Name: 一种微琼脂盐桥电极分析重组膜蛋白质子周转率 (视频) | JoVE Journal
Uploaded: 2019-01-07T14:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 9 s
Description: 学习使用微琼脂盐桥电极技术精确测量重组膜蛋白质的质子周转率。该方法通过最小化扩散电位干扰，显著提高电生理测量的稳定性和准确性，适用于研究膜蛋白功能与活性。

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

本工作由奥地利研究基金（E.E.P. 项目编号 P31559-B20）资助。作者感谢 Sarah Bardakji 在小鼠 UCP1 和 UCP3 的制备及其重组为蛋白脂质体过程中提供的出色技术支持。

1. 重组解偶联蛋白（UCPs）的制备及平面双层膜的形成
<ol>
	<li>按照 Rupprecht et al.9 和 Hilse et al.10 所述方法制备重组 UCP1 和 UCP3</li>
	<li>按照 Beck et al.7 所述方法在一次性塑料移液器尖端形成平面双层膜</li>
</ol>
2. 微型琼脂盐桥电极的制备
<ol>
	<li>将微毛细管移液器吸头（参见材料表）调整至适当长度。
	<ol>
		<li>在空吸头上标记出含缓冲液的吸头将要连接的位置，并使用滑动卡尺测量微琼脂盐桥电极的长度。 
		警告：微毛细管吸头必须足够长，以确保能够插入测量所用的缓冲溶液中。</li>
		<li>使用锋利的刀片或刀具切割微毛细管吸头，并用乙醇和水清洁切面。</li>
	</ol>
	</li>
	<li>制备镀有氯化银（AgCl）的电极。
	<ol>
		<li>剪取一段长约8 cm的银丝，并用乙醇和水清洗。</li>
		<li>取一片砂纸，打磨银丝末端约1 cm长度的表面，该部分将与盐溶液接触。</li>
		<li>将打磨后的末端浸入3 M KCl溶液中，使用直流电源在1.5 V条件下电化学氯化处理10秒。</li>
		<li>用水清洗电极，干燥后从非镀层一侧调整AgCl电极的长度，使其尽可能深入地插入微毛细管吸头中。 
		注意：此步骤处可暂停实验流程。</li>
	</ol>
	</li>
	<li>配制含1% (v/v) 琼脂糖的3 M KCl盐溶液。
	<ol>
		<li>称取4.47 g KCl，加入20 mL水中，在烧瓶中搅拌溶解。</li>
		<li>移除搅拌子，称取0.2 g琼脂糖，加入烧瓶中。</li>
		<li>加热溶液至100 °C，使琼脂糖完全融化并防止凝固。 
		警告：烧瓶会非常烫，切勿用手直接触摸，操作时应佩戴手套。</li>
	</ol>
	</li>
	<li>用琼脂糖盐溶液填充微毛细管吸头。 
	​警告：溶液温度较高，操作时应保护双手，小心避免溅出。
	<ol>
		<li>若琼脂糖开始凝固，需重新加热盐溶液，使琼脂糖完全融化。</li>
		<li>用微毛细管吸头吸取10 µL琼脂盐溶液，缓慢且小心地吸入，避免吸头内产生气泡。</li>
		<li>将吸头从移液器上取下，从吸头较宽的一侧插入AgCl电极，确保电极插入盐溶液中。</li>
		<li>将电极冷却至室温，并连接至放大器。</li>
	</ol>
	</li>
	<li>准备用于测量的缓冲液。
	<ol>
		<li>称取0.710 g Na2SO4、0.195 g MES、0.121 g TRIS和0.023 g EGTA，加入100 mL蒸馏水至烧杯中，搅拌溶解。</li>
		<li>使用pH电极检测缓冲液的pH值，并调节至7.32。</li>
		<li>检查参比电极与琼脂盐桥电极是否处于电接触状态。
		<ol>
			<li>向塑料容器中加入1 mL缓冲液。</li>
			<li>将参比电极和琼脂盐桥电极浸入缓冲液中，检查是否有信号响应。若信号响应正常，则进行步骤2.7。</li>
		</ol>
		</li>
	</ol>
	</li>
	<li>若信号响应异常或完全无电接触，请执行以下故障排查。
	<ol>
		<li>检查电极是否与盐溶液接触，必要时将电极进一步推入溶液中。 
		注意：若溶液已过于黏稠，应移除微琼脂盐桥并制备新的微毛细管吸头。</li>
		<li>检查盐溶液内部是否存在气泡。若存在气泡，则需制备新的微毛细管吸头。</li>
		<li>检查盐溶液是否与缓冲液接触。若未接触，可再剪去吸头管端约1 mm。 
		警告：务必确保吸头仍足够长，能够插入含缓冲液的吸头中。若仍无接触，应制备新的微毛细管吸头。</li>
		<li>若上述措施均无效，则需制备新的微毛细管吸头。</li>
	</ol>
	</li>
	<li>储存时，将琼脂盐桥电极浸入3 M KCl溶液中。 
	注意：此步骤处可暂停实验流程。若需过夜暂停，应将电极储存在4 °C的3 M KCl盐溶液中。</li>
	<li>制备含缓冲液的塑料吸头。 
	注意：若电极曾过夜储存，取出后需在室温下平衡30分钟。
	<ol>
		<li>取一根微毛细管吸头，距窄端边缘约2 cm处，使用加热丝将其管体弯曲约90度。</li>
