Name: 成年日本血吸虫细胞外囊泡的分离与鉴定 (视频) | JoVE Journal
Uploaded: 2018-05-22T13:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 37 s
Description: 学习从体外培养的成年日本血吸虫培养基中分离细胞外囊泡的方法。该技术通过温和洗涤和重力沉降减少寄生虫应激，确保获得生理状态下的囊泡分泌，为研究寄生虫生物学和宿主相互作用提供可靠基础。

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本研究部分或全部得到了国家自然科学基金（31472187 和 31672550）以及中国农业科学院农业科技创新计划的支持。

所有动物实验均经中国农业科学院上海兽医研究所本地伦理委员会批准（许可证编号：SHVRIAU-14-0101）。
1. 体外 培养 血吸虫
注意：&#160;血吸虫 具有生物危害性。操作蠕虫、血吸虫悬浮液或其他相关生物材料时，工作人员应始终佩戴乳胶手套。新西兰兔通过感染约2,000条尾蚴建立模型。 通过 腹部暴露。从感染的兔子体内采集肝脏阶段的血吸虫。 S. japonicum 感染后28天通过灌注肝门静脉和肠系膜静脉收集尾蚴。虫体采集步骤已在先前报道小鼠研究的相关文献中提及。18.
<ol>
	<li>在500 mL烧杯中收集寄生虫。用200 mL预热（37 °C）的PBS（pH 7.4）彻底且轻柔地清洗3次。</li>
	<li>每个90 mm培养皿中分离约200对虫体。然后用50 mL预热（37 °C）的RPMI-1640培养基（含100 U青霉素和100 mg/mL链霉素）彻底且轻柔地清洗2次。</li>
	<li>将寄生虫置于40 mL预热的不含抗生素的RPMI-1640培养基中&#160;，在37 °C、5% CO2条件下，以约5对虫/mL的密度在90 mm培养皿中培养2小时。 
	注意事项： RPMI 1640培养基不应含有血清，否则会引入外源性细胞外囊泡。</li>
</ol>
2. 预处理条件培养基
<ol>
	<li>收集培养基，于 4 °C 下以 2,000 × g 离心 30 分钟，以去除虫卵和虫体皮层碎片。</li>
	<li>将上清液转移至新的离心管中，使用 0.22 µm 注射器滤器过滤溶液。</li>
	<li>将滤过的溶液收集至透析袋中（分子量截留值：3.5 kD），并在 4 °C 下用 8% PEG8000 溶液透析过夜。 
	注意事项： 此步骤对于富集 SjEVs 以提高 SjEVs 分离产量至关重要。</li>
</ol>
3. SjEVs 的分离
<ol>
	<li>将透析后的溶液转移至新离心管中，然后加入总体积0.5倍的外泌体提取试剂。</li>
	<li>通过涡旋振荡或反复吹打充分混匀溶液，确保其均匀一致。</li>
	<li>在2 °C至8 °C条件下孵育过夜。</li>
	<li>在2 °C至8 °C条件下，以15,000 × g离心1小时。</li>
	<li>吸除并弃去上清液。 
	注意事项：囊泡（EVs）存在于管底的沉淀中（大多数情况下不可见）。</li>
	<li>用2 mL PBS重悬EVs沉淀，随后将EVs溶液保存于-80 °C，待后续分析使用。</li>
</ol>
4. 通过蛋白质印迹法对细胞外囊泡进行表征
