Name: 自动 3D 光学相干断层扫描，以在大型空间尺度上阐明生物膜变形 (视频) | JoVE Journal
Uploaded: 2019-08-21T13:00:00.000+00:00
Duration: 9 s
Description: 了解自动光学相干断层扫描技术如何在大空间尺度上监测微生物生物膜的三维形态发生。该方法实现非侵入式长期成像，助力生物膜结构动态研究与微生物生态学发展。

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感谢Mauricio Aguirre Morales对本系统开发所做出的贡献。&#160;本研究由瑞士国家科学基金会向T.J.B.提供经费支持。

1. 定位装置的设置
<ol>
	<li>根据 https://github.com/grbl/grbl/wiki/Connecting-Grbl 中的说明，将定位装置连接至微控制器板。</li>
	<li>将微控制器通过 USB 线缆连接至具有互联网连接的单板计算机，并按照 https://gitlab.com/FlumeAutomation/GRBL_Server.git 中的说明安装 GRBL 服务器。此时，应可通过托管于 http://IP:5020/ 的网页访问并控制定位装置。或者，也可使用 Python 脚本控制该定位装置。, 如示例的第一部分所示 ImagesAcquisition.ipynb (补充文件 2).</li>
</ol>
2. OCT 设置
<ol>
	<li>使用兼容的燕尾槽支架将OCT探头安装到定位装置上。如有需要，在物镜上安装浸没式适配器。</li>
	<li>将计算机和OCT主机放置在实验装置（例如微流控装置、流动腔、水槽、过滤系统）旁边的实验台上。确保光缆（最大长度约1.8 m）可自由移动，长度足以到达所有目标位置，且不会干扰实验装置。</li>
	<li>按照制造商说明安装OCT系统及配套软件。</li>
	<li>按照 https://gitlab.com/FlumeAutomation/automated-oct-scans-acquisition.git 中的说明安装用于自动OCT扫描采集的软件包。</li>
</ol>
3. 图像采集
<ol>
	<li>打开OCT系统和定位装置。确保装置能够自由移动。</li>
	<li>打开文件 config.json 在文本编辑器中。编辑 config.json 文件以调整默认图像采集参数（表2)，例如折射率（水在 20 °C，1.00（空气）以及采集数据和元数据的目标文件夹。 </li>
	<li>定义视场（FOV）的大小以及每个B扫描中的A扫描数量 config.json. 
	注意：这两个参数决定了最终数据集体素的大小以及输出文件的大小，应与探头的光学分辨率相匹配（x-y 方向的体素尺寸不应小于光学分辨率的一半）。A扫描和B扫描的数量会影响所需覆盖的空间范围，但需权衡可用的磁盘空间和计算能力。</li>
	<li>定义输出OCT扫描的信号边界 config.json。这些参数取决于样本类型，因此建议根据一组初步扫描的强度直方图来确定这些参数。保存所做的更改。 config.json.</li>
	<li>将OCT探头导航至目标区域。对样本进行聚焦，并调节参考臂和光源强度以获得最佳图像质量。对多个位置重复此操作，并记录坐标。 
	注意：这将允许后续围绕这些参考点自动进行OCT扫描采集。请注意，在自动图像采集过程中，参考臂的长度和强度无法更改。</li>
	<li>打开 ImageAcquisition.ipynb 文件（补充文件 2) 在 Jupyter Notebook 中。每个单元格包含用于执行特定任务的代码，可通过按下按键分别运行 细胞 | 运行，或 Ctrl + Enter 或 Shift + Enter.
	<ol>
