2019年8月25日
本文介绍了两种利用化学遗传学在小鼠中长期无创调控神经元活性的方法。通过滴眼液每日递送氯氮平-N-氧化物(CNO)。我们还描述了两种在饮水中长期给予CNO的方法。这些实现慢性神经元调控的策略所需干预极少,可显著降低动物的应激反应。
DREADDs 是远程控制神经元活动最常用的化学遗传学方法。本文提供了用于重复或慢性 DREADD 操控的新替代方案,重点介绍侵入性更小的 CNO 递送方法。我们描述了两种在小鼠中实现 CNO 长期递送的策略:通过重复滴眼液给药,或通过动物的饮用水进行慢性给药。
本文所述的方案是CNO给药的慢性且非侵入性方法示例,可适用于多种实验设计,包括不同的DREADD变体、组织类型,甚至不同物种。CNO给药的一个关键问题是动物的应激与疼痛。这些方案可最大程度地减轻此类问题,且操作简便,易于在不同实验条件下进行调整和应用。
手术前,清洁并灭菌立体定位仪及所有所需器械。立体定位仪准备就绪后,确认麻醉的混合遗传背景野生型雄性小鼠对脚趾夹捏无反应,剃除头部上方毛发,并将小鼠头部固定于立体定位仪上。随后在眼睛表面涂抹眼用保护润滑剂,最后依次使用聚维酮碘和70%乙醇擦拭暴露的皮肤进行消毒。
使用无菌手术刀暴露颅骨,并将定位架校准至前囟点。在内侧-外侧坐标 2.9 毫米、前-后坐标 -2.7 毫米处钻孔,以定位海马体。暴露脑组织后,使用微量注射器和拉制的微毛细移液管,在背-腹深度 -3 毫米处向海马体单侧注射 90 纳升腺相关病毒。
然后用尼龙缝线关闭切口,并将动物从固定架上取下以给予镇痛处理。对于重复给予CNO的情况,在注射后四周开始,在滴眼液给药前的三到四天内,每天抓取小鼠颈背部皮肤使其适应操作,每次三分钟。当小鼠已适应操作后,称量每只小鼠的体重,以确定所需给予的CNO剂量,达到每千克体重1毫克CNO的浓度。
在非活动期关灯前两小时,将一到三微升配制好的CNO溶液吸入P10微量移液器中,并通过抓握背部皮肤固定小鼠。缓慢排出溶液,直至移液器尖端形成稳定的液滴,然后小心地将液滴靠近角膜,使溶液滴入眼中,注意不要让移液器尖端接触小鼠眼睛。随后将小鼠放回其饲养笼,再对下一只动物的眼睛施用CNO滴眼液。
若需在小鼠的活跃期给予CNO,请确保使用昏暗的红光,以便正确处理动物并给予CNO。对于长期CNO处理,在注射后四周开始处理前的三天,将常规水瓶更换为带有橡胶吸嘴并用铝箔包裹的小瓶,每瓶含10毫升常规水。用胶带将瓶子固定在笼具上,使小鼠适应这些水瓶。
测量每只小鼠的每日饮水量,并称量每只小鼠的体重。测试一系列CNO浓度,以确定在最小CNO浓度下表现出最大效应的剂量。然后在每个小瓶中加入八毫升普通水和所需量的CNO。
对于限制性CNO处理,在注射后第四周开始处理,并在开始处理前3天,在动物活跃期的最后阶段,将一个装有10毫升水加1%蔗糖的小瓶放置于笼内远离原始水瓶的位置。暴露结束时,从每个笼子中移除水加蔗糖溶液,并测量每只动物的蔗糖水消耗量。对于CNO给药,用5毫升水加1%蔗糖和每千克体重1毫克的CNO填充瓶子。
在活跃期的最后阶段,将瓶子放置在与糖水适应期相同的位置,移除瓶子并测量消耗的水量、蔗糖量和CNO量,操作方法如前所述。实验结束时,将处理过的动物脑组织采集至新鲜固定液中。9至12小时后,用30%蔗糖溶液对脑组织进行冷冻保护。
当脑组织沉降后,在冷冻切片机上对样本进行切片。当获得所有脑切片并阻断非特异性结合后,将组织样本与抗c-Fos抗体溶液在4°C条件下孵育过夜,并持续振荡。次日早晨,用新鲜的PBS溶液洗涤样本,每次洗涤5分钟,共洗涤三次,随后将样本与合适的荧光标记二抗溶液孵育。
室温下避光持续振荡孵育一小时后,通过荧光共聚焦显微镜获取标记组织切片的数字图像。将图像导入 ImageJ 后,勾画并测量腺相关病毒转染的 mCherry 阳性细胞区域,并对该区域内 cFos 假阳性细胞数量进行定量,以获得单位面积内的活化细胞数。通过滴眼液重复给予 CNO 可在大多数感染神经元中引发强烈的 cFos 表达,表明在重复暴露过程中 CNO 递送的有效性得以维持。
此外,在CNO处理后两小时采集的样本中,cFos的诱导水平显著高于CNO暴露后六小时采集的样本,表明CNO诱导的变化具有时间依赖性。每日摄入的含CNO水的体积与常规水的总体积相比无显著差异。同样,在夜间摄入的含1%蔗糖的水的体积不受CNO添加的影响,在为期五天的实验期间,每日摄入的含CNO水以及含蔗糖和CNO的水的体积也未观察到差异。
与使用CNO滴眼液类似,在给予CNO饮用水接触2小时后可观察到强烈的cFos诱导,但在6小时后则未见此现象。此外,CNO的作用存在明显的有效剂量阈值:低剂量CNO与生理盐水对照组相比,无法引发cFos激活;而较高剂量则可诱导出强烈且相似的cFos表达。我们建议进行剂量-反应分析,以确定不会显著降低神经元激活的最低CNO剂量,并考虑使用氯氮平(clozapine)作为配体。
本文中,我们展示了利用CNO介导的cFos诱导来反映神经元激活。然而,该方案也可轻松适用于电生理学分析或行为学测试。DREADD技术是一种远程调控神经元活性的强大工具,也可用于设计CNO递送的替代策略。
我们将扩大实验设置和潜在临床干预措施的选择范围。
查看完整文字稿并访问数千部科学视频
本研究介绍了两种利用化学遗传学在小鼠中实现神经元活动长期控制的非侵入性方法。重点在于采用创伤更小的氯氮平-N-氧化物(CNO)递送技术,通过滴眼液和饮水给药,以最大限度减少动物应激,同时实现持续的神经元激活。
神经元活动的无创慢性调控通过减少动物应激并支持纵向研究,解决了临床前神经科学中的一个关键瓶颈。该方法通过提供可靠且可扩展的化学遗传学控制,支持中枢神经系统药物研发中的靶点验证和机制性风险降低。该策略提高了与神经精神疾病相关的行为学和药理学检测在预测性方面的可信度。
该方法适用于从靶点验证到先导化合物优化的整个发现流程,可在表型筛选之前实现长期的机制性探究。