		<li>使用非常锋利的刀片或刀具，在弯曲处约5 mm处切断管体。</li>
		<li>用乙醇和水清洁末端表面，并测量吸头孔径，据此计算其表面积。</li>
		<li>用体积比为85:15 (v:v) 的正己烷:十六烷混合液涂覆吸头表面。
		<ol>
			<li>用移液器加入3 µL溶剂后吸出。</li>
			<li>等待1分钟，使吸头内残留溶剂完全挥发。</li>
		</ol>
		</li>
		<li>向测量用吸头中加入3 µL缓冲液，并将其套接在盐桥电极上。 
		注意：请再次通过执行步骤2.5.3，确认盐桥电极与参比电极是否处于电接触状态。</li>
		<li>若无电接触，请检查以下情况：
		<ol>
			<li>检查盐桥电极是否与缓冲液接触。若未接触，可增加吸头内缓冲液体积，或制备更长的微毛细管吸头。</li>
			<li>若存在气泡，应将吸头从微盐桥电极上取下，重新填充缓冲液后再套回电极。</li>
		</ol>
		</li>
	</ol>
	</li>
</ol>
3. 重组蛋白重构膜的电学参数测量
<ol>
	<li>施加一个最大电压 Umax = 50 mV、上升时间 ΔTramp = 50 ms 的三角波交变电压信号，产生矩形交变电流响应。根据正向电流和负向电流的平均值（I+ 和 I-），按照以下公式计算膜电容： 
	<img alt="电容计算公式，C=(I₊−I₋)ΔTᵣₐₘₚ/2Uₘₐₓ，数学方程。" src="/files/ftp_upload/58552/58552eq1v2.jpg" data-altupdatedat="1788250015000" data-alt="方程 1"></li>
	<li>施加一个从 -50 mV 到 +50 mV 的电压斜坡并记录电流。对数据拟合线性函数——其斜率即为电导——并计算拟合曲线与横轴的交点。</li>
	<li>排空塑料尖端中的溶液，并用含有较高底物浓度的缓冲液填充新的尖端。
	<ol>
		<li>如果在最初 20–30 秒内未形成膜，则排空液体并重新填充。这可确保在成膜过程中跨膜的浓度梯度不会发生显著变化。</li>
		<li>在膜形成后，再次执行步骤 3.1 和 3.2，以验证膜是否正确形成，并获得横轴交点。</li>
	</ol>
	</li>
</ol>
4. 底物转化速率的计算
注意：详见之前的研究工作3,7。
<ol>
	<li>根据脂质和蛋白质的分子质量（MLipid 和 MProtein）、膜面积与单个脂质头部基团的面积（AMembrane 和 ALipid），以及蛋白质与脂质的质量比（r），估算膜中蛋白质的含量。 
	<img alt="蛋白质-脂质比例方程，NProtein=MLipid·AMembrane/MProtein·ALipid·r，生化分析。" src="/files/ftp_upload/58552/58552eq2v2.jpg" data-altupdatedat="1788250015000" data-alt="方程 2"></li>
	<li>计算被转运底物的能斯特电位。其中 R 为气体常数，T 为温度，z 为被转运底物的电荷数，F 为法拉第常数，c1 和 c2 分别为膜两侧底物的浓度。 
	<img alt="能斯特方程，Φ=RT/zF ln(c1/c2)，电化学势，公式。" src="/files/ftp_upload/58552/58552eq3v3.jpg" data-altupdatedat="1788250015000" data-alt="方程 3"></li>
	<li>从电流-电压记录中，获取在有无底物浓度梯度条件下线性拟合的 x 轴交点之差所计算出的反转电位。</li>
	<li>通过反转电位与能斯特电位的比值，计算底物电导（GSubstrate）占总膜电导（Gtotal）的比例11。 
	<img alt="静态平衡方程；G_Substrate = (Φ_reverse/Φ_Nernst) * G_total；公式分析" src="/files/ftp_upload/58552/58552eq4v2.jpg" data-altupdatedat="1788250015000" data-alt="方程 4"></li>
	<li>根据底物电导（GSubstrate）、施加的电压 U 和底物电荷数 z，计算单位时间 ΔT 内的底物周转数 ΔNSubstrate： 
	<img alt="静态平衡方程示意图；ΔN/ΔT = GSubstrate·U/z·e；物理概念解析。" src="/files/ftp_upload/58552/58552eq5v2.jpg" data-altupdatedat="1788250015000" data-alt="方程 5"></li>
	<li>根据单位时间内转运的底物数量与蛋白质数量的比值，计算周转速率 κ。 
	<img alt="催化效率方程，κ=ΔNSubstrate/ΔT/NProtein，用于酶反应分析。" src="/files/ftp_upload/58552/58552eq6v2.jpg" data-altupdatedat="1788250015000" data-alt="方程 6"></li>
</ol>

