2018年4月16日
本文描述了一种研究5-氨基乙酰丙酸介导的光动力疗法(ALA-PDT)对微生物抗菌作用的实验方案 金黄色葡萄球菌 生物膜。该方案可用于开发一种 体外 为将来研究光动力疗法(PDT)治疗细菌生物膜提供模型。
本实验的总体目标是评估5-氨基乙酰丙酸(或称ALA)介导的光动力疗法对金黄色葡萄球菌生物膜的抗微生物效果。该方法能够解答细菌生物膜研究领域中的关键问题,即光动力细胞修复如何作为控制生物膜感染的替代治疗手段。该方法的一个优势在于,经过极少调整后,其有望应用于其他种类的细菌。
在96孔板中形成生物膜时,首先将一株来自–80 °C保存的金黄色葡萄球菌(Staphylococcus aureus)USA300强生物膜形成临床菌株,分别接种于多个含有5 mL胰蛋白胨大豆肉汤(Tryptone Soya Broth,TSB)培养基的14 mL圆底试管中,在37 °C摇床中过夜培养。当菌液达到稳定期后,离心收集菌体,并用PBS重悬菌体沉淀,调整浓度至2 × 10⁹ CFU/mL。将上述菌悬液用添加0.5%葡萄糖的TSB培养基按1:200比例稀释,随后向每个多聚苯乙烯细胞培养处理的96孔微量培养板中,每个实验组每株菌接种3个复孔,每孔200 µL,在37 °C、有氧、不振荡条件下培养24小时。
第二天,用 PBS 轻柔洗涤各孔三次,避免破坏生物膜。接着,向相应的实验孔中加入 200 µL 新鲜配制的 ALA,并将培养板置于 25 °C 条件下避光孵育 1 小时。然后使用发光二极管以 100 mW/cm² 的光强照射培养板 1 小时。
光疗处理结束后,为计算每组中活菌的数量,用 PBS 轻轻洗涤每个孔三次,以去除未贴壁的细胞。然后使用移液枪头刮取贴壁细菌,将每组的细胞收集至一个离心管中,每种实验条件对应一个离心管,并通过离心形成菌体沉淀。
将沉淀物重悬于1毫升含0.25%胰蛋白酶的PBS溶液中,37°C孵育90分钟,随后再次离心。将沉淀物重悬于200微升PBS中,对每组样品进行10倍系列稀释,取5微升稀释后的样品分别接种至胰蛋白胨大豆琼脂平板上。然后将平板在37°C孵育16小时,计数每组的细菌菌落数量。
通过共聚焦激光扫描显微镜评估生物膜时,按照所示方法生成并照射生物膜。用 PBS 清洗照射后的生物膜,并分别使用一毫升绿色荧光核酸和染色体原核细胞膜通透性染料以及一毫升一微摩尔的碘化丙啶对活细胞和死细胞进行染色。染色 20 分钟后,去除多余染料,使用 63 倍、1.4 数值孔径的油浸物镜,在共聚焦激光扫描显微镜下对生物膜进行成像。
与对照组单次处理或未经处理的生物膜细菌活性相比,经ALA光动力疗法双重处理后,生物膜细菌的活性在所有四种测试菌株中均有所下降。共聚焦激光扫描显微镜对生物膜的观察结果证实了这一发现,在ALA光动力疗法双重处理组中,大多数细胞呈碘化丙啶阳性。在进行该操作时,需注意ALA处理的细菌全程应在避光条件下操作,且应轻柔处理材料上的生物膜,以避免破坏已形成的生物膜结构。
该方法可用于细菌感染领域的研究人员在体外探索光动力疗法对细菌生物膜的抗菌作用。
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本手稿描述了一种研究5-氨基乙酰丙酸介导的光动力疗法(ALA-PDT)对金黄色葡萄球菌生物膜抗菌作用的实验方案。该方法可针对细菌生物膜领域中关于控制生物膜感染的替代治疗策略等关键问题提供解答。
该体外模型可用于评估光动力疗法(PDT)对生物膜相关感染的作用机制,这在抗菌药物研发中日益成为一项重大挑战。通过定量菌落形成单位并利用共聚焦显微镜观察细胞活性,该检测方法可在药物发现早期提供可重复、定量的检测结果,从而降低PDT候选药物的开发风险。该平台支持抗生物膜策略的靶点验证和先导化合物筛选,尤其适用于金黄色葡萄球菌及其他可形成生物膜的病原体。
该检测适用于抗菌药物发现的全过程,从靶点验证到先导化合物优化,直至临床前药效测试,尤其适用于以生物膜为靶向的治疗模式。