Name: 雄性小鼠性行为评估 (视频) | JoVE Journal
Uploaded: 2020-03-05T12:00:00.000+00:00
Duration: 4 min 38 s
Description: 学习使用标准化行为测试方法评估雄性小鼠的性行为模式。本研究通过注射苯甲酸雌二醇诱导雌性发情，在开放场环境中记录雄鼠的爬跨、插入等行为数据，为神经科学与行为生物学研究提供可靠的动物模型评估手段。

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感谢 Lu Cong、Zhang Hongxia、Zhang Beiyue 和 Hu Mi 对实验提出的建议。

所有实验均遵循《实验动物护理原则》指南（NIH 出版物第 80-23 号，1996 年修订版）的规定，并在中国医学科学院药用植物研究所实验动物中心的批准与监督下进行。
1. 动物饲养
<ol>
	<li>将雌性和雄性小鼠饲养在 25 °C 环境下，采用 12 小时光照/12 小时黑暗的循环周期。</li>
	<li>提供自由饮水和标准颗粒饲料。</li>
	<li>若小鼠从其他设施转运而来，在手术前应让其在新环境中适应 7 天。</li>
</ol>
2. 雌性小鼠的卵巢切除术
<ol>
	<li>使用异氟烷（诱导浓度约 4−5%，维持浓度约 1−2%）通过面罩向雌性小鼠（出生后 8 周，不少于 6 周龄）进行麻醉，氧气浓度为 100%。</li>
	<li>通过观察小鼠是否在超过 30 秒内无自主运动，并结合适当的呼吸频率（例如每 2 秒或更长时间呼吸一次）来确认麻醉深度是否合适。或者，可通过轻压后肢脚趾测试小鼠是否无反应。 
	注意：正常呼吸频率约为 180 次/分钟。麻醉期间呼吸频率下降 50% 属于可接受范围17。
	<ol>
		<li>使用眼用软膏以防止角膜干燥和眼部损伤。</li>
		<li>保持小鼠体温在 36 °C 或以上。在必要时，于麻醉期间提供额外的加热支持。</li>
	</ol>
	</li>
	<li>使用 75% 乙醇对所有手术器械及手术台硬质表面进行灭菌和消毒。</li>
	<li>将动物放置于无菌铺巾上。</li>
	<li>在小鼠背部腰椎区域双侧剃毛，以暴露皮肤。</li>
	<li>使用 75% 乙醇对暴露的皮肤进行消毒。</li>
	<li>从两侧大腿根部中点开始，沿背部中线向头部方向做一纵向切口（长度约 0.5 cm），距离约 1 cm（位置见 图 1）。</li>
	<li>使用小剪刀刺穿皮肤，并小心分离皮下组织与下方肌肉，以暴露肌层。</li>
	<li>在薄层肌肉下方定位卵巢，并做一小切口（长约 5 mm），进入腹腔。
	<ol>
		<li>使用小镊子轻轻牵拉腹腔左侧组织，以显露左侧卵巢及其包裹的白色脂肪组织（肉眼可见为半透明、不规则团块，见 图 1）。</li>
	</ol>
	</li>
	<li>用钝头镊子将围绕卵巢的卵巢脂肪垫拉开，以暴露输卵管。</li>
	<li>在输卵管周围进行单重结扎，以防止出血。</li>
	<li>使用小剪刀轻柔切断输卵管，并摘除卵巢。</li>
	<li>仔细检查输卵管，确认所有卵巢组织均已清除。卵巢大小约为 5 mm × 4 mm × 3 mm，表面有不规则结节。</li>
	<li>将剩余的输卵管部分放回腹腔内。</li>
	<li>使用可吸收缝线缝合肌层。</li>
	<li>将皮肤向右侧牵拉，暴露右侧肌层，并重复步骤 2.9–2.16 摘除右侧卵巢。</li>
	<li>使用可吸收缝线闭合皮肤切口。
	<ol>
		<li>每只小鼠腹腔注射青霉素钠（每只 10,000 单位/10 g）以预防感染。</li>
		<li>在切口周围皮下注射利多卡因（4 mg/kg，1% 溶液，0.4 mL/kg）。同时在饮水中持续添加布洛芬（50–60 mg/kg/天；500 mL 水中加入 10 mL 儿童泰诺林）连续 3 天，用于镇痛治疗。</li>
	</ol>
	</li>
	<li>将每只小鼠单独放入已灭菌的笼具中。</li>
	<li>密切观察约 1–2 小时，直至完全从麻醉中恢复。
	<ol>
		<li>将动物置于清洁笼具内的纸巾上恢复，避免使用垫料。此步骤可降低气管阻塞或肺炎的风险。在麻醉恢复期间提供额外加热支持。监测手术部位，防止伤口裂开。</li>
	</ol>
	</li>
	<li>在恢复期结束后（术后约 24 小时），将小鼠放回其原饲养笼具。</li>
	<li>术后至少 2 周内不得进行实验。</li>
</ol>
3. 雌性动物的激素诱导发情
<ol>
	<li>通过阴道涂片确定雌性小鼠的动情周期阶段，方法如 McLean 等人所述18。若无动情周期变化，表明雌性小鼠卵巢切除成功。</li>
	<li>在性行为测试前 48 小时，注射苯甲酸雌二醇（每只小鼠 20 μg，溶于 0.1 mL 无菌橄榄油中，腹腔注射）。</li>
	<li>在性行为测试前 4 小时，注射孕酮（每只小鼠 500 μg，溶于 0.1 mL 油中，腹腔注射）。 
	注：动情期雌性小鼠的合格标准为：当其与一只性活跃且有经验的雄性小鼠同笼时，接受雄性小鼠阴茎插入生殖道 3 次或以上。</li>
</ol>
4. 性行为测试的准备工作
<ol>
	<li>在长方形开放场地箱（40 cm × 40 cm × 40 cm）中进行雄性小鼠的性行为测试，箱体四周及顶部由黑色有机玻璃构成，前方为透明壁，便于观察小鼠活动。</li>
	<li>将实验室内总体照明设定为 650 lux。 
	注意：应避免直接照射小鼠，以防引起异常行为模式。</li>
	<li>使用连接至计算机的数码摄像机记录小鼠的运动和行为。</li>
	<li>在黑暗周期的最初几小时内对雄性小鼠进行行为测试。</li>
</ol>
5. 习惯化
<ol>
	<li>保持实验室内安静。</li>
	<li>将待测小鼠置于敞箱装置的中央，使其自由探索环境 30 分钟。</li>
	<li>在测试前连续两天将小鼠置于装置中进行适应，以避免新环境带来的应激反应。 
	注意：小鼠应能够自由活动并探索环境，且无应激表现。雄性和雌性小鼠均需适应测试环境。</li>
</ol>
6. 行为学实验
<ol>
	<li>在测试开始前打开摄像机。</li>
	<li>将待测小鼠放置于测试箱内旷场的中央，使其自由探索5分钟，以适应环境。</li>
	<li>将一只处于动情期的雌性小鼠放入测试箱中。</li>
	<li>记录雄性和雌性小鼠之间的社交行为、交配行为及相互作用，持续30分钟。</li>
	<li>关闭摄像机，并确认视频已保存。</li>
	<li>将雌性小鼠从测试箱中取出，并记录阴道栓的形成情况。 
	注意：接受过交配的雌性小鼠在一天内不得用于其他性行为实验。</li>
	<li>将雌性小鼠放回其居住笼中。</li>
	<li>将雄性小鼠放回其居住笼中。</li>
	<li>清理装置内的尿液、粪便和垫料。</li>
	<li>使用75%乙醇去除已测试小鼠的气味。</li>
	<li>通过重复步骤6.1–6.10，开始下一只雄性小鼠的测试。</li>
</ol>
7. 行为数据提取
<ol>
	<li>回放视频记录并提取行为参数（见图2）。
	<ol>
		<li>记录30分钟内的骑跨次数。</li>
		<li>记录30分钟内的插入次数。将一次骨盆 thrust 计为一次插入。</li>
		<li>记录从雌性引入到首次骑跨的时间，作为骑跨潜伏期。</li>
		<li>记录从雌性引入到首次插入的时间，作为插入潜伏期。</li>
		<li>记录从首次插入到首次射精的时间，作为射精潜伏期。</li>
		<li>记录从射精到下一次骑跨的时间，作为射精后骑跨潜伏期。</li>
		<li>记录30分钟内的交配序列次数。一个交配序列指从骑跨到射精的每一次完整过程。</li>
		<li>记录30分钟内所有交配序列的总时间，作为交配序列持续时间。</li>
	</ol>
	</li>
</ol>