		<li>设置所需库的路径和默认配置参数。或者，定义一组新的临时参数.</li>
		<li>连接定位装置并初始化光学相干断层扫描仪。</li>
		<li>校准定位装置（即., 执行“归巢”操作。</li>
		<li>获取覆盖单次扫描或镶嵌模式下目标位置的数据集，并指定数量和重叠区域（例如., 30%）的相邻图块。 
		注意：内存是在扫描前分配的，这可以优化计算机资源的使用。数据以8位保存*.raw 格式以节省存储空间，并保存到已定义的目标文件夹中 config.json，使用时间戳和位置作为命名规则（即 %Y%m%d_%H%M%S_&lt;位置&gt;）。包括OCT设置和坐标的元数据将保存在同一文件夹中的*.srm 文件大小可能因视野（FOV）和分辨率等设置而异，每次OCT扫描的文件大小可达1.5 GB。</li>
	</ol>
	</li>
	<li>为避免数据采集过程中断，请确保有足够的磁盘可用空间，或持续将OCT数据集转移至外接硬盘。</li>
</ol>
4. 图像校正与显示
<ol>
	<li>打开 Jupyter 笔记本 ImageProcessing.ipynb (补充文件 1) 用于 OCT 图像处理（畸变校正、背景扣除、高程图计算、高程图拼接）的实例演示。</li>
	<li>如有需要，裁剪OCT扫描图像以排除伪影信号，并重新调整数据集方向（生物膜应位于基质上方）。</li>
	<li>校正球面像差。该过程通过一种校正算法实现，该算法利用已知为平面的高反射参考表面（例如水槽底部、基底）。首先，算法在OCT扫描的xy平面内定义一个20×20的垂直线网格，各线在平面上均匀分布。随后，算法在每个点周围选取一个圆形区域，并沿垂直剖面平均信号强度图2B）。垂直剖面采用改进的高斯滤波器进行处理： 
	<img alt="高斯函数方程 ω(x)=e^(1/2)(x/σ)^2 + C；数学公式；教育用途" src="/files/ftp_upload/59356/59356eq1.jpg" style="opacity: 0.9;" data-altupdatedat="1788282455000" data-alt="公式 1"> 
	其中 x 是输入信号，σ 为其标准差，而 C 由如下方式确定： 
	<img alt="积分方程 ∫ 从 -a 到 a 的 ω(x)dx=0，对称函数分析，公式图示。" src="/files/ftp_upload/59356/59356eq2.jpg" style="opacity: 0.9;" data-altupdatedat="1788282455000" data-alt="公式 2"> 
	参考表面被定位为这些轮廓中的局部最大值。基于三维空间中相邻点的位置，对误识别的点进行过滤。图 2C）。最后，一个2nd 通过这些点拟合一个多项式曲面，以反映扫描透镜引入的畸变图2C）。拟合的表面随后用于在 z 方向移动每个像素，从而获得展平的图像。该算法的参数应根据 OCT 扫描的特征进行调整。</li>
	<li>校正背景噪声。在图像中选择一个空白区域（通常位于生物膜上方），使用校正算法从图像的强度值中减去平均背景强度，以获得最终校正后的OCT图像。图2D).</li>
	<li>从三维OCT数据集计算高程图。在此步骤中，为特定实验定义感兴趣的参考表面（例如基底）和适当的阈值强度。然后，使用高程图计算算法，计算二值掩膜每个坐标（x,y）处的生物膜厚度，并将其赋值给一个新的二维矩阵。图3A）。然后将厚度值分配给一个在 x 和 y 方向上与原始图像尺寸相同的二维矩阵。生成的图像中，表面的高度以灰度值表示（图3B).</li>
	<li>若采用马赛克模式获取多个OCT扫描图像，请定义行数和列数，并拼接相应的高度图。 图5 展示了拼接高程图的示例，涵盖了所述装置可实现的广泛空间尺度和分辨率范围。</li>
</ol>

