August 22nd, 2018
在这里, 我们提出了一种在体内测定由 GM-脑脊液骨髓 (BM) 衍生树突状细胞 (CD4) 诱导的天真的 t 细胞 (t 细胞) 活化、增殖和 Th1 分化的方法。此外, 该协议还描述了 BM 和 t 细胞分离、dc 生成和 dc 和 t 细胞的移植。
这种方法可以帮助回答免疫学领域关于 T 细胞活化、增殖和 Th1 分化以及抗原呈递细胞刺激适应性免疫的关键问题。该技术的主要优点是它允许研究体内环境,同时允许在体外进行细胞作。这种方法的视觉演示至关重要,因为仅通过文本说明很难掌握器官和骨骼的分离以及过继转移步骤。
对于骨髓细胞分离,用 70% 乙醇对成年小鼠的后肢进行消毒,并使用剪刀在后肢上做一个横向皮肤切口。将剪刀插入腿部内侧,用剪刀剪开皮肤,直到后肢的起点。然后用镊子将皮肤与腿部分开。
使用剪刀将肌肉与股骨和胫骨分开,并使用剪刀分离髋关节,折断股骨头。然后在不折断骨端的情况下将股骨与胫骨分开,并将骨头放入冰上完全培养基的培养皿中。收获所有骨头后,用手术刀小心地切掉每块骨头的近端和远端,并使用配备有 25 号针头的 1 毫升注射器用总体积为 10 毫的温热完全 RPMI 培养基反复冲洗骨头。
冲洗完所有骨头后,将培养皿中的所有内容物转移到装有 70 微米孔径尼龙网过滤器的 50 毫升锥形管中,然后通过轻轻搅拌和移液小心地去除任何碎屑和细胞团。通过离心收集骨髓细胞。用移液将沉淀重悬于一毫升的 4 摄氏度红细胞裂解缓冲液中,并在冰上孵育混合物 5 分钟。
孵育结束时,用 10 毫升 PVS 停止裂解,并将沉淀重悬于 25 毫升完全培养基中进行第二次离心。然后将细胞重悬于 5 毫升新鲜完全培养基中进行计数,并再次离心细胞。对于次级淋巴组织细胞分离,收集 OT-II 转基因小鼠的腹股沟、腋窝、臂、宫颈和中淋巴结和脾脏,并将次级淋巴组织转移到含有 10 毫单位完全 RPMI 培养基的塑料培养皿中。
收获所有组织后,将淋巴结和脾脏转移到 50 毫升锥形管中的 70 微米细胞过滤器中,并使用注射器柱塞使组织匀浆。用最多 15 毫单位的培养基冲洗过滤器,然后离心使细胞离心。然后根据标准方案,通过磁珠分选分离 CD4 阳性 T 细胞。
对于初始 OT-II CD4 阳性 T 细胞的体内活化,根据标准方案,用活细胞示踪染料标记磁珠分离的 T 细胞,并以每 100 微升 PBS 浓度 10 至 6 个细胞重悬标记的细胞。然后通过尾静脉过继转移每只动物 100 μL 细胞。注射前预热小鼠,以确保尾静脉充分扩张以允许输送整个细胞体积。
24 小时后,通过皮下注射到每个 T 细胞注射动物的脚垫中,将 10 个到第五个 LPS 成熟的 OVA 肽负载树突状细胞。如图所示,在收养激发后 2 天和 5 天,从受体动物身上收获瘟立淋巴结用于组织处理和 T 细胞分离。为了分析 T 细胞活化,用针对 CD4、CD69 和 CD25 的荧光抗体对第二天分离的细胞进行染色,以通过流式细胞术确定受体 CD4 阳性群体中 CD64 阳性、CD25 阳性 T 细胞的百分比。
为了评估 T 细胞增殖,用适当的抗 CD4 荧光抗体对第 5 天分离的细胞进行染色,并通过流式细胞术分析供体 CD4 阳性 T 细胞群中重要细胞示踪染料信号的衰减。为了评估 Th1 分化,在 96 孔板中,在 200 微升完全培养基中,每 10 天到 5 天接种 5 个分离的 T 细胞,每孔 5 个分离的 T 细胞。然后将板置于 37 摄氏度的细胞培养箱中 6 小时,向每个孔中加入布雷菲德菌素 A 以阻断刺激的最后 4 小时内细胞因子分泌。
孵育结束时,离心板,快速倒置弃去上清液。用抗 CD4 抗体对细胞进行染色,然后在室温下用 100 μL 2% 多聚甲醛和 1% 蔗糖固定 20 分钟。在 4 摄氏度下用 50 μL 透化缓冲液透化细胞 30 分钟,然后用每孔 150 μL PBS 离心洗涤。
接下来,根据标准方案,在室温下对感兴趣的细胞内细胞因子进行 30 分钟染色,然后每孔用 150 μL 补充有 1% 皂苷的 PBS 离心洗涤两次。然后,通过流式细胞术分析细胞。LPS 刺激后 GM-CSF 骨髓来源的树突状细胞的流式细胞术分析显示,成熟标志物(如 MHCII、CD80 和 CD86)上调。
幼稚 CD4 阳性 OT-II T 细胞在过继转移到受体动物后通过上调 T 细胞活化标志物、表面表达和多轮细胞分裂而被激活。激活后,增殖的 CD 阳性 OT-II T 细胞表现出 Th1 表型,如其细胞内干扰素 γ 表达所示。一旦掌握,如果执行得当,这项技术可以在 8 小时内完成。
在尝试此程序时,请务必记住在实验前一天准备好所有试剂和材料。开发后,这项技术为免疫学研究人员研究小鼠的树突状细胞和 T 细胞铺平了道路。看完这个视频,你应该对如何从小鼠的股骨和胫骨中分离骨髓,以及如何将 T 细胞和树突状细胞转移到受体动物有一个很好的了解。
不要忘记,使用针头、手术刀或剪刀等锋利的工具可能非常危险,因此在执行这些程序时应始终采取预防措施,例如使用适当的手指保护装置。
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本文介绍了一种用于体内测定GM-CSF骨髓源性树突状细胞诱导的na茂ve CD4 T细胞活化、增殖和Th1分化的协议。该协议包括骨髓和T细胞分离、树突状细胞生成以及树突状细胞和T细胞的移植步骤。