<ol><li>Terstappen, G. C., Reggiani, A. <a target="_blank" href="https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/11165668">In silico research in drug discovery.</a> Trends in Pharmacological Sciences. 22 (1), 23-26 (2001).</li>
<li>Raynauld, J. P., Laviolette, J. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+silver-silver+chloride+electrode%3A+A+possible+generator+of+offset+voltages+and+currents%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Neuroscience+Methods%22%5BJournal%5D)">The silver-silver chloride electrode: A possible generator of offset voltages and currents.</a> Journal of Neuroscience Methods. 19 (3), 249-255 (1987).</li>
<li>Urbankova, E., Voltchenko, A., Pohl, P., Jezek, P., Pohl, E. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Transport+kinetics+of+uncoupling+proteins.+Analysis+of+UCP1+reconstituted+in+planar+lipid+bilayers%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Biological+Chemistry%22%5BJournal%5D)">Transport kinetics of uncoupling proteins. Analysis of UCP1 reconstituted in planar lipid bilayers.</a> Journal of Biological Chemistry. 278 (35), 32497-32500 (2003).</li>
<li>Beck, V., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Polyunsaturated+fatty+acids+activate+human+uncoupling+proteins+1+and+2+in+planar+lipid+bilayers%5BTitle%5D)+AND+%22The+FASEB+Journal%22%5BJournal%5D)">Polyunsaturated fatty acids activate human uncoupling proteins 1 and 2 in planar lipid bilayers.</a> The FASEB Journal. 21 (4), 1137-1144 (2007).</li>
<li>Shao, X. M., Feldman, J. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Micro-agar+salt+bridge+in+patch-clamp+electrode+holder+stabilizes+electrode+potentials%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Neuroscience+Methods%22%5BJournal%5D)">Micro-agar salt bridge in patch-clamp electrode holder stabilizes electrode potentials.</a> Journal of Neuroscience Methods. 159 (1), 108-115 (2007).</li>
<li>Kleene, S. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+simple+intrapipette+salt+bridge%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Neuroscience+Methods%22%5BJournal%5D)">A simple intrapipette salt bridge.</a> Journal of Neuroscience Methods. 46 (1), 11-16 (1993).</li>
<li>Beck, V., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+new+automated+technique+for+the+reconstitution+of+hydrophobic+proteins+into+planar+bilayer+membranes.+Studies+of+human+recombinant+uncoupling+protein+1%5BTitle%5D)+AND+%22Biochimica+et+Biophysica+Acta-Bioenergetics%22%5BJournal%5D)">A new automated technique for the reconstitution of hydrophobic proteins into planar bilayer membranes. Studies of human recombinant uncoupling protein 1.</a> Biochimica et Biophysica Acta-Bioenergetics. 1757 (5-6), 474-479 (2006).</li>
<li>Macher, G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Inhibition+of+mitochondrial+UCP1+and+UCP3+by+purine+nucleotides+and+phosphate%5BTitle%5D)+AND+%22Biochimica+et+Biophysica+Acta%22%5BJournal%5D)">Inhibition of mitochondrial UCP1 and UCP3 by purine nucleotides and phosphate.</a> Biochimica et Biophysica Acta. 1860 (3), 664-672 (2018).</li>
<li>Rupprecht, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Role+of+the+transmembrane+potential+in+the+membrane+proton+leak%5BTitle%5D)+AND+%22Biophysical+Journal%22%5BJournal%5D)">Role of the transmembrane potential in the membrane proton leak.</a> Biophysical Journal. 98 (8), 1503-1511 (2010).</li>
<li>Hilse, K. E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+expression+of+UCP3+directly+correlates+to+UCP1+abundance+in+brown+adipose+tissue%5BTitle%5D)+AND+%22Biochimica+et+Biophysica+Acta%22%5BJournal%5D)">The expression of UCP3 directly correlates to UCP1 abundance in brown adipose tissue.</a> Biochimica et Biophysica Acta. 1857 (1), 72-78 (2016).</li>
<li>Fuks, B., Homble, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Permeability+and+electrical+properties+of+planar+lipid+membranes+from+thylakoid+lipids%5BTitle%5D)+AND+%22Biophysical+Journal%22%5BJournal%5D)">Permeability and electrical properties of planar lipid membranes from thylakoid lipids.</a> Biophysical Journal. 66 (5), 1404-1414 (1994).</li>
<li>Barry, P. H., Lewis, T. M., Moorhouse, A. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((An+optimised+3+M+KCl+salt-bridge+technique+used+to+measure+and+validate+theoretical+liquid+junction+potential+values+in+patch-clamping+and+electrophysiology%5BTitle%5D)+AND+%22European+Biophysics+Journal%22%5BJournal%5D)">An optimised 3 M KCl salt-bridge technique used to measure and validate theoretical liquid junction potential values in patch-clamping and electrophysiology.</a> European Biophysics Journal. 42 (8), 631-646 (2013).</li>
<li>Huang, D., Li, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+feasibility+and+limitation+of+patch-clamp+recordings+from+neonatal+rat+cardiac+ventricular+slices%5BTitle%5D)+AND+%22In+Vitro+Cellular+%26+Developmental+Biology%22%5BJournal%5D)">The feasibility and limitation of patch-clamp recordings from neonatal rat cardiac ventricular slices.</a> In Vitro Cellular & Developmental Biology. 47 (4), 269-272 (2011).</li>
</ol>