<ol>
	<li>测定SjEVs样品的蛋白浓度， 例如， 通过BCA法测定。</li>
	<li>在22.5 µL RIPA裂解缓冲液中制备10–20 µg的EVs，加入7.5 µL 4×上样缓冲液，于95 °C加热5分钟。</li>
	<li>通过12% SDS-PAGE凝胶分离SjEVs蛋白。</li>
	<li>将蛋白质转移至PVDF膜，用抗CD63抗体（1:1,000稀释）孵育，随后用抗兔IgG-HRP（1:5,000稀释）孵育。</li>
	<li>使用ECL检测试剂进行膜显影，并通过化学发光成像系统检测信号。</li>
</ol>
5. 通过透射电子显微镜对细胞外囊泡进行表征
<ol>
	<li>将2 µL分离的SjEVs加入200目铜网（镀有formvar膜）上，室温下晾干。</li>
	<li>用2%磷钨酸染色1分钟，然后室温下晾干。</li>
	<li>将铜网装载到透射电子显微镜的样品台上，暴露于80 kV电子束下进行成像。</li>
</ol>
6. SjEVs 用 PKH67 标记及细胞摄取实验
注意事项：除非另有说明，所有后续步骤均在室温（20 - 25 °C）下进行。
<ol>
	<li>将5 µg SjEVs溶液转移至锥底聚丙烯管中，并加入RPMI 1640培养基调整体积至12 mL。</li>
	<li>在4 °C条件下，以110,000 × g离心90分钟，使SjEVs沉淀。</li>
	<li>离心后，小心吸除上清液。 
	注意：不应将PKH67乙醇染料直接加入SjEV沉淀中，否则会导致染色不均并降低细胞活力。</li>
	<li>通过向SjEV沉淀中加入1 mL稀释液C，制备2x&#160;EV悬浮液；为确保完全分散，用移液器轻轻吹打重悬。</li>
	<li>在使用稀释液C进行染色前，立即在聚丙烯离心管中将2 µL PKH67乙醇染料溶液加入1 mL稀释液C中，充分混合，制备新鲜的2x&#160;染料溶液。</li>
	<li>迅速将1 mL 2x EV悬浮液（步骤6.4）加入1 mL 2x&#160;染料溶液（步骤6.5）中，并立即通过移液操作充分混匀样品。</li>
	<li>在室温下孵育混合物4分钟。</li>
	<li>加入4&#160;mL FBS终止染色，随后孵育1分钟。</li>
	<li>加入RPMI1640培养基调整体积至12 mL，然后在4 °C条件下以110,000 × g离心90分钟。</li>
	<li>弃去上清液，并加入RPMI1640培养基重悬PKH67标记的SjEV沉淀。</li>
	<li>在4 °C条件下以110,000 × g离心90分钟进行一次洗涤，然后加入PBS重悬SjEVs沉淀。</li>
</ol>
7. SjEVs 细胞摄取实验
<ol>
	<li>在6孔板中接种哺乳动物细胞，如NCTC克隆1469细胞或HEK293T细胞（每孔2×105个细胞），并在培养箱中过夜培养。</li>
	<li>加入5 µg PKH67标记的SjEVs，于37 °C继续培养2–4小时。</li>
	<li>孵育结束后，吸除培养基，用PBS洗涤细胞两次。</li>
	<li>用4%甲醛溶液固定细胞15分钟，再用PBS洗涤两次。</li>
	<li>使用4′,6-二脒基-2-苯基吲哚（DAPI）对细胞核进行染色。</li>
	<li>使用荧光显微镜观察细胞。</li>
</ol>

