2018年11月10日
本方案采用逆转录聚合酶链式反应(RT-PCR)方法,对罗非鱼组织中的罗非鱼湖病毒(TiLV)进行诊断。整个方法从组织解剖开始,直至总RNA提取、cDNA合成,并通过常规PCR或利用双链DNA结合型荧光染料的定量PCR检测TiLV。
大家好。我叫 Win Surachetpong,是泰国 Kasetsart 大学兽医学院兽医微生物学与免疫学系的助理教授。
我和我的团队专注于罗非鱼的新兴病毒性疾病研究。目前我们正在研究罗非鱼湖病毒(tilapia lake virus),该病毒可导致罗非鱼高死亡率。由于罗非鱼是全球养殖量第二大的鱼类物种,为数百万人提供了蛋白质来源,在粮食安全中发挥着重要作用。
因此,罗非鱼湖病毒的近期暴发造成了社会经济影响,促使许多科学家致力于寻找解决这一问题的方法。迄今为止,我们亟需一种高度敏感、快速且准确的病毒检测方法。在本视频中,我们将逐步展示如何从样本采集、样本处理到实时PCR分析,检测鱼类组织中的罗非鱼湖病毒。
首先,将过量的麻醉剂溶于水中以处死鱼类。将死亡的鱼置于托盘上,使用95%乙醇对器械进行消毒,然后用酒精灯灼烧灭菌。从腹部下方开始,自下而上缓慢切开鱼体,以采集肝脏。
取部分肝脏组织放入1.5毫升离心管中。RNA提取的第一步应在超净工作台中进行,并佩戴防护装备。向管中加入1毫升RNA提取试剂。
使用组织研杵将肝脏研磨成均一的匀浆。向离心管中加入 200 微升氯仿,然后通过反复倒置离心管轻轻混匀。
室温静置三分钟。在 4 °C 条件下以 12,000 ×g 离心 15 分钟。小心从离心机中取出离心管。
将500微升无色的上层水相轻柔转移至新离心管中。向管中加入等体积的异丙醇。在负20摄氏度下孵育2小时或过夜,以沉淀RNA。
孵育结束后,在相同的离心条件下离心溶液。从离心机中取出离心管,弃去上清液。RNA沉淀可见,如箭头所指。
加入一毫升75%乙醇至管中以洗涤RNA沉淀,并颠倒混匀数次。在4°C、10,000 RCF条件下离心15分钟。从离心机中取出管子,弃去上清液。
使用自动移液器吸出残留的乙醇,并在室温下晾干5至10分钟。加入30至60微升经预热至55至60摄氏度的无RNase水,以溶解RNA沉淀。取1至2微升RNA溶液,使用微量分光光度计测定其浓度。
结果将显示在屏幕上。使用无RNase的水将浓度稀释至200纳克每微升。使用下列所列的试剂和条件进行cDNA合成。
使用热循环仪,按照建议条件将RNA逆转录为cDNA。以下为使用实时PCR测定TiLV载量所用的试剂和条件。将六毫升qPCR预混液加入每个白色qPCR八联管的管中。
随后,将 4 毫升 cDNA 样品加入反应孔中。在此步骤中,每个孔必须更换新的吸头,以避免样品间的交叉污染。使用透明的 qPCR 条形管盖紧密封 qPCR 条板。
轻轻弹击条带末端,使溶液混匀。然后使用微量离心机离心,将所有液体收集至容器底部。按照视频中所示的两步条件操作,选择将要使用的96孔板中的孔位。
选择 cyber green 作为染料的荧光染料。将样本类型设为未知,然后在样本名称框中输入名称。打开实时 PCR 仪的盖子,将 qPCR 条带放入指定的孔中。
然后关闭盖子。根据所选条件运行仪器。当盖子达到设定温度后,仪器将自动启动并开始运行。
qPCR反应条件结束后,会显示扩增曲线。此处,速率箭头指示阈值线在指数扩增阶段与线性阶段之间的截断位置,由此得到CT值。随后,根据标准曲线将CT值外推为病毒拷贝数的对数值,以计算病毒的拷贝数量。
熔解峰也会被显示出来,以确认通过qPCR检测到的病毒是否确实为TiLV,其熔解峰通常在79.5至80.5摄氏度之间。因此,我们希望该方法能成为全球各地农民和相关机构的重要工具,帮助他们实施控制措施,限制TiLV感染的传播。
本方案详细介绍了利用逆转录聚合酶链式反应(RT-PCR)方法在罗非鱼组织中检测罗非鱼湖病毒(TiLV)的诊断流程。该流程涵盖了从组织解剖到RNA提取、cDNA合成,以及通过常规PCR或定量PCR进行TiLV检测的全部步骤。
快速、灵敏地检测罗非鱼湖病毒(TiLV)对于水产养殖业的生物安全和疾病管理至关重要,直接影响食品安全和全球蛋白质供应链。通过结合常规RT-PCR与SYBR Green RT-qPCR技术,可实现对病毒的定性与定量检测,支持早期干预和监测项目。这些分子诊断方法为科研和实际操作环境中的风险防控与资源分配提供了可操作的数据支持。
这种双重 PCR 工作流程连接了水生病毒病原体的早期发现、检测方法开发和转化研究。