2019年8月20日
本文介绍了一种免疫荧光染色方案,用于直接观察小鼠主动脉的内皮细胞。该技术在研究不同血流模式下内皮细胞的细胞和分子表型以及动脉粥样硬化发展过程中具有重要应用价值。
本方案有助于人们分析在不同流体剪切应力下内皮细胞的形态以及区域分子的表达。该技术的主要优势在于能够直接评估不同流体剪切应力下的血管内皮细胞。在执行该操作时,关键步骤是使用 freshly prepared 多聚甲醛并进行良好的灌注。
按照文本方案所述,首先对一只12周龄的C57BL/6小鼠进行麻醉。通过轻轻夹捏尾巴确认麻醉效果。使用胶带将小鼠的四肢固定在一堆纸巾上。
用镊子提起小鼠的皮肤,用剪刀从腹部剪至胸腔顶部。用锋利的剪刀在肋骨下方切开腹腔。用镊子提起胸骨,并剪断膈肌。
然后剪除肋骨以暴露胸腔。用剪刀在肝脏上方剪断腔静脉。通过左心室,用含有每毫升40单位肝素的预冷生理盐水对动脉系统进行压力灌注5分钟,直至肺和肝脏变为苍白。
然后用预冷的含4%多聚甲醛的PBS灌注4分钟。去除所有肌肉、器官和脂肪,直至暴露主动脉。将小鼠置于解剖显微镜下。
使用精细镊子和精细剪刀在解剖显微镜下清晰暴露主动脉,并尽可能干净地去除主动脉周围的结缔组织。用精细剪刀从心脏至腹腔干处分离胸主动脉。将主动脉置于含磷酸盐缓冲液(PBS)的6厘米细胞培养皿中。
沿小弯侧纵向切开主动脉,然后使用显微剪沿大弯侧切开主动脉弓的三个分支,包括无名动脉、左颈总动脉和左锁骨下动脉,直至到达直部段。用含1%聚氧乙烯辛基苯基醚的PBS溶液对主动脉进行10分钟的通透处理。随后,在12孔细胞培养板中,用含2.5%吐温20的Tris缓冲盐水配制的10%正常山羊血清于室温下封闭主动脉1小时。
接下来,将主动脉置于封闭缓冲液中孵育,缓冲液中含有5克/毫升的兔抗VCAM1和5克/毫升的大鼠抗VE-钙黏蛋白,在4摄氏度下孵育过夜。用洗涤液将样本冲洗三次后,在室温下避光孵育荧光标记的二抗一小时。再用洗涤液冲洗三次。
将主动脉用 DAPI 复染 10 分钟,并置于避光处。然后用洗涤液冲洗染色后的主动脉三次。将主动脉放置在盖玻片上,腔面朝下,缓慢移入先前已滴加在盖玻片上的抗荧光淬灭封片液中。
轻轻拉伸主动脉,以保持样本平整。将盖玻片翻转后置于玻片上,注意避免样本与玻片之间产生气泡。
使用激光扫描共聚焦显微镜观察主动脉。利用Image-Pro Plus软件分析面视图图像中目标区域不同通道的颜色强度。图中显示了小鼠主动脉血管内皮细胞的面视免疫荧光染色图像。
显示了小鼠主动脉不同区域在不同血流模式下血管细胞粘附蛋白1的正面免疫荧光染色,以及与内皮细胞标志物VE-钙黏蛋白的共表达情况。同时使用DAPI复染以显示细胞核,便于更好地观察。在显微镜下观察Z轴层扫图像时,可通过细胞核形态轻松区分内皮细胞与平滑肌细胞。
内皮细胞的细胞核呈椭圆形,比呈梭形的平滑肌细胞核更大。与主动脉弓外侧曲以及胸主动脉等稳态血流区域相比,主动脉弓内侧曲等扰动血流区域的VCAM-1表达更为丰富。此处小鼠主动脉的内侧曲区域被标记为扰动血流(d-flow)区域,而外侧曲及胸主动脉区域则为稳态血流区域。
经过适当的改进,该技术还可用于分析血管通透性以及大分子在内皮细胞内膜中的位置。
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本研究介绍了一种免疫荧光染色方案,用于直接观察小鼠主动脉的内皮细胞。该技术可用于分析在不同流体剪切应力条件下这些细胞的细胞和分子表型,尤其适用于与动脉粥样硬化发展相关的研究。
在生理剪切应力下直接观察完整的内皮单层细胞,可为动脉粥样硬化研究中血管靶点的机制性风险评估提供支持。该方法通过将血流动力学力与原位分子表型关联,提高靶点验证的预测可信度。该体系可在无需基因操作或药物干预的情况下,为早期病理生理学研究提供与疾病相关的研究平台。
该技术适用于从靶点假设验证到表型筛选,再到临床前验证的整个发现流程,尤其适用于以血管系统为靶向的研究项目。