2019年1月20日
利用多步骤培养系统,我们报道了一种体外B细胞向浆细胞分化的模型。
浆细胞是稀有细胞,其在解剖学位置上经历30个分化阶段,这些位置阻碍了对细胞生物学特性的全面表征,尤其是在人体中。我们的体外B2浆细胞分化模型可重现体内不同器官中发生的有序细胞分化与成熟过程。该体外模型能够再现体内可检测到的不同B2浆细胞阶段的协调性转录变化及其表型特征。
我们还构建了一个开放获取的生物信息学工具,用于分析与浆细胞分化相关的探索性数据中最显著的信息。演示该实验步骤的是我实验室的博士后 Hugues de Boussac。首先,从健康志愿者中获取外周血细胞,用于记忆B细胞的纯化。
将7.5毫升血液与24.5毫升RPMI 1640培养基混合稀释。接着,向一个无菌的50毫升锥形管中加入12.5毫升室温密度梯度液。轻轻将32毫升稀释后的血液覆盖于密度梯度液上方,注意尽量减少两相之间的混合。
在无刹车条件下,以500 × g离心20分钟。从稀释的血浆与密度梯度界面处收集外周血单个核细胞。将细胞转移至无菌的50毫升离心管中,并加入汉克平衡盐溶液至45毫升。
在500 × g条件下离心5分钟。小心弃去上清液,保留沉淀。随后加入45毫升RPMI 1640培养基,添加10% FCS。
在500 × g条件下离心5分钟。小心弃去上清液,保留沉淀。加入30 mL PBS,其中添加2% FCS。
使用抗CD磁珠去除CD2阳性细胞,每四个磁珠对应一个靶细胞。在4°C下孵育30分钟。利用磁力架进行细胞分离,将与磁珠结合的细胞与未结合的细胞分离开。
收集未结合的细胞,并在4°C下与抗CD19 APC抗体和抗CD27 PE抗体孵育15分钟。用含有10%小牛血清的PBS洗涤细胞两次。然后,使用细胞分选仪将记忆B细胞纯化至95%纯度。
此后,加入可溶性 CD40 配体和抗多聚组氨酸单克隆抗体以激活记忆 B 细胞。将纯化的记忆 B 细胞接种于六孔培养板中,用白细胞介素-2、白细胞介素-10 和白细胞介素-15 培养四天。进行基因表达谱分析时,使用细胞分选仪在第4天纯化 CD38 阴性 CD20 阴性的前浆母细胞。
第四天,计数细胞,并将细胞悬液以每毫升250,000个细胞的密度接种至12孔培养板中,每孔加入两毫升细胞悬液。为诱导分化,去除CPG寡核苷酸和可溶性CD40配体,加入含有新细胞因子组合的新鲜培养基,该组合包括白细胞介素-2、白细胞介素-6、白细胞介素-10和白细胞介素-15。将细胞在37摄氏度条件下培养三天。
进行基因表达谱分析时,使用细胞分选仪在第7天纯化CD38阳性、CD20阴性的浆母细胞。在第7天对细胞进行计数。将细胞以每孔500,000个细胞的密度接种于12孔培养板中,每孔加入2毫升细胞悬液。
使用含有白细胞介素-6、白细胞介素-15和干扰素-α的新鲜培养基,在37摄氏度下将浆母细胞分化为早期浆细胞,持续三天。为了进行基因表达谱分析,在第10天使用细胞分选仪纯化CD20阴性、CD38阳性、CD138阳性的早期浆细胞。首先,用培养基将基质细胞培养五天。
使用0.2微米滤器过滤基质细胞培养上清液,以获得基质细胞条件培养基,并冷冻保存至使用前。接下来,将早期浆细胞接种于12孔培养板中,每孔加入2毫升细胞悬液,细胞密度为每孔500,000个细胞,使用先前获得的含有白细胞介素-6和APRIL的基质细胞条件培养基进行培养。于37°C孵育,每周更换一次基质细胞条件培养基。
然后,通过流式细胞术分选的浆细胞检测其免疫球蛋白分泌情况。将浆细胞以每毫升一百万个细胞的密度培养24小时,收集培养上清液。使用ELISA试剂盒检测免疫球蛋白G(IgG)和免疫球蛋白A(IgA)。首先,启动GenomicScape开放获取生物信息学网络工具。
在浏览数据菜单中,选择名为 human B cells to plasma cells 的数据集。可使用分析工具中的“表达/共表达报告”工具来可视化单个基因或基因列表的基因表达谱。接下来,选择分析工具 webSAM 以加载 SAM 工具。
选择人B细胞向浆细胞分化的数据集,并选定要比较的样本组。使用可用的各种筛选条件,应用感兴趣的筛选选项。若要使用SAM工具比较基因表达谱,请调整包括倍数变化、置换次数、错误发现率以及比较类型在内的筛选参数。
该软件将进行分析,并提供在所选组别之间差异表达的基因。本研究探讨了正常浆细胞分化过程中表观遗传因子的表达变化。通过多类别SAM分析发现,在记忆B细胞、前浆母细胞、浆母细胞、早期浆细胞和骨髓浆细胞之间,共有71个基因显著差异表达,错误发现率低于5%。记忆B细胞阶段的特征是23个表观遗传相关基因的过表达,其中包括39.13%的组蛋白乙酰转移酶、30.43%的组蛋白甲基转移酶、21.74%的组蛋白去甲基化酶、4.35%的甲基结合蛋白以及4.35%的组蛋白去乙酰化酶。
在前浆母细胞阶段,有14个表观遗传调控基因显著过表达,其中包括50%的组蛋白甲基转移酶、14.28%的DNA甲基转移酶、21.43%的组蛋白去乙酰化酶、7.14%的组蛋白去甲基化酶以及17.14%的组蛋白乙酰转移酶。通过该实验流程,可进一步开展多项分析,以鉴定并理解B2浆细胞分化过程中染色质结构与构象的改变。该体外分化模型能够产生足够数量的细胞,用于完成上述分子分析,从而揭示参与整个建模过程的相关信号通路及其在B2浆细胞分化期间的下游转录影响。
本研究所获得的知识可为浆细胞疾病(如多发性骨髓瘤)的诊断和治疗策略提供依据和指导。多发性骨髓瘤是一种尚无明确治愈手段的癌症,迫切需要更佳的预后评估和更优的治疗策略。其中,特别值得关注的是B2浆细胞分化过程中影响染色质的表观遗传重塑、结构及构象变化的特征与机制。这些研究可通过基因测序、ERRBS、ATAC测序、IC以及RNA测序等技术实现。
根据用于记忆B细胞纯化的健康供体血液的不同,活化B细胞、前浆母细胞、浆母细胞和浆细胞的比例可能存在一定程度的异质性。
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本研究提出了一种B细胞向浆细胞分化的体外模型,采用多步骤培养系统。该模型能够有效模拟体内观察到的B2浆细胞的连续分化与成熟过程。
人类浆细胞的分化是免疫学驱动药物发现中的一个关键瓶颈,原因在于这些细胞在体内的稀有性和难以获取性。该体外模型能够系统地研究B细胞的成熟过程,为抗体及免疫调节研发管线中的机制性风险评估和靶点验证提供可扩展的平台。结合开放获取的生物信息学工具,可进一步增强与浆细胞相关治疗策略的转化连续性及产品组合决策能力。
该模型通过实现人浆细胞成熟过程中的可控分化、定量表型分析以及整合性生物信息学分析,架起了早期发现与临床前研究之间的桥梁。