<ol><li>Flemming, H. C., Wingender, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+biofilm+matrix%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+reviews.+Microbiology%22%5BJournal%5D)">The biofilm matrix.</a> Nature reviews. Microbiology. 8, 623-633 (2010).</li>
<li>Flemming, H. -C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Biofilms%3A+an+emergent+form+of+bacterial+life%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+reviews.+Microbiology%22%5BJournal%5D)">Biofilms: an emergent form of bacterial life.</a> Nature reviews. Microbiology. 14, 563(2016).</li>
<li>Stoodley, P., Lewandowski, Z., Boyle, J. D., Lappin-Scott, H. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Oscillation+characteristics+of+biofilm+streamers+in+turbulent+flowing+water+as+related+to+drag+and+pressure+drop%5BTitle%5D)+AND+%22Biotechnology+and+Bioengineering%22%5BJournal%5D)">Oscillation characteristics of biofilm streamers in turbulent flowing water as related to drag and pressure drop.</a> Biotechnology and Bioengineering. 57, 536-544 (1998).</li>
<li>Stoodley, P., Lewandowski, Z., Boyle, J. D., Lappin-Scott, H. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+formation+of+migratory+ripples+in+a+mixed+species+bacterial+biofilm+growing+in+turbulent+flow%5BTitle%5D)+AND+%22Environmental+microbiology%22%5BJournal%5D)">The formation of migratory ripples in a mixed species bacterial biofilm growing in turbulent flow.</a> Environmental microbiology. 1, 447-455 (1999).</li>
<li>Banin, E., Vasil, M. L., Greenberg, E. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Iron+and+Pseudomonas+aeruginosa+biofilm+formation%5BTitle%5D)+AND+%22Proceedings+of+the+Natural+Academy+of+Sciences+U.S.A%22%5BJournal%5D)">Iron and Pseudomonas aeruginosa biofilm formation.</a> Proceedings of the Natural Academy of Sciences U.S.A. 102, 11076-11081 (2005).</li>
<li>Battin, T. J., Besemer, K., Bengtsson, M. M., Romani, A. M., Packmann, A. I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+ecology+and+biogeochemistry+of+stream+biofilms%5BTitle%5D)+AND+%22Microbiology%22%5BJournal%5D)">The ecology and biogeochemistry of stream biofilms.</a> Microbiology. 14, 251-263 (2016).</li>
<li>Battin, T. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Microbial+landscapes%3A+new+paths+to+biofilm+research%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Reviews.+Microbiology%22%5BJournal%5D)">Microbial landscapes: new paths to biofilm research.</a> Nature Reviews. Microbiology. 5, 76-81 (2007).</li>
<li>Neu, T. R., Lawrence, J. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Innovative+techniques%2C+sensors%2C+and+approaches+for+imaging+biofilms+at+different+scales%5BTitle%5D)+AND+%22Trends+in+Microbiology%22%5BJournal%5D)">Innovative techniques, sensors, and approaches for imaging biofilms at different scales.</a> Trends in Microbiology. 23, 233-242 (2015).</li>
<li>Meleppat, R. K., Shearwood, C., Seah, L. K., Matham, M. V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Quantitative+optical+coherence+microscopy+for+the+in+situ+investigation+of+the+biofilm%5BTitle%5D)+AND+%22J.+of+Biomedical+Optics%22%5BJournal%5D)">Quantitative optical coherence microscopy for the in situ investigation of the biofilm.</a> J. of Biomedical Optics. 21 (12), 127002(2016).</li>
<li>Wagner, M., Horn, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Optical+coherence+tomography+in+biofilm+research%3A+A+comprehensive+review%5BTitle%5D)+AND+%22Biotechnology+and+Bioengineering%22%5BJournal%5D)">Optical coherence tomography in biofilm research: A comprehensive review.</a> Biotechnology and Bioengineering. 114, 1386-1402 (2017).</li>
