2019年6月21日
本文介绍一种灵敏、快速且具有高分辨能力的凝胶后染色方法,可用于对带有RNA Mango适体I、II、III或IV标记的RNA进行成像,适用于天然或变性聚丙烯酰胺凝胶电泳(PAGE)凝胶。在完成标准PAGE电泳后,可使用TO1-Biotin对带有Mango标签的RNA进行简便染色,并利用常见的荧光成像仪进行分析。
本文展示的Mango标记凝胶成像方法具有良好的稳健性,预计在灵敏度和特异性方面可进一步简单拓展。通过将Mango标记添加至目标RNA,该方法可简便地实现对具有重要生物学功能的RNA及RNA复合物的常规纯化。RNA正被发现与越来越多的疾病相关,因此这种后标记技术为RNA的追踪与可视化提供了一种简便快速的方法。
在将凝胶从一处转移至另一处时需格外小心,因为凝胶较为脆弱,容易断裂。制备30毫升变性凝胶时,首先应根据目标RNA选择合适浓度的聚丙烯酰胺,并搭配相应的溴酚蓝和二甲苯蓝染料,以确保条带分离效果良好。然后,按照表一将溶液A、B和C混合,并加入APS和TEMED。
立即将凝胶溶液倒入合适的凝胶制备装置中。插入所需的梳子,并让凝胶聚合约30分钟。用1×TBE溶液填充电泳槽,并小心移去梳子。
小心地提起凝胶,并将其安装到凝胶装置上,使用长尾夹固定。在上样前,用注射器抽吸去除加样孔中的液体。通过向目标RNA样品中加入2X变性凝胶上样缓冲液,制备1X RNA样品。
使用PCR仪将样品在95摄氏度加热5分钟。随后,使用凝胶加样枪头将冷却后的样品加入到每个孔的底部。在室温下电泳,确保电压足够低,以免导致凝胶装置的玻璃板破裂。
根据手稿,在一个足够宽的洁净玻璃容器中配制1X凝胶染色液,确保凝胶能够完全放入其中。加入足量的1X凝胶染色液,使凝胶置于摇床中时能被溶液完全覆盖。电泳结束后,从装置中取出凝胶,切去加样孔以及凝胶的一角,以帮助确定凝胶的方向。
然后,小心地将凝胶转移至1X凝胶染色液中。进行成像时,小心倒出染色液,并用清水快速冲洗凝胶。最后,小心地将凝胶转移至成像仪的托盘上。
用玻璃移液管在凝胶上滚动,以去除截留的气泡和多余的液体,然后进行凝胶成像。芒果适配体一、二、三、四在尿素浓度高达约1摩尔时仍显著抵抗变性。
20至40分钟的染色时间足以达到凝胶荧光的最大强度。更长的时间不适用于本研究中使用的小分子RNA,因为它们会开始从凝胶中扩散出来。荧光分析表明,在尿素存在下,Mango适体一、二和三的折叠速度比适体四更快。
在没有尿素的情况下,折叠速度明显更快,这与预期一致。染色后检测方法的灵敏度通过每种Mango变体在天然和变性凝胶中均显示出对应于正确折叠RNA的单一条带得以体现,其中变性凝胶的灵敏度略低。天然凝胶的定量结果在约一个数量级范围内呈对数线性关系,其中Mango一、二和四号的线性表现优于Mango三号。
变性凝胶的定量结果线性更好,提示变性凝胶中尿素的存在可能在将适配体置于 TO1 生物素染色液时,提供更均一的折叠方式。与 SG 染色相比,使用 TO1 生物素染色可在总 RNA 存在的情况下检测到 Mango 标记的 RNA。请注意确保凝胶染色容器足够大以容纳凝胶,否则凝胶可能发生折叠。
RNA 样品将从一个地方转移至另一个地方。与变性凝胶类似,该方法也可用于天然凝胶。在低温室中以较低功率电泳,以维持天然条件。
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本文介绍了一种快速且灵敏的凝胶后染色方法,用于通过聚丙烯酰胺凝胶电泳(PAGE)成像带有RNA Mango适体标记的RNA。该方法增强了对具有重要生物学意义的RNA及RNA复合物的追踪与可视化能力。
在聚丙烯酰胺凝胶中对Mango标记的RNA进行荧光可视化,可实现对复杂混合物中RNA种类的高灵敏度、高特异性和低成本检测。该技术满足了在早期发现和检测方法开发过程中对RNA进行可靠追踪与定量的关键需求,有助于提升针对RNA的研究的预测可信度。该方法的高灵敏度和高特异性有助于对RNA相关项目组合进行筛选,并推动基于风险评估的项目进展。
这种染色后方法可从早期发现阶段无缝整合至先导化合物鉴定及临床前研究,提供可重复使用的RNA可视化与定量能力。