<ol><li>Tetta, C., Ghigo, E., Silengo, L., Deregibus, M. C., Camussi, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Extracellular+vesicles+as+an+emerging+mechanism+of+cell-to-cell+communication%5BTitle%5D)+AND+%22Endocrine%22%5BJournal%5D)">Extracellular vesicles as an emerging mechanism of cell-to-cell communication.</a> Endocrine. 44 (1), 11-19 (2013).</li>
<li>Abels, E. R., Breakefield, X. O. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Introduction+to+Extracellular+Vesicles%3A+Biogenesis%2C+RNA+Cargo+Selection%2C+Content%2C+Release%2C+and+Uptake%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Mol+Neurobiol%22%5BJournal%5D)">Introduction to Extracellular Vesicles: Biogenesis, RNA Cargo Selection, Content, Release, and Uptake.</a> Cell Mol Neurobiol. 36 (3), 301-312 (2016).</li>
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<li>Sotillo, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Extracellular+vesicles+secreted+by+Schistosoma+mansoni+contain+protein+vaccine+candidates%5BTitle%5D)+AND+%22Int+J+Parasitol%22%5BJournal%5D)">Extracellular vesicles secreted by Schistosoma mansoni contain protein vaccine candidates.</a> Int J Parasitol. 46 (1), 1-5 (2016).</li>
<li>Nowacki, F. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Protein+and+small+non-coding+RNA-enriched+extracellular+vesicles+are+released+by+the+pathogenic+blood+fluke+Schistosoma+mansoni%5BTitle%5D)+AND+%22J+Extracell+Vesicles%22%5BJournal%5D)">Protein and small non-coding RNA-enriched extracellular vesicles are released by the pathogenic blood fluke Schistosoma mansoni.</a> J Extracell Vesicles. 4, 28665(2015).</li>
<li>Wang, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Exosome-like+vesicles+derived+by+Schistosoma+japonicum+adult+worms+mediates+M1+type+immune-+activity+of+macrophage%5BTitle%5D)+AND+%22Parasitol+Res%22%5BJournal%5D)">Exosome-like vesicles derived by Schistosoma japonicum adult worms mediates M1 type immune- activity of macrophage.</a> Parasitol Res. 114 (5), 1865-1873 (2015).</li>
<li>Koh, Y. Q., Almughlliq, F. B., Vaswani, K., Peiris, H. N., Mitchell, M. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Exosome+enrichment+by+ultracentrifugation+and+size+exclusion+chromatography%5BTitle%5D)+AND+%22Front+Biosci+%28Landmark+Ed%29%22%5BJournal%5D)">Exosome enrichment by ultracentrifugation and size exclusion chromatography.</a> Front Biosci (Landmark Ed). 23, 865-874 (2018).</li>
<li>Safdar, A., Saleem, A., Tarnopolsky, M. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+potential+of+endurance+exercise-derived+exosomes+to+treat+metabolic+diseases%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Rev+Endocrinol%22%5BJournal%5D)">The potential of endurance exercise-derived exosomes to treat metabolic diseases.</a> Nat Rev Endocrinol. 12 (9), 504-517 (2016).</li>
<li>Livshits, M. A., et al. <a target="_blank" href="https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/26616523">Isolation of exosomes by differential centrifugation: Theoretical analysis of a commonly used protocol.</a> Sci Rep. 5, 17319(2015).</li>
<li>Zhu, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Release+of+extracellular+vesicles+containing+small+RNAs+from+the+eggs+of+Schistosoma+japonicum%5BTitle%5D)+AND+%22Parasit+Vectors%22%5BJournal%5D)">Release of extracellular vesicles containing small RNAs from the eggs of Schistosoma japonicum.</a> Parasit Vectors. 9 (1), 574(2016).</li>
<li>Zhu, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Molecular+characterization+of+S.+japonicum+exosome-like+vesicles+reveals+their+regulatory+roles+in+parasite-host+interactions%5BTitle%5D)+AND+%22Sci+Rep%22%5BJournal%5D)">Molecular characterization of S. japonicum exosome-like vesicles reveals their regulatory roles in parasite-host interactions.</a> Sci Rep. 6, 25885(2016).</li>
<li>Lewis, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Schistosomiasis%5BTitle%5D)+AND+%22Curr+Protoc+Immunol%22%5BJournal%5D)">Schistosomiasis.</a> Curr Protoc Immunol. , Chapter 19 Unit 19 11(2001).</li>
<li>Cheng, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Circulating+miRNAs%3A+roles+in+cancer+diagnosis%2C+prognosis+and+therapy%5BTitle%5D)+AND+%22Adv+Drug+Deliv+Rev%22%5BJournal%5D)">Circulating miRNAs: roles in cancer diagnosis, prognosis and therapy.</a> Adv Drug Deliv Rev. 81, 75-93 (2015).</li>
</ol>