<li>Huang, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Optical+coherence+tomography%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Optical coherence tomography.</a> Science. 254, 1178-1181 (1991).</li>
<li>Haisch, C., Niessner, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Visualisation+of+transient+processes+in+biofilms+by+optical+coherence+tomography%5BTitle%5D)+AND+%22Water+Resources%22%5BJournal%5D)">Visualisation of transient processes in biofilms by optical coherence tomography.</a> Water Resources. 41, 2467-2472 (2007).</li>
<li>Drexler, W., Fujimoto, J. G. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aDrexler%2C+W+%22Optical+Coherence+Tomography%3A+Technology+and+Applications%22">Optical Coherence Tomography: Technology and Applications</a>. , Springer Verlag. (2008).</li>
<li>Fercher, A. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Optical+coherence+tomography+%E2%80%93+development%2C+principles%2C+applications%5BTitle%5D)+AND+%22Zeitschrift+f%C3%BCr+Medizinische+Physik%22%5BJournal%5D)">Optical coherence tomography – development, principles, applications.</a> Zeitschrift für Medizinische Physik. 20, 251-276 (2010).</li>
<li>Lee, H. -C., Liu, J. J., Sheikine, Y., Aguirre, A. D., Connolly, J. L., Fujimoto, J. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ultrahigh+speed+spectral-domain+optical+coherence+microscopy%5BTitle%5D)+AND+%22Biomedical+Optics+Express%22%5BJournal%5D)">Ultrahigh speed spectral-domain optical coherence microscopy.</a> Biomedical Optics Express. , 41236-41254 (2013).</li>
<li>Fortunato, L., Leiknes, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In-situ+biofouling+assessment+in+spacer+filled+channels+using+optical+coherence+tomography+%28OCT%29%3A+3D+biofilm+thickness+mapping%5BTitle%5D)+AND+%22Bioresource+Technology%22%5BJournal%5D)">In-situ biofouling assessment in spacer filled channels using optical coherence tomography (OCT): 3D biofilm thickness mapping.</a> Bioresource Technology. 229, 231-235 (2017).</li>
<li>Niederdorfer, R., Peter, H., Battin, T. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Attached+biofilms+and+suspended+aggregates+are+distinct+microbial+lifestyles+emanating+from+differing+hydraulics%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Microbiology%22%5BJournal%5D)">Attached biofilms and suspended aggregates are distinct microbial lifestyles emanating from differing hydraulics.</a> Nature Microbiology. 1, 16178(2016).</li>
<li>Roche, K. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Benthic+biofilm+controls+on+fine+particle+dynamics+in+streams%5BTitle%5D)+AND+%22Water+Resources%22%5BJournal%5D)">Benthic biofilm controls on fine particle dynamics in streams.</a> Water Resources. 53, 222-236 (2016).</li>
<li>Fortunato, L., Jeong, S., Wang, Y., Behzad, A. R., Leiknes, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Integrated+approach+to+characterize+fouling+on+a+flat+sheet+membrane+gravity+driven+submerged+membrane+bioreactor%5BTitle%5D)+AND+%22Bioresource+Technology%22%5BJournal%5D)">Integrated approach to characterize fouling on a flat sheet membrane gravity driven submerged membrane bioreactor.</a> Bioresource Technology. 222, 335-343 (2016).</li>
<li>Morgenroth, E., Milferstedt, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Biofilm+engineering%3A+linking+biofilm+development+at+different+length+and+time+scales%5BTitle%5D)+AND+%22Reviews+in+Environmental+Science+and+Bio%2FTechnology%22%5BJournal%5D)">Biofilm engineering: linking biofilm development at different length and time scales.</a> Reviews in Environmental Science and Bio/Technology. 8, 203-208 (2009).</li>
</ol>