作者无任何利益冲突需要披露。

采用微琼脂盐桥与电极结合的方式，可最大限度地减小其扩散电位，从而更精确地测量由pH梯度产生的膜电位。在存在不同跨膜pH梯度的情况下，当ΔpH = 0.35时，两种电极的电位偏移均处于可接受范围，与能斯特平衡电位的理论值相比接近（当ΔpH = 0.4时，ΦNernst = 23.8 mV）。然而，在更接近生理条件的pH梯度下，例如线粒体基质与膜间隙之间的pH梯度（ΔpH = 1），标准AgCl电极无法精确测量电位偏移（图3A）。而采用微琼脂盐桥连接的电极所测得的数值则与理论值更为吻合。
如果在实验过程中更换缓冲液，也可能在AgCl参比电极处产生扩散电位。由于有研究提示解偶联蛋白可转运氯离子，因此实验中采用了无氯缓冲液，并使用Tris或MES调节pH值。在氯离子浓度较低的情况下，电极电位主要取决于缓冲液中的氯离子杂质。由于缓冲液成分在实验过程中保持不变，因此只会导致一个恒定的偏移电位。然而，在测量两个电极之间的绝对电位差时，参比电极也可采用简单的琼脂盐桥系统（Ag/AgCl 3 M KCl）。
微琼脂盐桥通过平衡电极电位来抵消扩散电位。为了稳定盐溶液，加入1%（w/v）的琼脂糖以防止盐溶液与缓冲液混合。盐离子K+和Cl-在液体中具有相似的迁移率，从而平衡电极电位。为正确安装盐桥，需将琼脂盐溶液充分加热，以便无气泡地填充微毛细管尖端，并覆盖AgCl电极。在进一步使用前，必须检查盐桥电极与参比电极之间的电接触。根据盐桥使用时间的长短，盐溶液必须充分凝胶化，以防止盐溶液与缓冲液混合。当研究K+或Cl-转运蛋白时，这一点尤为关键。盐桥使用时间很短，在此时间段内琼脂糖的溶出可忽略不计。使用更高浓度的琼脂糖（最高达5%）或琼脂（3%–5%），可延长盐桥的使用时间6,12。
该方法可用于测定（i）周转速率较低的膜转运蛋白，以及（ii）线粒体内膜蛋白的转运动力学，而这些蛋白在标准膜片钳装置中难以进行研究13。该方法的精确性主要依赖于反转电位的测量，当总膜电导较低且浓度梯度较小时，所诱导的膜电位会低于记录噪声水平，从而降低测量的准确性。
利用该装置，测定了在相同条件下产生的UCP1和UCP3的转换速率。由于pH梯度较高，所获得的速率数据更为精确，且未受到微小电极电位漂移所导致的人为假象的干扰。该方法可用于进一步分析和比较在相似条件下产生的线粒体膜转运蛋白。

