2018年11月18日
本文介绍了一种从大鼠锁骨下静脉采集血液样本的实验方案。
锁骨下静脉穿刺作为大鼠采血的替代方法。全身麻醉后,将大鼠置于仰卧位,用75%乙醇对锁骨下区域进行消毒。穿刺前确定胸骨上窝位置。
确定穿刺部位,位于同侧锁骨外三分之一段的尾侧。针头方向应朝向胸骨上窝,且几乎与锁骨平行,紧靠其后方。采血后,按压穿刺部位一至两分钟,以止血。
在动物实验中,始终需要采集足够体积的血液。大鼠尾静脉采血是一种常用方法,相较于眶后静脉丛采血等侵入性较强的采血方式,该方法对动物的应激较小。然而,该方法的局限性在于成功率较低。
本文介绍了从锁骨下静脉采集所需血量的方法。我们的结果显示,该方法安全且实用,在尾静脉采血失败的情况下可予以考虑。首先,准备胶带、脱毛剂、75%乙醇、采血管、2.5 mL注射器、剃毛器、电子天平、肝素和生理盐水。
在标准条件下饲养的家鼠,可自由获取食物和饮用水,笼具面积为530平方厘米,垫料为木屑。在穿刺前,通过腹腔注射对所有动物实施全身麻醉。将大鼠置于仰卧位,后肢固定于舒适位置,前肢平行于身体并紧靠躯干固定。
清洁锁骨下区域的两侧,去除毛发和任何可见的污物。用75%乙醇擦拭颈部和胸部皮肤,并用纱布保持该区域清洁干燥。双侧锁骨下静脉均适合穿刺,此处选择右侧进行穿刺。
用操作者左手拇指确定右侧锁骨的位置和方向,并用食指轻柔地定位胸骨上窝。用每毫升10单位的肝素溶液冲洗注射器。确定穿刺点,位于右侧锁骨外侧三分之一区域远端0.5毫米处。
将注射器轻柔地刺入穿刺部位的皮肤。一旦针头进入锁骨下皮肤,操作者右手需施加主动压力。针头方向应朝向胸骨上窝,并几乎与锁骨平行,位于锁骨后方紧邻处。
通常,沿此方向进针约两毫米即可到达锁骨下静脉。一旦针头进入静脉,血液将在主动压力作用下流入注射器。此后必须持续保持主动压力,直至抽取到足够的血量。
采血后,取下穿刺针,按压穿刺部位一到两分钟以止血。注意:按压力度必须非常轻柔,以防堵塞。将血液样本转移至含EDTA的抗凝真空管中,以1600G离心10分钟,收集血浆。
吸弃上清液以重新清洁离心管,并在-18摄氏度下保存。为比较熟练操作者与初学者的成功率,将20只SD大鼠随机分为两组。结果显示,通过右锁骨下静脉,熟练组中有9只大鼠成功,初学者组中有8只大鼠成功。
随后,从其余三只大鼠的左侧成功采集了血液。这两组之间的成功率无显著差异。但这两组的时间进程略有不同。
操作过程中及操作后未发生气胸、血气胸和出血等严重并发症。所有动物在采血后均存活。为了说明学习穿刺操作的难度,我们进一步比较了熟练组与初学者组之间的退针次数。
如表二所示,熟练组的平均穿刺次数略少于初学者组,但差异无统计学意义。综上所述,我们的结果表明,采用锁骨下静脉穿刺法在大鼠中进行采血是安全且可行的。该方法具有重要应用价值,尤其适用于需要采集大量血液样本的场合。
如果常规采血失败,该方法可能是一种理想的替代方案。
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本文介绍了一种从大鼠锁骨下静脉采集血液样本的实验方案。该方法包括全身麻醉以及准确识别穿刺部位,以确保成功采集血液样本。
在临床前啮齿类动物模型中,可靠的采血对于生成高质量的药代动力学和生物标志物数据至关重要。当尾静脉通路失败时,锁骨下静脉穿刺法提供了一种替代方案,有助于维持药物发现和转化研究工作流程的连续性。该方法提高了样本采集的可靠性,降低了操作失败的风险,从而支持生成稳健的数据以辅助项目决策。
锁骨下静脉穿刺法作为采血的备用方案,整合到临床前工作流程中,贯穿早期发现、先导化合物鉴定及转化研究阶段。