Sebastian Schäfer 任职于 Thorlabs 公司。

光学相干断层扫描（OCT）成像非常适合解析微米尺度的结构，其视场（FOV）可达数平方毫米，因此是生物膜研究的有力工具10,18。然而，目前OCT的最大扫描面积仅限于100–256 mm2，而生物膜的结构模式通常超过这一空间尺度19，尤其是在大尺度环境梯度驱动形态分化的情况下20。本实验方案中描述的自动化OCT成像系统将OCT表征的表面区域扩展至数平方厘米，从而能够有效监测生物膜在相关空间尺度范围（从数毫米到数厘米）内的形态分化过程。高精度定位（误差在16 µm以内；图5）&#160;使得能够长时间精确监测生物膜结构的发育过程（图4），显著&#160;提升了深入理解生物膜形态分化驱动机制的可能性。同时，这种原位生物膜表征技术具有非侵入性，对生物膜生长的干扰极小。本文介绍的图像处理方法基于先...

生物膜是一种极为成功的微生物生活方式适应形式，这些与界面相关且被基质包裹的微生物群落，在自然环境和工业环境中主导着微生物的生命活动1,2。在这些环境中，生物膜会形成复杂的结构，例如细长的丝状物3、波纹状结构4或蘑菇状帽体5，这些结构对生物膜的生长、结构稳定性以及抗应激能力具有重要意义6。尽管关于生物膜结构分化的许多认识来源于在微型流动腔中培养的单一种类微生物的研究，但大多数生物膜实际上是高度复杂的群落，通常包含生命三大域的多种成员6。因此，将这些复杂的生物膜视为微生物景观7，并理解在复杂群落中生物膜结构与功能之间的相互作用，已成为当前生物膜研究的前沿课题。
要理解复杂生物膜在环境信号刺激下的形态发生机制，需要精心设计的实验，并结合在相关尺度上对生物膜物理结构进行空间和时间分辨的观测8。然而，在实验系统中对生物膜生长进行无损观察，长期以来受到操作限制的严重制约，例如需要移动样品（如移至显微镜下）往往会破坏脆弱的生物膜结构。
本文介绍的实验方案提出了一种基于光学相干断层扫描（OCT）的全自动系统，可实现对生物膜在介观尺度（毫米范围）下形态发生的原位、无创监测。OCT 是生物膜研究中一种新兴的成像技术，已应用于水处理与生物污损研究、医学9以及溪流生态学10。在 OCT 中，低相干光源被分为样品臂和参考臂；通过分析由生物膜反射和散射的光（样品臂）与参考臂光之间的干涉信号，获取一系列包含深度分辨结构信息的轴向强度剖面（A扫描），并将这些剖面合并形成 B 扫描（横截面）。多个相邻的 B 扫描共同构成最终的三维体积扫描图像10。OCT 的横向光学分辨率约为 10 µm，因此非常适用于研究生物膜的介观结构分化10,12。有关 OCT 的更详细描述，请参见 Drexler 与 Fujimoto13 以及 Fercher 及其同事14。尽管单次 OCT xy 扫描的视场可达数百平方微米，但仅通过一次扫描尚无法量化更大尺度上的空间模式。对于溪流和河流等自然生境中的生物膜而言，这一限制目前制约了我们对生物膜形态发生过程在与生境物理和水力模板相匹配的尺度上进行评估的能力。