目前已知的药物中，多达60%以膜蛋白为靶点1。膜蛋白的电生理测量是一种强大但精细的技术，可用于分析由膜载体蛋白介导的底物生电性转运过程。通过施加恒定电压或电压梯度来调节跨膜电流，可评估载体的药理学和物理特性，例如底物对载体的激活与抑制作用以及转运动力学。其中特别值得关注的是底物转换数（turnover number），它表示单位时间内膜蛋白转运的底物分子数量。该参数在比较不同膜蛋白的动力学特性时具有重要意义。通过在膜两侧建立带电底物的浓度梯度，可产生电动势，进而推导出底物的转换数。
使用AgCl电极时，氯离子自由缓冲液的存在会产生扩散电位，从而改变电极电位，并导致电流-电压测量值发生偏移2。尽管扩散电位始终存在，但在标准电导和电容测量中其影响可忽略不计，因为这些参数要么依赖于电流-电压记录曲线的斜率（电导），要么基于单次记录的差值（电容），从而抵消了电位的影响。然而，由底物转运所产生的反向电位记录可能受到扩散电位的显著干扰。因此，为了精确测量反向电位，必须保持电极电位恒定。
可通过两种方法减小扩散电位：(i) 在存在双层膜的情况下，必须在膜的一侧增加底物浓度3,4，或 (ii) 使用盐桥平衡电极电位5。第一种方法高度依赖于测量的稳定性。膜必须在从搅拌下加入底物到溶液中底物几乎均匀分布的数分钟内保持完整。如果在此期间膜破裂，带电分子将自由交换，改变底物浓度梯度，导致测量结果不准确。后一种方法虽可平衡扩散电位，但受限于装置的尺寸。在微米尺度下将一个微小而有效的盐桥整合到电生理装置中具有挑战性6。对于后一种方法，将盐溶液填充至微毛细管尖端，并通过添加琼脂糖使其稳定，以防止盐溶液向缓冲液中扩散。
本方案描述了一种基于移液管装置7的微小琼脂盐桥的简便制备方法及其在电生理实验体系中的应用。通过调整微毛细管尖端，使其容纳含1 mol%（w/v）琼脂糖的3 M KCl溶液，并连接AgCl电极与缓冲液，从而形成盐桥。通过记录电极电位随时间的变化以及在不同pH梯度下膜电位的更精确测量，展示了微盐桥的优势。在将重组蛋白重建入脂质体的模型系统中，重新研究并比较了在相似条件下制备的线粒体载体UCP1和UCP3的周转速率，并与先前结果进行了对比3,8。

<table><tbody><tr><td>微量移液器吸头</td><td>Eppendorf</td><td>5242956.003</td><td>微毛细移液管吸头</td></tr><tr><td>99% 乙醇</td><td>AustrAlco &amp;Ouml;sterr. Agrar-Alkohol Handelsges.m.b.H</td><td>AAAH-5020-07025-230317</td><td></td></tr><tr><td>氯化钾</td><td>Carl Roth GmbH + Co. Kg</td><td>6781.3</td><td></td></tr><tr><td>直流电源</td><td>Voltcraft</td><td>V10/CPG 1940 -01</td><td></td></tr><tr><td>标准琼脂糖</td><td>Carl Roth GmbH + Co. Kg</td><td>3810.2</td><td></td></tr><tr><td>膜片钳放大器</td><td>Heka</td><td></td><td></td></tr><tr><td>样品管</td><td>Carl Roth GmbH + Co. Kg</td><td>5863.1</td><td></td></tr><tr><td>Na2SO4</td><td>Carl Roth GmbH + Co. Kg</td><td>8560.3</td><td></td></tr><tr><td>MES</td><td>Carl Roth GmbH + Co. Kg</td><td>4256.2</td><td></td></tr><tr><td>TRIS</td><td>Carl Roth GmbH + Co. Kg</td><td>AE15.2</td><td></td></tr><tr><td>EGTA</td><td>Carl Roth GmbH + Co. Kg</td><td>3054.1</td><td></td></tr><tr><td>己烷</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>296090-100ML</td><td></td></tr><tr><td>十六烷</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>296317-100ML</td><td></td></tr><tr><td>加热丝</td><td>Voltcraft</td><td>USPS-2250</td><td></td></tr></tbody></table>

用于分析重组膜蛋白质子周转速率的微型琼脂盐桥电极

A Micro-agar Salt Bridge Electrode for Analyzing the Proton Turnover Rate of Recombinant Membrane Proteins

迄今为止，超过50%的药理学药物靶向膜蛋白的转运动力学。将膜载体蛋白重构于脂双层膜中并进行电生理表征，是一种强大但精细的方法，可用于评估其物理化学和药理学特性。底物转换数是一个独特参数，可用于比较不同膜蛋白的活性。在生电性转运过程中，被转运底物的梯度会产生膜电位，该电位与蛋白的底物转换速率直接相关。使用氯化银电极时，会引发扩散电位（也称为液接电位），从而改变电极电位，并显著干扰膜电位的精确测量。通过盐桥可将扩散电位最小化，以平衡电极电位。本文设计了一种微琼脂盐桥，以改进使用微移液管形成膜的电生理装置。将盐溶液注入微毛细移液管尖端，并加入琼脂糖进行稳定，可方便地安装至标准电极上。与标准电极相比，微盐桥电极的电极电位更加稳定。该系统的应用可稳定电极电位，从而实现对由pH梯度产生的膜电位进行更精确的测量。利用该系统，重新研究并比较了线粒体载体UCP1和UCP3的质子转换速率与早期测量结果。

