2018年11月21日
本方案描述了一种记录黑腹果蝇(Drosophila melanogaster)中枢神经系统下行电活动的方法,可用于经济、便捷地检测药理学试剂、神经蛋白的基因突变和/或尚未明确的生理通路的作用。
该方法通过测量黑腹果蝇(Drosophila melanogaster)中枢神经系统的电发生,有助于解答昆虫毒理学和昆虫生理学领域的关键科学问题。这使得研究人员能够检验广泛的科学假设,并有助于发现新型杀虫剂的作用机制。该技术的主要优势在于,它提供了一个简单、可重复且通量相对较高的系统,仅需较少的资金投入即可用于研究果蝇的神经系统。
首先,打开采集/分析软件。在主工具栏中点击“Setup”,然后选择“Channel Settings”,此时将弹出一个对话框。将总通道数减少至三个。
通道一将记录来自放大器的原始信号,范围为100毫伏。通道二将用于统计通道一中超过给定阈值的事件数量。为此,请点击“计算”选项卡,以打开通道二的下拉菜单。
选择“循环测量”,这将打开第二个对话框。将通道一选为信号源。然后,在“测量”下拉菜单中选择“事件中的单位峰”。
最后,在检测设置区域的下拉菜单中选择“简单阈值”。在检测调整窗口中输入阈值水平,使其高于背景噪声。为了将电活动转换为以赫兹(Hz)表示的频率图,请在第三通道选择“算术运算”。
在新窗口中,输入 1000 次 smoothsec,括号内输入 channel two, two。然后,在单位下拉菜单中选择频率单位 hertz。关闭对话框返回主界面。
通道三的 y 轴应以赫兹为单位,x 轴以时间为单位。解剖幼虫期黑腹果蝇中枢神经系统时,首先从培养管中识别并取出一只游走期三龄黑腹果蝇(Drosophila melanogaster),将其放入 200 µL 生理盐水中。然后用一对精细镊子夹住口钩,并用另一对镊子轻轻夹住幼虫的腹部,注意力度,避免撕裂薄的角质层。
轻轻牵拉口钩和腹部,向不同方向分离蛆的尾部与头部区域,以暴露其内脏。中枢神经系统(CNS)将与气管和消化道交织在一起。用镊子将中枢神经系统从消化道和气管中仔细剥离出来。
从幼虫中解剖黑腹果蝇中枢神经系统是成功的关键步骤。所解剖的神经节必须保持完整,且下行运动神经不得有明显损伤。附着在神经节上的运动神经数量越多,基础放电频率就越高。
如有必要,使用万纳斯弹簧剪在大脑叶后方手动横切中枢神经系统,以破坏血脑屏障。横切操作应根据所用化学物质的理化性质进行。红线为建议的横切位置,此处显示的是已横切的中枢神经系统及完整保留的下行外周神经干。
首先,使用硼硅酸盐玻璃毛细管拉制玻璃移液管电极,使其电阻达到 5 到 15 兆欧。将横切的中枢神经系统(CNS)放入含有 200 微升生理盐水的石蜡腔室中。用鳄鱼夹(焊接在接地线上)夹住一根未涂层的昆虫针,并将该针插入生理盐水中以接通电路。
使用显微操作器,将电极对准横断的中枢神经系统的尾端。在连接外周神经干之前,通过调节采集/分析软件中的阈值水平来消除背景噪声。对注射器施加轻微的负压,以将外周神经吸入吸电极中。
启动数据采集软件的记录,并在采集基线放电率数据前,让基线放电率稳定平衡五分钟。五分钟后,加入 200 微升生理盐水和溶剂,使灌流 chamber 的总体积达到 400 微升,开始记录对照组放电率。如果对照处理的放电模式与此处所示示例不相似,则弃用该样本及记录数据。
记录 3 至 5 分钟并建立基线后,吸出 200 微升生理盐水,并加入 200 微升溶于生理盐水中的实验药物。在数据采集/分析软件中,通过添加注释标记给药时间点,注释内容应包括药物名称及其终浓度。下图显示的是暴露于 DMSO 前后典型的神经放电轨迹。
箭头指示给药时间。可见对DMSO有轻微反应。随着丙泊酚浓度增加,切断的黑腹果蝇中枢神经系统动作电位发放频率呈浓度依赖性增强,而神经抑制剂GABA则使动作电位发放频率呈浓度依赖性降低。
进行该实验操作时,需注意本实验为离体实验,因此生理盐水的条件(如 pH 和温度)对于维持中枢神经系统标本的长期活性至关重要。同样,避免外界电干扰、使用有效的法拉第笼以及降低 60 赫兹噪声,对该检测的成功也极为关键。通过本检测所获得的数据有助于确定杀虫剂的具体作用机制。
可通过其他方法(如电压钳电生理学、生物化学分析以及额外的药理学检测)对这些数据进行后续验证。
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本研究介绍了一种在黑腹果蝇(Drosophila melanogaster)模型中记录中枢神经系统下行电活动的方法。该技术有助于研究药理学试剂、神经蛋白的基因突变以及尚未明确的生理通路,从而实现高通量的神经生理学实验。
这种电生理学方法提供了一种经济高效且可重复的系统,用于测量黑腹果蝇(Drosophila melanogaster)中枢神经系统的活性,从而实现对神经活性化合物的高通量筛选。该方法通过将化合物暴露与神经元放电频率的可量化变化相联系,支持在杀虫剂早期研发阶段进行靶点验证和作用机制的风险评估。该检测方法有助于对离子通道、转运蛋白和受体功能进行假设验证,提高先导化合物筛选的预测可靠性。
该方法可整合到早期发现工作流程中,作为药物化学优化前用于靶点验证和先导化合物分析的功能性检测手段。