为了突破这些空间限制并实现OCT扫描的自动获取，将一个谱域OCT成像探头安装在三轴定位系统上。该装置可采集多个呈重叠镶嵌模式（平铺扫描）的OCT扫描图像，从而有效实现最大达100 cm²表面积的断层成像2此外，该系统的高定位精度能够可靠地监测长期实验中特定位置生物膜特征的生长与发育。该系统具有模块化设计，各个组件（即., 定位装置和光学相干断层扫描（OCT）设备既可作为独立解决方案使用，也可灵活组合。 图1 介绍了该装置的硬件和软件组件。
该系统使用了一款市售的由GRBL控制的数控定位装置（材料表）进行测试。该特定定位平台的工作行程为600×840×140 mm，制造商标明的精度为±0.05 mm，可编程分辨率为0.005 mm。GRBL是一种开源（GPLv3许可证）的高性能CNC设备运动控制器。因此，所有基于GRBL（版本&#62;1.1）的定位装置均应与本文所述的指南和软件包兼容。此外，该软件只需少量修改即可适配其他具有STEP-DIR输入类型的步进电机控制器。
用于评估系统性能的OCT设备（材料表）配备了一个低相干光源，中心波长为930 nm（带宽 = 160 nm），并具有可调节的参考臂长度和强度。在本示例中，还使用了浸入式适配器，以便将OCT探头浸入流动的水中（材料表）。本文开发的用于自动OCT扫描采集的软件包，关键依赖于与特定OCT系统配套提供的SDK；然而，同一制造商生产的、配备不同扫描镜头和中心波长的OCT系统也应能直接兼容。
GRBL 设备由安装在单板计算机上的网络服务器控制（图1）。这使得任何具有本地网络或互联网访问权限的计算机均可远程控制该设备。OCT设备由一台独立的计算机进行控制，从而可在自动化实验装置之外单独操作OCT系统。最后，软件包包含用于同步OCT探头定位与OCT扫描采集的库函数（例如，按拼接模式或在一组预设位置自动获取三维成像数据集）. 在三维空间中精确定义OCT探头的位置，可针对特定区域的扫描集调整焦平面。具体而言，在不平整的表面上，可为每次OCT扫描单独设定不同的焦平面（即z方向上的不同位置）。
开发了一套软件包用于处理原始OCT扫描数据（表1）。定位装置的导航、OCT扫描的采集以及数据集的处理均通过使用Python编写的Jupyter笔记本完成，这种方法在软件开发与优化过程中具有极高的灵活性。两个经过完整注释的笔记本示例（分别用于图像采集和图像处理）可在以下网址获取：https://gitlab.com/FlumeAutomation/automated-oct-scans-acquisition.git，可作为方法定制的起点。Jupyter笔记本是一种基于网页浏览器的应用程序，其中包含带有注释的Python代码单元。每个操作步骤均包含在一个独立的单元中，可单独执行。由于光路穿过扫描透镜时路径长度不同（球面像差）15，原始OCT扫描图像会出现畸变（图2A）。我们开发了一种算法，可自动校正所采集OCT扫描图像中的此类畸变（该算法包含在ImageProcessing.ipynb中，补充文件1）。此外，生物膜形态可被可视化为二维高程图，该方法此前已在膜系统中应用16，本文进一步展示了如何将来自拼接阵列扫描的高程图进行拼接。
最后，通过一个水槽实验来展示上述实验室装置的功能，该实验中光合性溪流生物膜暴露于流速梯度条件下。