作者无任何利益冲突需要披露。

近期关于细胞外囊泡（EVs）的研究表明，血吸虫来源的EVs在宿主-病原体相互作用中发挥着重要作用3,9,12,16。为了进一步阐明其调控功能，从血吸虫中分离EVs至关重要。本文介绍了一种日本血吸虫（S. japonicum）EVs（SjEVs）的替代性分离方法。该方法可从成虫中获得粒径范围较广的SjEVs，大小介于100 nm至400 nm之间。后续的细胞摄取实验表明，按照本方案分离的EVs能够被受体细胞有效内化，且其携带的miRNA可能具有调控功能17。
不同类型的细胞均可分泌细胞外囊泡（EVs），这些囊泡也存在于多种体液中。19因此，在分离日本血吸虫EVs（SjEVs）的过程中，应避免人为引入外源性EVs。例如，...

细胞外囊泡（EVs）是一类由膜包裹的小型囊泡，内含多种蛋白质、脂质和核酸。近期研究表明，EVs在细胞间通讯中发挥关键作用，并参与调控多种生理过程，包括细胞发育、免疫调节、血管生成以及细胞迁移2,3,4,5。越来越多的证据表明，循环中的EVs、外泌体及其携带的miRNA可能作为某些疾病的潜在生物标志物6。
已有研究表明，多种原生动物（如Trichomonas vaginalis、Trypanosoma cruzi和Leishmania spp.）能够分泌细胞外囊泡（EVs）；此外，亦发现寄生性蠕虫可在活体宿主体内释放EVs7。寄生虫来源的EVs已被证实参与维持感染、致病性8以及免疫调节过程9。近期针对血吸虫属的研究，包括曼氏血吸虫（Schistosoma mansoni，S. mansoni）10,11&#160;和日本血吸虫（S. japonicum）12，均表明成虫可分泌类外泌体囊泡，这些囊泡可能参与特定生物学过程的功能调控。
迄今为止，已有多种方法用于分离细胞外囊泡，例如超速离心法、超滤法13、基于聚合物的试剂法、尺寸排阻色谱法以及免疫亲和分离法。这些不同方法各自具有优势和局限性14。通常认为，超速离心法是囊泡分离的金标准方法。然而，该方法存在可能导致细胞外囊泡聚集的局限性14。
在血吸虫中，已有数种用于分离细胞外囊泡（EV）的方法被报道：包括超速离心法11,12,10以及使用商业化EV分离试剂盒16，适用于多个发育阶段（如虫卵16、童虫11、成虫10,12,17）。鉴于微囊泡的大小范围较广，可从数百纳米至数千纳米不等，我们开发了一种替代方法，结合使用台式离心机、超滤技术和商业化EV分离试剂盒，用于从日本血吸虫（Schistosoma japonicum）成虫中分离EV。所分离的EV直径通常为100–400 nm，并能成功被受体细胞内化。