为了验证扩散电位的最小化，测量了完整膜的电流-电压特性的稳定性。在图2A中，展示了存在（白色圆点）和不存在（黑色圆点）pH梯度时的代表性电流-电压记录。根据能斯特方程，pH梯度会引起电压偏移。通过数据线性拟合与x轴交点的位置，计算出电位偏移量。为了测试两种电极的性能，分别分析了标准AgCl电极（图2B；白色圆点）和微型琼脂盐桥电极（图2B；黑色圆点）的x轴交点偏移情况。连续十次记录电压斜坡，并将x轴交点的平均偏移随时间变化绘出。结果显示，即使在测量300秒后，琼脂盐桥电极的最大偏移仍小于5 mV，而标准电极则表现出不可预测的随机波动，偏移幅度高达30 mV。
接下来，在不同的 pH 梯度下测试了两种电极（图 3A）。对于标准电极，生成了 0.35 和 1.0 的 pH 梯度（白色圆点）；对于琼脂盐桥电极，则生成了 0.35、0.7 和 1.0 的 pH 梯度（黑色圆点）。电位变化通过三次独立测量进行分析。与 0.35 的梯度相比，在无微琼脂盐桥的情况下，当 pH 梯度达到 1.0 时，电压变化显著增大。根据数据的线性拟合，标准电极的函数斜率为 26.4 ± 2.3 mV/ΔpH，而微琼脂盐桥电极为 50.1 ± 4.6 mV/ΔpH。根据能斯特方程，在 T = 32 °C 时，计算得到的电位变化为 60.7 mV/ΔpH。
利用微琼脂盐桥，测量并比较了线粒体UCP1和UCP3的质子周转数κ，结果见之前的研究（图3B）。与图3A类似，建立ΔpH = 1.0的条件，并测定反向电位。根据本方案第4节提供的公式估算膜中蛋白质含量，所用参数包括：蛋白/脂质比为4 µg/(mg脂质)，蛋白质和脂质的分子质量分别为33,000和750 Da，膜表面积为3.53 × 10-4 cm2，每个脂质分子所占面积为7.8 × 10-15 cm2。测得UCP1和UCP3的κ值分别为5.56 ± 0.38 s-1和4.10 ± 0.71 s-1（图3B）。
<img alt="用于离子传输的电极装置，包括微毛细管移液器、AgCl电极、琼脂桥和缓冲液。" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/58552/58552fig1.jpg" data-altupdatedat="1788250015000" data-alt="图1"> 
图1：带有微琼脂盐桥的电生理装置示意图。（A）本图展示了该装置的示意图。含有琼脂盐溶液的微毛细管尖端（以橙色表示）置于电极（黑色）与含缓冲液的尖端（蓝色）之间。膜在含缓冲液尖端末端的表面形成（由箭头指示）。（B）本图展示了带有微琼脂盐桥的电生理装置实际图像。箭头分别指向电极、微琼脂盐桥、参比电极以及盛有缓冲液的容器。<a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/58552/58552fig1large.jpg" target="_blank">请点击此处查看该图的放大版本。</a>
<img alt="膜片钳电生理图：跨膜电流-电压关系，电压偏移随时间变化结果。" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/58552/58552fig2.jpg" data-altupdatedat="1788250015000" data-alt="图 2"> 
图 2：微小琼脂盐桥与标准 AgCl 电极的比较。（A）该图显示了在存在（灰色点）和不存在（白色点）pH 梯度（梯度值为 1）条件下的代表性电流-电压测量结果。线条表示对数据进行的线性拟合，从中获得电导值和与横轴的交点值。电压偏移通过两次记录交点值的差值进行评估。（B）该图显示了标准 AgCl 电极（白色点）与微小琼脂盐桥电极（黑色点）在时间上的膜电位变化。连续记录了十次电流-电压测量结果，并将由扩散电位引起的平均电压偏移随时间作图。在所有实验中，膜由摩尔比为 45:45:10 的 DOPC:DOPE:CL 组成，并重组了 15 mol% 花生四烯酸，浓度为 1.5 mg/mL。缓冲液包含 50 mM Na2SO4、10 mM MES、10 mM TRIS 和 0.6 mM EGTA，pH = 7.34，T = 32 °C。<a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/58552/58552fig2large.jpg" target="_blank">请点击此处查看该图的放大版本。</a>
<img alt="KCl、AgCl电极的电化学电位随pH变化图及转换速率图表。" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/58552/58552fig3.jpg" data-altupdatedat="1788250015000" data-alt="图3"> 
图3：根据pH梯度存在下的反向电位计算得到的UCP1和UCP3质子转换数。（A）该图显示了含UCP1的膜在不同pH梯度下，使用标准AgCl电极（白色圆点）和微型琼脂盐桥电极（黑色圆点）时电位的变化情况。线条表示对数据进行的线性拟合。（B）该图显示了根据方案第4节中的公式，通过电压偏移与Nernst电位之比计算出的UCP1（第一组数据）和UCP3（第二组数据）的质子转换数。每组数据中的第一个柱状图表示使用微型琼脂盐桥电极测得的转换速率，第二个柱状图表示先前使用标准AgCl电极测得的结果。UCP1和UCP3的数据值分别取自Urbankovaet al.3 和 Macher et al.8。所有测量中，膜由45:45:10 mol% DOPC:DOPE:CL组成，并重组了15 mol% AA以及UCP1/UCP3。脂质和蛋白质的浓度分别为1.5 mg/mL和4 µg/mg脂质。缓冲液包含50 mM Na2SO4、10 mM MES、10 mM TRIS和0.6 mM EGTA，pH = 7.34，T = 32 °C。进行梯度测量时，通过添加TRIS将缓冲液的pH分别提高至7.66、8.00或8.33，并在含溶液的移液管中进行调节。数据为三次独立测量的平均值±标准差。<a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/58552/58552fig3large.jpg" target="_blank">请点击此处查看该图的放大版本。</a>