<table><tbody><tr><td>OCT探头</td><td>Thorlabs</td><td>GAN210C1</td><td>OCT成像设备</td></tr><tr><td>OCT扫描镜头</td><td>Thorlabs&amp;nbsp;</td><td>OCT-LK3-BB</td><td></td></tr><tr><td>浸入式适配器</td><td>Thorlabs&amp;nbsp;</td><td>OCT-IMM3-SP1</td><td></td></tr><tr><td>Stepcraft 840 CK</td><td>STEPCRAFT</td><td>NA</td><td>定位装置</td></tr><tr><td>微控制器</td><td>Arduino Uno R3</td><td>NA</td><td></td></tr><tr><td>单板计算机</td><td>Raspberry PI</td><td>NA</td><td></td></tr><tr><td>相机</td><td>Canon EOS 7D Mark II</td><td>NA</td><td></td></tr><tr><td>相机镜头</td><td>Canon MACRO EFS 35 mm</td><td>NA</td><td></td></tr></tbody></table>

利用自动化三维光学相干断层扫描阐明大空间尺度下的生物膜形态发生过程

Automated 3D Optical Coherence Tomography to Elucidate Biofilm Morphogenesis Over Large Spatial Scales

生物膜是一种极为成功的微生物生存方式，在多种自然环境和人工系统中普遍存在。理解生物膜的形态发生过程——即在群落组装过程中生物膜结构的多样化——是一项跨越空间和时间尺度的重大挑战。本文介绍一种基于光学相干断层扫描（OCT）的自动化生物膜成像系统。OCT 是生物膜研究中一种新兴的成像技术。然而，目前可获取和处理的数据量限制了对生物膜形态大尺度模式的统计推断。该自动化 OCT 成像系统能够覆盖生物膜生长的大范围空间尺度和长时间时间尺度。该系统结合了商用 OCT 设备、机器人定位平台以及一系列软件解决方案，用于控制 OCT 扫描探头的定位，以及三维生物膜成像数据集的采集与处理。该装置可实现对生物膜发育过程的原位、无创自动化&#160;监测，并有望进一步发展为将 OCT 成像与宏成像和微传感器剖面分析相结合的综合系统。

我们通过一个设计用于研究光合自养溪流生物膜时空形态发生的水槽实验，展示了自动化OCT成像系统的功能。水槽逐渐变窄的几何结构在水槽中心诱导出流速梯度（见参考文献17）。在18天内对生物膜的时间发展和结构分化进行监测，旨在更深入理解水动力条件对生物膜形态发生的影响。图4展示了在一个为期18天的生长过程中追踪的生物膜微菌落的生长情况。使用上述工具集对生物膜的表面形态进行了量化分析（图4A）。对于沿流速梯度的每个位置（图4C），采用边长为3.6 mm的方形移动窗口计算了生物体积（参见示例文件 ImageProcessing.ipynb，补充文件1）（图4B）。随着流速增加（以距水槽最宽处的距离表示），生物膜的积累显著减少（图4）。重要的是，该实验装置能够沿...

微生物生物膜在界面处形成复杂的结构，并发展为具有高度尺度依赖性的空间模式。本文介绍了一种用于自动获取三维光学相干断层扫描（OCT）数据集的实验系统（硬件和软件）。该工具集可实现对生物膜形态发生过程在空间和时间上的无创、多尺度表征。

