将苯酚和异硫氰酸胍细胞混合物置于冰上解冻。解冻后,在PCR操作台中向微量离心管加入100微升氯仿。
将样品涡旋震荡10至15秒,直至混合物呈粉红色且不透明。接着,将样品置于冰上孵育15分钟。孵育结束后,在4°C条件下以20,800 g离心15分钟。
小心移除上层无色的水相,并将其转移至新的 1.5 毫升微量离心管中。随后进行沉淀步骤,向样品中加入等体积的异丙醇。向样品中加入 1 微升共沉淀剂,作为 RNA 的载体,并有助于在后续步骤中观察 RNA。
将样品在 80 摄氏度下孵育至少 4 小时。孵育结束后,将样品转移至预冷的离心机中,在 20,800 g 和 4 摄氏度条件下离心 35 分钟。离心后,RNA 将以管底的蓝色沉淀物形式出现。
小心地从样品中去除异丙醇。加入 500 µL 80% 乙醇,通过短暂涡旋振荡 3 秒使沉淀重悬。再次离心样品。
将样品中的乙醇完全去除,并让样品在空气中干燥约10分钟。样品干燥后,用35 µL无RNase的水重悬样品。然后将样品置于加热块上。
设置为 65 摄氏度,持续五分钟,以确保 RNA 完全溶解。加热后,立即将离心管置于冰上。对于 50 微升的最终反应体系,向新离心管中加入四微克总 RNA,并加水至总体积为 22 微升。
从10微摩尔的引物溶液中加入2微升的Oligo dT 25引物。从反转录试剂盒中加入2微升RNase抑制剂、8微升5×反应缓冲液、4微升10毫摩尔的dNTPs以及2微升反转录酶。设置一个不加反转录酶的反应体系作为阴性对照。
将试管在 42 摄氏度下孵育 1 小时。孵育结束后,立即将试管转移至冰上,然后运送至加热块。随后,在 75 摄氏度下加热试管 5 分钟。
在75摄氏度加热后,将离心管置于冰上。取2 µL cDNA转移至新的0.5 mL PCR管中。从10 mmol/L的引物溶液中加入1 µL上游引物和1 µL下游引物。
加入8.5微升无核酸酶水,使总体积达到12.5微升,然后加入12.5微升2x PCR预混液至凝胶主混合液中。随后,输入屏幕上列出的PCR热循环条件并运行PCR。PCR结束后,制备含溴化乙锭染色的1%琼脂糖凝胶。
在250毫升锥形瓶中,将1克琼脂糖溶解于100毫升三乙酸盐缓冲液或TAE缓冲液中。用微波炉加热煮沸溶液。让凝胶冷却1分钟,然后在通风橱中加入7.5微升溴化乙锭溶液。
轻轻旋转锥形瓶充分混匀。将内容物倒入水平凝胶电泳装置中,于通风橱内室温下静置至少30分钟,使凝胶完全凝固。用1×TAE缓冲液覆盖凝胶,随后将10微升PCR产物与3至5微升DNA分子量标准品一同上样至琼脂糖凝胶孔中。
以175伏电压电泳10分钟。在第一次PCR反应中,取1微升cDNA加入PCR管中,再加入5微升10x Pfu反应缓冲液。加入1微升第一轮嵌套正向引物、1微升T7 Oligo dT 25引物,以及来自10毫摩尔溶液的1微升dNTPs。
加入40微升水,使总体积达到49微升。加入1微升Pfu DNA聚合酶,充分混匀。然后进行PCR反应。
接下来,准备第二次PCR反应。将第一次PCR反应产物的2微升转移至新的PCR管中,并加入5微升10x Pfu Ultra II反应缓冲液。然后加入1微升第二轮巢式PCR引物、1微升T7引物和1微升dNTPs。
加入39微升水,使总体积达到49微升,再加入1微升Pfu DNA聚合酶。使用与第一次PCR相同的PCR程序进行扩增。或者,在两次不同的PCR中,可以使用嵌合DNA聚合酶代替Pfu DNA聚合酶。
取五到十微升第二次PCR产物,在琼脂糖凝胶上进行电泳。最后,使用成像仪观察结果。该琼脂糖凝胶显示了两个使用相同正向引物但不同反向引物的PCR产物,以及一个具有独特正向和反向引物的独立PCR产物。
用于基于PCR反应的最佳引物是能够产生一条明确PCR产物的引物。尽管在3'端RACE中采用了不同的PCR循环条件,使用Pfu DNA聚合酶和嵌合DNA聚合酶进行的第二次PCR反应所产生的PCR产物大小相同。逆转录酶阴性对照显示,用于cDNA合成以及后续下游反应的RNA中均无基因组污染。
将凝胶纯化的PCR产物送样进行测序。通过序列色谱图中一条典型的Sanger测序结果,可确定终止密码子、推测的多聚腺苷酸化信号序列、位点以及三端RACE产物中poly A尾的位置。在进行该实验操作时,务必始终佩戴防护装备和手套。
此外,试剂管和其他一次性耗材应使用无菌的 DNase 和 RNase。请注意,使用苯酚和氯仿可能具有极高危险性。进行本实验操作时,务必采取预防措施,例如在通风橱中使用这些试剂,并将废弃物放入指定的废液容器中。
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本文介绍了两种利用不同DNA聚合酶的3' RACE技术方案,用于从癌细胞系中定位mRNA序列。重点在于鉴定转录本的开放阅读框、终止密码子以及3'非翻译区(3' UTR)。
从 mRNA 的 3' 端向编码区绘制转录本结构图谱,能够精确表征 mRNA 异构体,这是肿瘤学药物发现中靶点验证的关键步骤。通过鉴定肿瘤特异性的融合基因和剪接变异体,该方法有助于机制层面的风险排除,并提高早期靶点筛选的预测可信度。该策略通过将分子发现与 miRNA 结合位点和富含 AU 区域等影响转录本稳定性的功能元件相联系,增强了转化研究的连续性。
该方法适用于从靶点鉴定到先导化合物优化的整个发现流程,尤其在转录本完整性影响靶点可成药性或生物标志物潜力时具有重要意义。