2018年11月26日
边缘区B细胞(MZBs)在剪切流的作用力下会重新调整其迁移路径,逆流而上。本实验方案展示了如何利用流体控制单元、泵、显微成像系统及免费软件来记录和分析细胞迁移过程。
该方法有助于理解免疫细胞迁移领域的关键问题,例如细胞骨架如何传递剪切力,以及整合素配体和趋化因子如何影响白细胞的流动诱导迁移。该技术的主要优势在于,它是一种新型的迁移检测方法,初学者易于操作。实验仅需使用市售的设备和试剂,以及免费软件。
尽管该方法可用于研究边缘区B细胞,但也适用于其他免疫细胞,例如活化的T细胞。实验前一天,将一份ICAM-1解冻,并用PBS稀释至终浓度为每毫升5微克。然后,向流式玻片的所需通道中加入30微升ICAM-1溶液。
将载玻片放入湿盒中,并置于4°C过夜孵育。次日,通过向湿盒的一个孔中加入100微升PBS,然后从另一孔中吸出100微升来清洗湿盒。随后,向湿盒中加入100微升封闭缓冲液,并将载玻片置于湿盒中于室温孵育90分钟。
接下来,通过向一个孔中加入 100 微升 PBS,从另一个孔中吸出,清洗小室,然后向小室中加入 100 微升迁移缓冲液。此时载玻片已准备就绪,将其置于室温下的湿盒中保存,直至进行实验。
首先,插入流体泵并连接流体单元。然后,打开泵的软件。接着,用 5 至 10 毫升迁移缓冲液冲洗管路一次。
这大约需要一分钟。然后,向两个储液槽中各加入 11.7 毫升迁移缓冲液,并去除气泡。现在,将管路在距离连接件约 10 厘米处夹紧,并将流体单元放入显微镜加热孵育室中。
在软件中,将载玻片类型设置为 micro-slide VI 0.4,管路选项设置为白色。同时,将所需的剪切应力设置为约 4 达因/平方厘米,成像时间设置为 30 分钟。然后,通过在泵控软件中输入数值来设定所需的流速和剪切应力。
接下来,将显微镜培养室、流体单元和迁移缓冲液分装样品预热至 37 摄氏度。待温度达到后,测试流体泵,确保迁移缓冲液在储液池中往复流动,并且系统内无气泡。首先,分离白细胞,并按照随附的文字实验方案所述,纯化出边缘区 B 细胞。
然后,用沾有乙醇的纸巾清洁载玻片底部。将30 µL细胞悬液加入小室的一个孔中,并从另一个孔中吸出30 µL保存的迁移缓冲液。盖上盖片,于37°C孵育30分钟,使细胞贴壁。
接下来,缓慢将预热的迁移缓冲液加入载玻片的每个孔中,直至形成凸起的弯月面。用移液枪头去除任何气泡。保持影响细胞黏附因素的一致性非常重要,因此需将缓冲液和细胞保持在37摄氏度,并在将缓冲液加入腔室时避免施加过大的力。
将载玻片夹紧在显微镜载物台上,然后将流体管路无标记的一端从连接件上取下。接着,用迁移缓冲液充满管路末端,直至末端形成一个无气泡的正弯月面。将管路末端翻转,插入流动室的上部小孔中。
在保持导管夹闭的同时,对导管的标记端重复上述操作。随后,将成像系统切换至实时模式,并选择位于载玻片中央的视野。在此处,先将焦点对准细胞,然后略微散焦,以增强细胞的黑色轮廓并形成明亮的内部区域。
黑色背景和白色中心在自动追踪程序中更易于使用。设置成像序列程序,使用10倍干镜每5秒拍摄一张图像,持续30分钟。然后开始记录。
取下管路上的夹子,然后启动泵。这将使非贴壁细胞被冲洗掉,同时贴壁细胞开始迁移。在成像程序结束时,为视频添加标签并保存。
如果使用细胞迁移抑制剂或调节剂,可将其添加至加样前细胞悬液中的细胞,或添加至流体单元的迁移缓冲液中。要开始自动迁移轨迹分析,请打开 ImageJ 程序。将 MTrack2_kt Java 文件复制到 ImageJ 的 Plugins 文件夹中。
在“插件”菜单下,选择“编译并运行”。然后重新启动 ImageJ,该插件应会出现在“插件”菜单中。在 ImageJ 中打开细胞迁移视频的图像序列,并按此处所示处理图像,以将视频从彩色帧转换为高对比度图像,使细胞以黑色物体的形式显示在白色背景上。
接下来,将图像锐化两次,去除图像中的杂点,然后将图像转换为8位。在“图像”菜单中,进入“调整亮度/对比度”子菜单,将对比度滑块调至最大对比度。这样可使细胞在黑色背景上呈现为白色物体。
然后,返回“调整阈值”子菜单,确保细胞以黑色物体的形式显示在白色背景上。现在,运行自动细胞追踪插件 MTrack2 kt。在选项界面中,将粒子大小的最小值设置为 1 像素,最大值设置为 30 像素。
将速度值设为10像素,尽管边缘区B细胞在相隔五秒的连续帧中通常不会超过2像素。细胞轨迹现已可使用ibidi趋化分析工具进行分析。这两个视野显示了接种在ICAM-1包被载玻片上的边缘区B细胞的迁移路径。
使用本文所述方法,通过 MTrack2 对细胞进行自动追踪。左侧为静态条件下成像的细胞,右侧为暴露于每平方厘米四达因剪切流中的细胞。每个细胞的运动轨迹可导入 ibidi 细胞趋化分析工具,以生成每段视频的轨迹图。
此处,单个细胞轨迹以红色表示,表明其终点位于起点的下游,或以黑色表示终点位于起点的上游。图中展示了在有流动和无流动条件下,来自四个独立视频的细胞轨迹分析结果,包括两种条件下的平均定向迁移指数、细胞速度、路径直线度以及最终的直线距离。
观看本视频后,您应能充分理解如何对边缘区B细胞在剪切流作用下的定向迁移进行成像,以及如何实现细胞的自动追踪。在该实验过程中,还可结合其他方法(如全内反射荧光显微镜技术)来进一步探究其他科学问题,例如细胞骨架和整合素如何响应剪切应力?
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本方案展示了边缘区B细胞(MZBs)如何通过改变其迁移路径来响应剪切流。该方法涉及使用流体控制装置和显微镜成像来分析细胞运动。
了解免疫细胞在生理剪切力作用下的迁移机制,对于降低免疫调节药物研发中靶点验证的风险至关重要。该方法提供了一种定量且可重复的检测手段,用于评估白细胞对血流动力学力的响应,从而在流动条件下深入揭示整合素介导的黏附作用及细胞骨架动态变化的机制。通过在可控剪切应力下标准化迁移分析,该方法有助于提高早期靶点假设验证和信号通路解析的预测可靠性。
该方法适用于从靶点假设筛选到先导化合物优化的整个发现流程,尤其适用于以流动条件下细胞迁移为关键作用机制的免疫调节剂研究。