生物膜是一种极为成功的微生物生存方式，在多种自然环境和人工环境中普遍存在。理解生物膜……

本文介绍了一种基于光学相干断层扫描（OCT）的自动化系统。该系统使我们能够在较大的空间尺度或较长时间内监测生物膜的结构。OCT成像适用于解析微米尺度的结构，但目前其最大成像面积约为250平方毫米。生物膜的规模通常超过此范围，尤其是当分化由大尺度环境梯度驱动时。该实验装置使我们能够在大空间尺度和长时间范围内监测生物膜的三维形态发生过程。该系统快速、精确，且可自主运行。我们研究了溪流中生物膜的形态发生过程，这些生物膜驱动着重要的生态系统功能。然而，该系统也可用于研究其他自然系统或人工环境中的生物膜。用于定位、图像采集和分析的软件采用 Python 编写。它们可通过 Jupyter Notebook 获取。这些方案用户友好、免费且灵活。我们相信，该设置的可视化呈现有助于其他用户复现安装过程，并更深入地理解软件。我们希望这能激励其他研究人员采用类似的方法。以下是该装置的概述。该系统由一个精密定位装置、OCT探头组成，并围绕一个有机玻璃水槽进行组装。首先，按照 GitHub 上发布的说明连接定位装置的线路。连接完成后，按照单独的 GitLab 页面中的描述安装 GRBL 服务器。现在可通过此网页控制定位系统；或者，也可通过 Python 脚本进行控制，具体示例如范例所示。将计算机和OCT主机放置在实验装置旁边的实验台上，实验装置包括微流控设备、流动室、水槽或过滤系统。如果尚未安装，请按照制造商的说明安装OCT系统及配套软件。然后，按照此处链接的GitLab文档中的说明安装用于自动OCT扫描采集的软件包。开始图像采集时，使用兼容的燕尾夹具将光学相干断层扫描探头安装到定位装置上。如有需要，在物镜上安装浸没式适配器，然后打开OCT系统和定位装置的电源。启动商用OCT软件，找到感兴趣的区域，对样本进行聚焦，并调节参考臂和光源强度以获得最佳图像质量。记录坐标，并在保持相同参考臂长度和强度的同时，对多个位置重复此操作。在 Jupyter Notebook 中打开本文补充文件 2 中的 ImageAcquisition.ipynb 文件。每个单元格包含用于执行特定任务的代码，可通过按下 Cell 然后点击 Run，或按 Control 和 Enter，或按 Shift 和 Enter 来单独运行。请按照示例操作，设置所需库文件的路径，以连接定位设备并校准该设备，进而初始化 OCT 扫描仪。然后调整采集参数，包括折射率、视场大小以及每个 B 扫描中的 A 扫描数量。此外，根据初步扫描的强度直方图设置OCT扫描的信号边界，并指定采集数据和元数据的存储文件夹。根据视野范围和分辨率的不同，每个OCT扫描的文件大小可能高达1.5千兆字节。这两个参数决定了最终数据集中体素的尺寸以及输出文件的大小。它们应与OCT探头的光学分辨率相匹配。如示例所示，您可以使用默认参数获取一次OCT扫描，或指定一组不同的参数来获取一次OCT扫描。您还可以提供特定坐标，以移动定位装置并获取一次OCT扫描。该功能可让您以高空间精度反复回到实验中的完全相同位置。数据以 8bit 原始格式保存，以节省存储空间。元数据（包括OCT设置和坐标）以相同的命名方式保存在同一个文件夹中的一个json文件中。或者，可指定一系列感兴趣的位置，并自动获取相应的OCT扫描图像。为了在大范围环境梯度下表征生物膜的形态结构，应以拼接模式获取扫描图像。为此，请指定相邻图块的数量，默认重叠率为30%。原始OCT扫描图像出现畸变，这是由于光路通过光学系统时路径长度不同所致。我们开发了一种算法，可校正此类畸变，工作示例中展示了校正效果。开始图像校正时，请打开 Jupyter 笔记本 ImageProcessing.ipynb。按照本示例，首先裁剪 OCT 扫描图像，以排除伪影信号，并重新调整数据集方向，使生物膜位于基底上方。接下来校正球面像差。为实现此目的，该算法在OCT扫描中定位一个高反射率的平面，并以此作为参考来展平扫描图像。在20×20的网格范围内，算法通过识别信号强度的局部极大值来确定参考平面的位置。随后，通过这些点拟合一个二阶多项式曲面，并利用该曲面在Z方向上对OCT扫描的每个像素进行位移校正。该算法的参数应根据OCT扫描的特征进行调整。此校正方法可在多幅图像间实现均一的参考表面，从而便于大规模图像的拼接。图像展平后，通过识别生物膜上方图像中的空白区域并减去平均背景强度，对图像进行背景噪声校正。接下来，从3D OCT数据集计算生成一幅高程图。为此，需定义一个参考表面（例如基底），并选择合适的强度阈值。随后，将生物膜的高度以灰度值的形式呈现在高程图中。如果图像是以拼接模式采集的，则应用拼接算法将相应的高程图进行拼接。利用自动化的光学相干断层扫描（OCT）成像技术，通过水槽实验研究了光合自养溪流生物膜的时空形态发生过程。这些水槽由有机玻璃制成，从进水口到出水口逐渐加宽。这会导致流速形成梯度。此处显示的是沿整个流速梯度生长的生物膜的高程图。重要的是，自动化的OCT成像系统能够在从低流速到高流速的不同流动条件下，连续测量生物膜厚度、粗糙度和生物量等结构参数。除了形态变化外，生物平均体积在水槽中随着与入口距离的增加而显著减小。OCT扫描的质量在很大程度上取决于参考臂长度和聚焦距离。在实验过程中，您可能需要重新调整此参数。为确保定位装置的准确性，需定期执行归零操作。该自动化成像装置可方便地与微传感器剖面分析联用，以实现对生物膜的功能特性表征。光学相干断层扫描（OCT）是一种新兴的成像技术，我们预期本文介绍的系统将推动生物膜结构相关研究的发展。这可能与饮用水处理或生物加工等技术相关。

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