<table><tbody><tr><td>&lt;strong&gt;材料&lt;/strong&gt;</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>总外泌体分离试剂（来自细胞培养基）</td><td>ThermoFisher SCIENTIFIC</td><td>4478359</td><td>用于分离日本血吸虫细胞外囊泡</td></tr><tr><td>PKH67</td><td>Sigma-aldrich</td><td>MINI67</td><td>用于标记细胞外囊泡（Evs）</td></tr><tr><td>RPMI 1640 培养基</td><td>ThermoFisher SCIENTIFIC</td><td>11875119</td><td>用于寄生虫培养</td></tr><tr><td>青霉素-链霉素</td><td>ThermoFisher SCIENTIFIC</td><td>15140122</td><td></td></tr><tr><td>0.22&amp;mu;m 注射器滤器</td><td>Merck</td><td>SLGP033RB</td><td></td></tr><tr><td>SnakeSkin 透析管</td><td>Thermo SCIENTIFIC</td><td>68035</td><td></td></tr><tr><td>PEG8000</td><td>Sangon Biotech</td><td>A100159&amp;nbsp;</td><td></td></tr><tr><td>RIPA 裂解液</td><td>Beyotime</td><td>P0013B</td><td></td></tr><tr><td>EMD Millipore&amp;trade; Immobilon&amp;trade; 西部印迹化学发光 HRP 底物（ECL）</td><td>Fisher scientific</td><td>WBKLS0100&amp;nbsp;</td><td></td></tr><tr><td>DAPI</td><td>Cell Signaling Technology</td><td>4083</td><td></td></tr><tr><td>BCA 蛋白定量试剂盒</td><td>Beyotime</td><td>P0010</td><td></td></tr><tr><td>CD63 抗体</td><td>Sangon Biotech</td><td>D160973-0025</td><td></td></tr><tr><td>PVDF 膜</td><td>Bio-Rad</td><td>1704273</td><td></td></tr><tr><td>Formvar/碳支持膜 400 目</td><td>Ted Pella</td><td>01754-F</td><td></td></tr><tr><td>磷钨酸</td><td>Ted Pella</td><td>19402</td><td></td></tr><tr><td>抗小鼠 IgG-HRP</td><td>CWBIO</td><td>CW0102</td><td></td></tr><tr><td>NCTC 克隆 1469 细胞</td><td>ATCC</td><td>ATCC&amp;reg; CCL-9.1&amp;trade;</td><td></td></tr><tr><td>FBS</td><td>HyClone</td><td>SV30087.02</td><td></td></tr><tr><td>&lt;strong&gt;设备&lt;/strong&gt;</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>GE 化学发光成像系统</td><td>GE</td><td>ImageQuant LAS4000mini</td><td></td></tr><tr><td>透射电子显微镜</td><td>Hitachi</td><td>H-7600</td><td></td></tr><tr><td>Milli-Q 超纯水系统</td><td>Milli-Q</td><td>Milli-Q Elix</td><td></td></tr><tr><td>Eppendorf 离心机&amp;nbsp;</td><td>Eppendorf</td><td>Centrifuge 5804R</td><td></td></tr><tr><td>Zetasizer Nano 粒径分析仪</td><td>Malvern</td><td>Zetasizer Nano ZS&amp;nbsp;</td><td></td></tr><tr><td>超速离心机</td><td>Beckman</td><td>Optima L-100 XP Ultracentrifuge</td><td></td></tr><tr><td>培养箱</td><td>ESCO</td><td>CCL-107B</td><td></td></tr><tr><td>显微镜</td><td>Zeiss</td><td>Zeiss Axin Observer Z1</td><td></td></tr></tbody></table>

成体细胞外囊泡的分离与表征 日本血吸虫

Isolation and Characterization of Extracellular Vesicles from Adult Schistosoma japonicum

细胞外囊泡（EVs）是由多种细胞释放到细胞外微环境中的膜性囊泡，代表一群大小在40至1,000 nm之间的异质性囊泡。大量证据表明，EVs在病原体与宿主相互作用中发挥重要的调控作用。深入理解血吸虫EVs有助于揭示血吸虫与宿主相互作用的分子机制，从而为开发抗血吸虫病的新策略提供依据。本文旨在通过提供一种从成虫中分离和表征EVs的实验方案，进一步研究EVs在血吸虫中的功能 日本血吸虫 (S. japonicum）。EVs 从 体外 采用离心法结合商用外泌体分离试剂盒从培养基中分离外泌体。所分离的 S. japonicum SjEVs 通常直径为 100 - 400 nm，可通过透射电子显微镜和蛋白质印迹法进行表征。使用 PKH67 荧光染料标记的 SjEVs 已证明其可被受体细胞内化。总体而言，本实验方案为从成虫血吸虫中分离细胞外囊泡提供了一种替代方法；所获得的 SjEVs 可适用于功能分析。