在电生理学测量中，扩散电位的存在会改变电极电位，从而干扰对反转电位的精确测量。通过使用微小的琼脂盐桥，可最大限度地减小扩散电位的影响，从而实现对重组膜蛋白重建后底物周转数的更精确测定。

迄今为止，超过50%的药理学药物以膜蛋白的转运动力学为作用靶点。膜蛋白的电生理表征……

该方法有助于研究膜蛋白（如转运蛋白和通道蛋白），可用于分析在不同生理和病理条件下，蛋白质活性与特异性变化所导致的底物转化速率下降情况。该技术的主要优势在于能够最大限度地减少潜在的漂移变异，并可在无氯离子缓冲体系中进行。并且由于膜电位测量更加精确，显著提高了周转率测定的准确性。准备初始步骤所需的器材，包括两个微毛细移液管尖端、一把锋利的刀片和一个游标卡尺。准备银丝电极时，需备好砂纸和三摩尔的氯化钾溶液。此外，还需乙醇和水用于清洁，以及直流电源。操作时使用两个微量移液器吸头开始进行。首先取一个装有缓冲液的吸头，将第二个吸头放置在第一个吸头旁边。移动第二个吸头，使其插入时，其狭窄部分至少深入第一个吸头狭窄部分内五毫米。标记第一个含缓冲液的尖端将要连接的位置。然后使用卡尺测量微琼脂盐桥电极的长度。使用刀片将尖端切割至适当长度。用乙醇清洁切割表面，随后用水冲洗。接下来，取一段长约八厘米的银丝作为电极。用擦拭纸蘸乙醇清洁银丝，随后再用水擦拭。清洁后，使用砂纸打磨一端约一厘米长度的表面，使其光滑。此带有光滑端的导线即可用于电化学镀层。将光滑端浸入氯化钾溶液中，另一端连接直流电源，以进行镀层处理。包被完成后，断开电极并用水清洗。干燥后，确定电极可插入微毛细管尖端的最深长度，并从无包被一侧将电极剪至适当长度。接下来，准备含有琼脂糖的盐溶液。在装有水的烧瓶中溶解氯化钾，并使用磁力搅拌器辅助混匀。取出搅拌器后，将琼脂糖加入烧瓶中。将烧瓶放入微波炉中加热，使琼脂糖在约 100 摄氏度下完全融化。取出后目视检查琼脂糖是否完全溶解。待琼脂糖完全溶解后，缓慢吸取 10 µL 加入微毛细管中，避免产生气泡。必须小心地将琼脂盐溶液移入微毛细管尖端，尤其是在高浓度琼脂溶液中。若操作不当，尖端内容易产生气泡，从而阻断电流。从移液器上取下尖端后，立即将电极插入其中。确保电极浸入盐溶液中。当电极处于室温时，将其插入放大器的参比电极接口。固定参比电极，使其可放入盛有1 mL缓冲液的塑料容器中。接下来，将盐桥电极浸入溶液中。施加电压并检查是否有电流响应，然后继续操作。如果测试成功，则断开电极连接。如有需要，可将盐桥电极浸入3 mol/L的氯化钾溶液中保存。接下来，准备含有塑料尖端的缓冲液。取一个微量毛细管尖端，找到距离其狭窄部分2厘米的位置。在此位置使用加热的金属丝将管子弯曲成90度。用锋利的刀具从弯曲处起五毫米处切断管子。先用乙醇、再用水清洗切断的区域。继续操作前，使用带刻度的光学显微镜测量尖端小孔的直径。接着，将移液器移至溶剂容器和缓冲液容器附近。吸取并排出3 µL溶剂，重复三次。接下来，用三微升缓冲液填充测量尖端。现在，从氯化钾溶液中取出盐桥。将装有缓冲液的测量尖端插在盐桥电极上。将盐桥电极和参比电极连接至放大器。此时，将盐桥电极与参比电极一同悬置于缓冲溶液中。本实验配置的示意图如下所示。实验过程中，膜将在含有缓冲液的移液管末端形成。通过施加三角波交变电压信号以产生矩形交变电流响应，采集数据以测定膜电容。接下来，找出电流为零时的电导和电压。自动施加一个从负50至50毫伏的电压斜坡，并记录电流。对数据拟合线性函数。斜率代表电导，x轴截距为零电流时的电压。测量完成后，将测量尖端从盐桥中取出。用缓冲液填充新的测量尖端，并调节至不同的pH值，以在膜两侧建立质子梯度。更换新的测量探头和电极，重新建立实验装置，以重复测量。以下是存在 pH 梯度时的代表性电流-电压记录，以及在不存在 pH 梯度时的记录。图中线条表示对数据的线性拟合。不同 pH 值下 x 轴交点的变化可由能斯特方程预测。这些数据代表了标准氯化银电极（白色）和微型琼脂盐桥电极（黑色）的膜电位随时间的变化。琼脂盐桥电极在300秒的测量过程中更为稳定，最大偏移小于5毫伏。在此电位偏移随pH梯度变化的图中，随着pH梯度的增加，两种电极表现出显著不同的行为。可分别计算并比较两种电极的质子转换速率。以下是通过盐桥电极与标准电极测得的线粒体解偶联蛋白1（UCP1）的质子周转数。同时提供了类似制备条件下获得的UCP3的数据。使用琼脂盐桥电极测得的速率似乎更为精确。进行此操作时，需注意确保电极插入琼脂盐溶液中。盐桥也必须浸入缓冲液中。最后，确保琼脂盐溶液中不含气泡。