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</ol>

作者无任何利益冲突需要披露。

在本方案中，有几个关键步骤需要注意。关于雌性动物的卵巢切除术，从背部做手术切口比从腹部切口更具优势。由于卵巢位置较深，若从腹部切开，牵拉其他器官容易引起出血，导致术野不清20。我们选择在背部做切口，以便更易接近卵巢、缩短手术时间，并确保手术的安全性。
手术过程中维持无菌条件对于动物存活至关重要。外科手术中需考虑四个主要变量：手术空间、器械、外科医生和动物。对于手术空间（包括工作区和手术室），所有必要的表面均需在手术前使用适当的消毒剂（如稀释漂白剂、过氧化氢产品）进行清洁和消毒。此外，建议使用高压蒸汽灭菌器进行蒸汽灭菌。手术过程中应限制手术室内的人员流动。每只动物手术时均应使用新近灭菌的器械和材料。若器械掉落至无菌区域外或受到污染，应立即更换。同时，外科医生在彻底洗手和刷洗手臂后，必须穿戴全套无菌服装，包括无菌手术衣和无菌外科手套。若任何物品受到污染，必须在手术前立即更换受污染的物品（如更换新的手术衣或外科手套）。最后，应去除手术部位及其周围区域的毛发，以防止污染。去毛后必须用75%乙醇擦拭皮肤。可使用电动剪毛器或脱毛膏去除毛发。术前应...