为了定量评估采用所述方案分离的日本血吸虫细胞外囊泡（SjEVs）的产量，我们使用BCA蛋白检测试剂盒测定从28天成虫获得的SjEVs的蛋白浓度。如表1所示，每100 mL培养基中分离得到的SjEVs蛋白浓度介于208 µg至250 µg之间（表1）。通过Malvern纳米颗粒分析仪测定的粒径结果显示，分离的SjEVs粒径范围为100 nm至400 nm，其中数量最多的群体粒径约为220 nm（图1）。进一步通过透射电子显微镜对SjEVs进行表征，结果显示EVs呈圆形囊泡状结构，直径约为100–200 nm（图2）。Western blot分析表明，所分离的SjEVs可被CD63抗体识别，CD63是典型的细胞外囊泡标志物（图3）。荧光显微镜观察显示，PKH67标记的SjEVs可被NCTC克隆1,469细胞摄取，并主要分布于受体细胞...

在此，我们介绍一种用于描述细胞外囊泡（EVs）分离的实验方案 体外 成人培养基 日本血吸虫.

细胞外囊泡（EVs）是由多种细胞释放到细胞外微环境中的膜性囊泡。EVs 代表了一类……

本实验的总体目标是从体外培养的成年日本血吸虫培养基中分离出细胞外囊泡。该方法可高效地从体外培养的成年日本血吸虫培养基中分离细胞外囊泡（EV）。该技术的主要优势在于能够高效地从短期体外培养基中分离细胞外囊泡，从而最大限度地减少因应激导致的非生理性EV分泌。演示将由我实验室的技术员 Juntao Liu 进行。将寄生虫收集到一个 500 毫升的烧杯中，用 200 毫升温热的 PBS 轻柔且彻底地洗涤三次。每次洗涤时间应短暂，并利用重力沉降法分离寄生虫。接下来，将约200对线虫接种到90毫米的培养皿中。在培养皿中，使用重力沉降法再洗涤寄生虫两次。洗涤时使用添加了青霉素-链霉素的温热RPMI培养基。用不含抗生素的40毫升培养基替换第二次洗涤液。然后，在37摄氏度、5%二氧化碳条件下培养寄生虫2小时。2小时后，将培养基从培养板转移至离心管中，随后在4摄氏度、2,000 g条件下离心30分钟，收集虫卵和虫体碎片。然后，收集上清液并转移至新的离心管中。接着，使用孔径为0.22微米的注射器滤器过滤上清液，并将滤过的溶液收集到截留分子量为3.5千道尔顿的透析袋中。随后，将溶液在4°C条件下用8% PEG8000溶液透析过夜。此步骤对于提高细胞外囊泡的产量至关重要。第二天，将透析后的溶液转移至新管中，并加入总体积0.5倍的外泌体总提取试剂。混匀溶液至均一状态，并在约5 °C条件下孵育过夜。次日早晨，在约5°C条件下，以15,000 g离心混合物一小时。随后吸出并弃去上清液，将EV沉淀重悬于2毫升PBS中。沉淀可能不可见。进行蛋白质印迹分析时，首先测定样品的蛋白浓度，例如使用BCA法。然后，在22.5微升RIPA裂解缓冲液中加入10至20微克的EVs。接着，加入7.5微升4倍上样缓冲液，并在95摄氏度下加热混合物5分钟。热处理后，在12% SDS-PAGE凝胶上分离细胞外囊泡蛋白。电泳完成后，将蛋白转印至PVDF膜上。用抗CD63抗体以1:1,000的稀释比例孵育膜。然后，以1:5,000的稀释比例用抗兔IgG-HRP处理膜。接着使用ECL检测试剂显影膜，并在化学发光成像系统上进行分析。首先将五微克样品转移至聚丙烯超速离心管中，并用RPMI-1640培养基调整体积至12毫升。然后，在 4 摄氏度下以 110,000 g 离心样品 90 分钟。离心后，小心吸出并弃去上清液。接着，通过向沉淀中加入 1 毫升稀释液 C，制备 2X 细胞外囊泡悬液。通过轻柔吹打重悬沉淀。现在，配制新鲜的2倍染色液：在微量离心管中，将2微升PKH67乙醇染料加入1毫升稀释液C中，充分混匀。然后，通过混合两种溶液并在室温下孵育四分钟对样品进行染色。接着，加入 4 毫升胎牛血清（FBS）终止染色，并静置一分钟。然后，加入 RPMI-1640 培养基将体积调至 12 毫升，离心悬浮液以分离染色的囊泡。弃去上清液