a-micro-agar-salt-bridge-electrode-for-analyzing-proton-turnover-rate

Research

科研

JoVE Journal

Neuroscience

神经科学

一种微琼脂盐桥电极分析重组膜蛋白质子周转率

受调控的内吞作用决定了大多数膜蛋白在细胞表面的表达水平。本文中，我们利用可还原且不能透过膜的生物素化试剂，测定多拓扑膜蛋白——多巴胺转运体（DAT）的内吞速率。该方法为测定大多数质膜蛋白内吞速率提供了一种简便直接的途径。...

通过可逆生物素化测定质膜蛋白内吞速率

本文介绍一种基于固态支撑膜的电生理学方法，并重点阐述其在电致性膜转运蛋白表征中的应用。...

固相支持膜电生理学简介

我们提出了一种实验方案，用于 体外 外排泵的研究...

体外 MexAB 外排泵的研究 铜绿假单胞菌

利用高密度功能性蛋白质微阵列检测蛋白质-蛋白质相互作用

表面等离子体共振（SPR）是一种无需标记、可实时检测生物分子相互作用的方法。本文描述了一项膜蛋白与受体相互作用实验的实验方案，并讨论了该技术的优缺点。...

利用表面等离子共振（SPR）实时测量膜蛋白与受体的相互作用

本文的第一部分介绍了如何筛选在细胞质膜上表达囊泡型 Na+/H+ 交换体的突变细胞系。第二部分提供了基于细胞内 pH...

利用质子杀伤筛选法在质膜上表达细胞内区室 Na+/H+ 交换体并进行功能表征

本方案介绍了利用跨孔无溶剂脂双层在单个转运蛋白水平上分析膜蛋白介导的转运过程。该方法通过制备大量生产的纳米孔阵列芯片，结合高通量数据采集与分析，有望实现膜蛋白效应物筛选的未来应用。...

基于高通量纳米孔芯片系统在单蛋白分辨率下分析膜转运过程

本方案描述了使用定制的便携式FRET分析仪对荧光共振能量转移（FRET）传感器数据进行快速且高灵敏度定量的方法。该设备用于在可最大化检测灵敏度的关键温度范围内检测麦芽糖，从而实现对糖含量的实用且高效的评估。...

高灵敏度快速荧光检测结合便携式FRET分析仪

本文描述了使用质子选择性电极和膜片钳技术来测量质子转运系统活性的方法。这些方法克服了常用于研究质子转运活性的技术中存在的一些局限性，例如灵敏度中等、时间分辨率不足以及对细胞内环境控制不充分。...

电生理学测量在研究电中性转运蛋白活性中的应用

单个脂质体测量用于研究质子泵膜酶的电化学与荧光显微技术

本方案介绍了一种在细胞环境中实时测量腺嘌呤核苷酸与受体结合的方法。该结合过程通过三硝基苯基核苷酸衍生物与标记了非天然荧光氨基酸的蛋白质之间的荧光共振能量转移（FRET）进行检测。...

实时测量完整功能性膜蛋白的核苷酸结合

学习使用微琼脂盐桥电极技术精确测量重组膜蛋白质的质子周转率。该方法通过最小化扩散电位干扰，显著提高电生理测量的稳定性和准确性，适用于研究膜蛋白功能与活性。

用于分析重组膜蛋白质子周转速率的微型琼脂盐桥电极

探索更多视频