2018年7月28日
我们提供一种实验方案 体外 在开放腔室中进行支撑脂双层上 MinD 和 MinE 的自组织实验。此外,我们还描述了如何将实验体系封闭于脂质包被的 PDMS 微区室中以模拟 体内 通过反应限域调控条件。
该方法有助于回答有关细胞结构和膜的关键问题,例如几何信号在该过程中所起的作用。该技术的主要优势在于能够精确控制影响图案形成的各个方面,例如蛋白质浓度。首先,按照文本方案中所述的方法制备多层囊泡。
现在,将脂质进行七到十个冻融循环。首先,在加热板上准备一个烧杯,盛有70至99摄氏度的热水,同时准备一个装有液氮的容器。用大镊子夹住小瓶,浸入液氮中,直至液氮停止沸腾。然后将小瓶转移至热水中,直至溶液完全解冻。
根据混合物的不同,重复这些步骤直至脂质混合物在肉眼观察下呈现澄清状态。接下来,组装脂质挤出器,并用 Min 缓冲液预冲洗系统。将脂质混合物通过孔径为 50 纳米的膜挤出 35 至 41 次。
确保以奇数次过膜结束操作,以避免产生从未穿过膜的聚集体。将玻璃盖玻片均匀分布在倒置的玻璃培养皿或其他惰性表面上。用玻璃移液管向每张盖玻片的中心加入七滴浓硫酸。
然后在酸滴中央加入两滴50%的过氧化氢。盖上盖子,反应至少孵育45分钟。现在用镊子逐个夹起盖玻片,用超纯水冲洗掉酸液。
将清洗后的盖玻片放入防粘连的夹持器或类似的转运装置中。用超纯水彻底冲洗每一片盖玻片,并用加压气体吹干表面。用永久性记号笔标记盖玻片的洁净面。
组装反应室时,首先用锋利的剪刀剪下并丢弃0.5毫升反应管的管盖和锥形部分。然后将紫外胶涂在管子的上边缘,并用移液器吸头将胶水均匀涂布。将管子倒置,粘附在盖玻片的洁净面上。
最后,将多个腔室置于360纳米的紫外灯或LED下照射5至15分钟,使紫外胶完全固化。为形成支持性脂双层,预先将金属加热块加热至37摄氏度,并将含有Min缓冲液或SLB缓冲液的2毫升反应管(每腔室对应一管)在其中孵育。向组装完毕并已固化的腔室中通入氮气,以去除在紫外固化和组装过程中可能沉降的灰尘或其他微粒。
然后,将样品室置于加热块上。取20微升澄清脂质,加入130微升Min缓冲液进行稀释,配制成0.53毫克/毫升的工作浓度。向每个样品室中加入75微升脂质混合物。
现在,将计时器设置为三分钟。在孵育期间,囊泡会在亲水性玻璃表面破裂并融合,形成连续的支撑脂双层膜(SLB)。60秒后,向每个腔室中加入150微升Min缓冲液。
剩余120秒后,向每个腔室加入200微升Min缓冲液或SLB缓冲液,小心地上下吹打数次,吸出液体后再加入200微升。每个腔室完成一次洗涤后,继续对第一个腔室进行彻底洗涤,直至用完2毫升缓冲液。支撑脂双层的洗涤需要一定经验,以掌握腔室内的操作幅度并找到合适的洗涤强度。
为了从图案化的硅片上制备聚二甲基硅氧烷(PDMS)微结构,首先使用塑料杯称取10克PDMS基础剂和1克PDMS交联剂。使用混合装置混合并脱气PDMS混合物。然后,使用移液器吸头将少量PDMS直接滴加到硅片上的结构处。
立即将一个盖玻片放置在PDMS液滴上,并用干净移液器吸头的上端轻轻按压盖玻片,使其贴附于硅片表面。PDMS应在盖玻片与硅片之间均匀薄层铺展。将带有盖玻片的硅片放入烘箱中,在75摄氏度下固化三至四小时,或过夜。
接下来,将硅片从烘箱中取出,使其冷却至室温。使用刀片小心地将带有附着PDMS的盖玻片从硅片上剥离。然后,按照之前所述用于玻璃的方法,将一个塑料腔室连接到PDMS上。
将带有腔室的盖玻片放入以氧气为工艺气体的等离子清洗机中。用等离子体清洗盖玻片。本实验中采用30%功率和0.3毫巴氧气压力处理1分钟。
现在,按照先前所述方法在玻璃表面的腔室中制备SLB。为进行自组织实验,将腔室中的缓冲液体积调整为200微升Min缓冲液,减去蛋白和ATP溶液的体积。然后加入MinD、标记的MinD、MinE,以及根据需要加入MinC,并通过移液轻轻混合各组分。
现在加入 2.5 毫摩尔的 ATP 以启动 MinDE 的自组织过程。在接下来的 10 到 30 分钟内,使用荧光显微镜检查 MinDE 规则图案的形成情况以及微结构是否正常形成。当规则的 MinDE 图案形成后,轻轻吹打混合两次,以混匀组分。
使用 100 微升移液器移除大部分缓冲液,然后使用 10 微升移液器小心移除剩余液体。为了延长成像时间,将一块湿润的海绵塞入腔室内部,注意确保海绵不接触盖玻片表面。
立即用盖子封闭腔室,以避免微结构中残留缓冲液的干燥。在对微结构进行成像前,需确认 MinDE 的自组织在 PDMS 微结构表面已停止,而微腔内的蛋白质仍在振荡。在此代表性视频中,双色成像展示了 MinD 和 MinE 如何在支撑脂双层上自组织形成沿螺旋模式传播的表面波。
在此,单色成像显示 MinD 和 MinE 在 PDMS 微结构中进行两极间的振荡。这些振荡形成了时间平均的 MinD 浓度梯度,其浓度在区室的两极最高,而在区室中央最低。通过此方法,可进一步开展其他实验,例如单粒子追踪,以测定膜结合动力学及停留时间。
请勿忘记,使用piranha溶液可能具有极高的危险性,在进行此操作时,应始终采取个人防护装备等预防措施。
本文介绍了一种在脂质包被的PDMS微区室内的支撑脂双层上进行MinD与MinE体外自组织实验的方案。该方法通过限制反应空间以模拟体内环境,从而实现对影响图案形成因素的精确控制。
该方案能够精确控制支撑脂双层上蛋白质图案的形成,为研究膜相关自组织机制提供了一个简化系统。通过在体外重建 MinCDE 系统,研究人员可以分离影响时空动态的几何与生化变量,从而支持在靶点验证工作中的机制性风险降低。该方法为研究与抗菌靶点发现及细胞组织研究相关的蛋白质-膜相互作用提供了一个可扩展的平台。
该方法适用于早期发现阶段的工作流程,在此流程中,先进行靶点验证和机制研究,随后开展检测方法开发和先导化合物筛选。