2019年11月12日
我们描述了一种定量实时体外细胞裂解检测系统,用于评估靶向液体和实体肿瘤细胞的嵌合抗原受体T细胞的杀伤效力。该方案可扩展用于评估其他免疫效应细胞以及联合治疗方法。
xCELLigence 实时细胞分析技术可让您在无标记条件下,连续数天定量监测免疫细胞对癌细胞的杀伤作用。该系统能够提供靶向癌细胞杀伤的完整时间过程,支持在较低效应细胞与靶细胞比例下,同时筛选大量构建体、效应细胞类型或联合治疗方法。首先,在150毫升细胞培养皿中加入含DMEM培养基的1.5 × 10⁷个HEK293FT细胞,于37°C、5% CO₂及湿度环境中过夜培养。
第二天早晨,在2.5毫升转染稀释液中加入5微克慢病毒载体质粒DNA和22.5微克慢病毒包装混合物,再加入82.5微升转染试剂,混匀。室温孵育15分钟后,将反应液逐滴加入HEK293FT细胞培养皿中,并将细胞放回培养箱中继续过夜培养。次日早晨,弃去上清液,加入19毫升新鲜DMEM培养基,将细胞再次放回培养箱中过夜培养。
将上清液收集到一个50毫升的锥形管中,在4摄氏度下保存接下来的两天,于第二天早晨通过离心沉淀慢病毒,以去除溶液中的任何细胞或碎片。将含有慢病毒的上清液除约1毫升外全部转移至超清晰离心管中进行超速离心。超速离心后,小心吸除残留的含有病毒的上清液,轻轻加入100微升DMEM至沉淀中,并将离心管置于冰上静置15分钟。
孵育结束后,轻轻混匀溶液,并将慢病毒溶液分装至预冷的无菌离心管中,于负80摄氏度保存。随后根据制造商说明书,通过定量RT-PCR测定慢病毒滴度。用于CAR-T细胞的生成与扩增时,在细胞培养孵箱中,于24孔板的一个孔内,用1毫升CAR-T细胞培养基,加入等数量的CD3/CD28包被微珠,激活一至两乘以十的六次方个外周血单个核细胞,持续24小时。
接下来的两个早晨,将一微升转导增强剂与细胞混合,随后加入慢病毒,感染复数为5比1。每两到三天监测一次T细胞生长情况,根据需要添加新鲜的CAR-T细胞培养基,以维持细胞浓度在每毫升一至两乘以十的六次方个细胞。为了通过流式细胞术检测T细胞的CAR表达,将三乘以十的五次方个CAR转导和非转导T细胞分别转移至三个独立的1.5毫升微量离心管中。
通过离心收集细胞,并将沉淀重悬于200微升含1%人血清的FACS缓冲液中。将每份细胞样品分装至预冷的5毫升聚苯乙烯FACS管中,每管100微升,置于冰上。5分钟后,向每种细胞类型的其中一管加入1微升生物素标记的羊抗小鼠FAB2片段,向另一管加入2微升PE标记的抗标签抗体,充分混匀。
冰上孵育30分钟后,用三毫升新鲜FACS缓冲液洗涤细胞,离心后弃去上清液。将沉淀物重悬于残留的上清液中,每管加入2 µL APC标记的抗CD3抗体和2 µL 7-AAD。向经抗FAB2抗体染色的试管中加入1 µL PE标记的链霉亲和素,短暂混匀,然后将所有试管置于冰上孵育30分钟。
孵育结束后,根据标准方案通过流式细胞术分析细胞,使用前向散射光与侧向散射光以及CD3与7-AAD表达对T细胞进行设门。对于实时细胞溶解活性检测,向e-板的每孔中加入50至100微升靶细胞培养基,并在细胞分析仪中测量背景阻抗。使用胰蛋白酶从培养板中消化获取靶癌细胞。
用 15 毫升新鲜培养基洗涤细胞并离心。将癌细胞沉淀重悬于 5 毫升新鲜培养基中进行计数,并将细胞密度调整至适当的靶细胞浓度。将细胞加入适量的孔板中,在室温下静置 30 分钟,使细胞均匀沉降到孔底。
平衡期结束后,将培养板放入实时细胞分析仪中,并自动开始每15分钟一次的阻抗测量,持续过夜。可实时监测靶细胞的贴壁和增殖情况。次日早晨,将效应CAR T细胞和对照T细胞分别稀释至适当浓度,然后从电子板(e-plate)的每个孔中移除50至100微升培养液,使每孔终体积为100微升。
接下来,将效应T细胞和对照T细胞以适当的效应细胞与靶细胞比例接种到相应的孔中,每孔加入100 µL培养基。然后将e-plate在室温下平衡30分钟,再将培养板放回细胞分析系统。为评估T细胞介导的靶向癌细胞杀伤效果,需持续监测CAR-T细胞介导的杀伤作用达96小时。
约50%的CAR-T细胞对单链可变区片段抗体呈阳性染色,表明约50%的T细胞表达了CAR。在此代表性实验中,所有组均采用10:1的效应细胞与靶细胞比例。与仅含对照T细胞和Mock CAR-T细胞的组相比,仅含Raji细胞以及经CD22-CAR T细胞处理的Raji细胞组显示出显著的杀伤效应。
在本实验中,只有表达CD47-CAR的T细胞能够有效杀伤胰腺癌细胞。此外,单独CD47-CAR-T细胞产生的阻抗信号仅略高于单独培养基孔中的细胞指数信号,表明悬浮细胞(如CAR-T细胞)本身产生的阻抗信号极小,当CAR-T细胞与靶癌细胞共培养时,其对总体阻抗信号的贡献可忽略不计。值得注意的是,与不含GITR结构域的原始CAR构建体相比,含有GITR共刺激结构域的CAR在增强CAR-T细胞对表皮生长因子受体阳性靶细胞的杀伤能力方面效果更显著。
可根据实验需求,在检测过程中或检测结束后收集 e-plate 孔中的培养基,以分析细胞因子谱。总体而言,xCELLigence 技术提高了评估多种免疫疗法效力的效率,其应用范围涵盖双特异性 T 细胞衔接分子、溶瘤病毒以及联合治疗中的免疫检查点抑制剂。
本文介绍了一种定量实时体外细胞溶解检测系统,旨在评估嵌合抗原受体(CAR)T细胞对液体和实体肿瘤细胞的杀伤效力。该方法可用于评估多种免疫效应细胞及联合治疗方案的效果。
该实时效价检测方法使生物制药团队能够在无标记条件下,定量评估CAR T细胞对血液系统和实体瘤靶点的杀伤效果。通过连续数天提供基于阻抗的肿瘤细胞杀伤动态读数,该方法可支持CAR结构的机制性风险评估,并为早期发现阶段的决策提供依据。该检测方法适用于低效应细胞与靶细胞比例条件,并可进行多重结构并行筛选,从而提高先导分子识别和产品线筛选的通量。
该检测方法适用于从发现到临床前研究的连续流程,可在投入资源密集型的体内验证之前,实现CAR-T优化的迭代式设计-测试循环。