isolation-characterization-extracellular-vesicles-from-adult

Research

科研

JoVE Journal

Immunology and Infection

免疫学与感染

成年日本血吸虫细胞外囊泡的分离与鉴定

本研究描述了一种从胚胎干细胞中分离富含携带免疫刺激性粒细胞-巨噬细胞集落刺激因子的外泌体富集型细胞外囊泡的方法。...

从胚胎干细胞中分离富含粒细胞-巨噬细胞集落刺激因子的外泌体富集型细胞外囊泡

本文介绍了生成、纯化和定量的方法 秀丽隐杆线虫...

纯化与分析 秀丽隐杆线虫 细胞外囊泡

本方案描述了从蜱虫唾液腺及纯化的细胞外囊泡中分离microRNA的方法。该方法是一种通用流程，结合了常用的试剂和耗材。该方法还可使用少量蜱虫样本，获得高质量的microRNA，可直接用于测序。...

蜱虫中微小RNA的分离

关键词：微小RNA，蜱虫，RNA提取，分子生物学，非编码RNA 离体 唾液腺培养与细胞外囊泡

本文介绍了一种通过优化的差速超速离心法从小鼠肝癌组织中富集小细胞外囊泡的方法。...

一种源自肝癌组织的小细胞外囊泡富集方法

本文介绍了一种利用I型胶原酶消化与超速离心相结合的方法，从小鼠脾脏中分离外泌体的实验方案。...

从小鼠脾组织中分离和表征外泌体

本方案旨在通过机械剥离、酶解离、过滤和差速超速离心法，从啮齿类动物肌肉组织中分离和纯化骨骼肌间质细胞外囊泡（SkM-EVs）。该方法具有良好的重复性和可靠性。所获得的SkM-EVs有助于研究肌肉稳态及肌肉相关疾病，并有望作为诊断生物标志物或治疗载体加以应用。...

骨骼肌间质细胞外囊泡的酶法分离

本文描述了in vitro条件下多房棘球绦虫（Echinococcus...

小细胞外囊泡的分离及其树突状细胞摄取 细粒棘球绦虫

本方案描述了从小鼠骨骼肌和骨髓中分离小细胞外囊泡的方法，该方法结合酶消化和尺寸排阻色谱技术，能够从结构复杂且产量较低的组织中可重复地回收富含囊泡的组分，用于后续分子分析。...

通过尺寸排阻色谱法从小鼠骨骼肌和骨髓中分离小细胞外囊泡

我们描述了一种体外培养扁形寄生虫曼氏血吸虫（Schistosoma mansoni）幼虫（schistosomula）的方法，该方法通过从淡水螺类中间宿主光滑双脐螺（Biomphalaria...

尾蚴转化与 体外 培养 曼氏血吸虫 童虫

Schistosoma mansoni 虫卵是辅助性 T 细胞 2 型（Th2）免疫反应的强效刺激物，这类免疫反应是寄生虫感染、哮喘及过敏性炎症的特征。本方案利用 S. mansoni 虫卵注射，在肺部诱导由 CD4+ Th2...

使用鸡蛋从 曼氏血吸虫 作为一个 体内 寄生蠕虫诱导的肺部炎症模型

学习从体外培养的成年日本血吸虫培养基中分离细胞外囊泡的方法。该技术通过温和洗涤和重力沉降减少寄生虫应激，确保获得生理状态下的囊泡分泌，为研究寄生虫生物学和宿主相互作用提供可靠基础。

成体细胞外囊泡的分离与表征日本血吸虫

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成体细胞外囊泡的分离与表征 日本血吸虫

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