2019年7月1日
本报告介绍了用于免疫组织化学(IHC)的冷冻小鼠视网膜切片制备的全面方法。所述方法包括眼球后杯的解剖、多聚甲醛固定、在最佳切割温度(OCT)包埋剂中包埋及组织定位、切片和免疫染色。
小鼠视网膜解剖是一项非常精细的操作,因其眼球尺寸小、形状特殊,且视网膜组织极为脆弱。熟练操作至关重要,拥有一份提供高效方法和实用技巧的详细方案,是获得高质量视网膜解剖与切片的关键。我们提供一系列提示与建议,帮助研究人员避免常见错误,获取适用于免疫组织化学的高质量视网膜切片。
使用尾部电烙器标记已安乐死小鼠眼睛的颞部区域,轻轻触碰角膜,时间不超过一瞬间,使角膜轻微烧灼但避免穿孔。随后立即使用弯头Dumont 545镊子摘除小鼠眼球。将眼球置于含有1毫升4%多聚甲醛(PFA)与PBS混合液的1.5毫升冻存管中,冰上孵育15分钟。
然后,使用弯曲的Dumont 545镊子将固定好的眼球转移至盛有PBS的改良35毫米解剖培养皿中,并置于解剖显微镜下。用显微刀在角膜缘边界上方垂直于且紧邻烧灼标记处做一个小切口。将弯曲剪刀插入切口,沿角膜缘进行环形剪切,切除角膜。
然后,使用细小的Dumont 5号镊子去除角膜,取出晶状体,并轻柔地将其从眼球后部移开。玻璃体会随晶状体一同被带出,视网膜则显露为覆盖在眼球后杯内部的白色表面。将分离的眼杯在1 mL PBS中于室温下洗涤两次,每次10分钟。
为了对视杯进行冷冻保护,先将其在4°C条件下于15%蔗糖和PBS中平衡过夜,直至沉底。然后将视杯转移至30%蔗糖和PBS中,继续孵育2至3小时,直至沉底。将视杯置于OCT中,并放入10×10毫米的冷冻模具中包埋。
在解剖显微镜下,通过旋转眼球使烧灼标记位于上方,将眼球在冷冻模具中沿背腹轴方向摆放。视神经位于左侧,模具被切去的部分朝向右侧。为快速冷冻视网膜组织,将装有异戊烷的金属杯浸入液氮至杯高的三分之一处,然后将冷冻模具完全浸入异戊烷中,至少保持五分钟。
取出冷冻组织块,用铝箔包裹,并在零下80摄氏度下保存。使用记号笔或油性笔标记冷冻组织块,以记录其方向。将冷冻切片机温度调节至零下20至零下25摄氏度后,将含有包埋眼杯的模具放入其中,并使其在冷冻切片机内平衡至设定温度,持续一小时。
将组织块按背腹方向安装到冰冻切片机中,开始连续切取厚度为10微米的切片。小心地将视网膜切片置于已标注并编号的载玻片上,随后存放于−20摄氏度或−80摄氏度的切片盒中,直至进行免疫染色。在视网膜切片上使用针对视紫红质(光感受器标志物)、谷氨酸脱羧酶65(GAD65,无长突细胞标志物)、谷氨酰胺合成酶(Müller细胞标志物)以及钙结合蛋白(calbindin,水平细胞标志物)的抗体进行免疫组织化学染色。
结果表明,与采用另一种方案获得的低质量视网膜切片相比,本方案所获得的视网膜切片质量高且结构保存良好。富含视紫红质的内节和外节保持垂直且完整,与上方的视网膜色素上皮层几乎无分离。中间神经元(如Gad65阳性的无长突细胞)在内核层和内丛状层中仍保持正常的分层分布。
此外,Müller细胞保持良好,其胞体在从神经节细胞层延伸至外核层的胞质突起中排列整齐。内核层与外丛状层交界处可见形态清晰的水平细胞。标记眼球的上方区域,并在包埋过程中保持方向性,这一点非常重要。
始终在通风橱中使用适当的个人防护装备配制多聚甲醛。
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本报告详细介绍了制备冷冻小鼠视网膜切片用于免疫组织化学(IHC)的方法,重点包括眼球解剖、固定和切片等技术。所述方案旨在制备高质量的样本,适用于视网膜结构的精细免疫染色分析。
高保真组织制备对于视网膜疾病研究中的可靠免疫组织化学分析至关重要,因为结构的保存直接影响数据的可重复性以及靶点验证的可信度。本方案通过实现稳定的切片质量,解决了临床前神经科学研究工作流程中的一个关键瓶颈,有助于在治疗假设的机制性风险评估中提供支持。该方法通过最大限度减少表位遮蔽并保持细胞结构完整性,提高了在涉及视网膜病理生理模型的早期发现阶段中的预测价值。
该方法适用于从靶点假设验证到临床前验证的整个发现流程,可靠的组织切片可实现下游免疫组织化学检测,这对于通路分析和生物标志物评估至关重要。