成年雄性小鼠的性行为源于不同脑回路中一系列相关且相互依赖的激素系统和神经系统之间的相互作用1。该行为还需要发育经历、学习、环境背景以及合适的配偶。行为分析是神经或神经内分泌功能的重要反映。因此，动物模型中的性行为研究已被广泛应用于行为神经科学及其他相关研究领域2。啮齿类动物性行为的动物行为谱已在许多文章和书籍中被阐述1,3,4。例如，Sachs 和 Barfield 对大鼠性行为的描述5有助于理解小鼠中类似的性行为模式5。小鼠是行为学研究中最常用的实验对象之一。Hull 等人6对雄性小鼠性行为进行了详细描述：当雄性小鼠遇到雌性时，会开始探查雌性的肛生殖区；随后，雄性将前爪压在雌性体侧，从后方骑跨雌性。此时雌性表现出典型的性接受姿势，即脊柱向下弯曲呈弓形，并将尾巴移向身体一侧，暴露出阴道口以便雄性插入（即脊柱前凸反应，lordosis）。骑跨之后，雄性先进行快速而浅表的骨盆 thrust 动作，随后转为缓慢而深入的阴道 thrust。经过多次插入（intromission）后，一次持续时间较长的 thrust 导致射精，期间雄性小鼠可能在射精后静止约 25 秒，然后从雌性身上下来或跌落6。在射精过程中，雄性小鼠的附属腺体可能产生含有精液的混合物，该混合物硬化后形成交配栓（copulatory plug）。最后，在射精结束后，雄性开始进行生殖器理毛，并对雌性表现出兴趣缺失。简而言之，雄性性行为的基本序列包括嗅探、跟随、骑跨、插入、射精以及射精后的理毛行为。小鼠的性行为存在品系差异。例如，射精潜伏期介于 594 至 6943 秒之间，插入次数从 5 次到超过 100 次不等，射精后潜伏期则为 17 至 60 分钟。然而，引入新的雌性可缩短这一间隔时间。在某些情况下，雄性与新雌性交配时可能在第一次插入即发生射精7。
评估性行为的主要事件包括骑跨、插入和射精。行为科学家建议，不仅要测量每种行为的频率，还要测量其潜伏期和时间间隔5,8。以往研究中一些主要的测量指标包括：骑跨次数、插入次数、骑跨潜伏期、插入潜伏期、射精潜伏期、射精后骑跨潜伏期（或射精后间隔）、射精后插入潜伏期、交配序列次数以及交配序列持续时间。Park 等人8 和 Sachs 等人5 描述了如何识别啮齿类动物的骑跨、插入和射精行为。骑跨定义为雄性从后方爬上雌性身体，用前肢触碰其体侧，并快速反复抽动阴茎但未插入。插入，也称为阴茎插入，可通过以下一种或多种行为识别：在快速浅层抽动之后出现一次深而有力的推进、一条后肢快速踢动一次，以及雄性明显地向侧面从雌性身上退出。射精的识别依据是出现一次较插入更缓慢且更深的终末骨盆推进，同时后肢抬高程度降低。交配序列是指从骑跨到射精的每一次完整过程。本研究中所用行为参数的定义如下：1）骑跨潜伏期：从引入雌性到雄性首次骑跨的时间；2）插入潜伏期：从引入雌性到首次插入的时间；3）射精潜伏期：从首次插入到首次射精的时间（通常以最后一次骨盆推进为标志）；4）射精后骑跨潜伏期：从射精到下一次骑跨的时间；5）射精后插入潜伏期：从射精到下一次插入的时间；6）骑跨次数：首次射精前的骑跨次数；7）插入次数：首次射精前的插入次数；8）交配序列次数：观察期间的交配序列总数；9）交配序列持续时间：观察期间所有交配序列的总时间。
性行为及相关行为可在雄性小鼠的居住笼内或封闭的实验区域内进行，其中可使用一种名为 Rissman 的“&#34;No Secrets&#34;”镜面箱装置来观察交配行为3。在箱体前方放置一台摄像机，可同时从侧面和通过倾斜镜面的腹侧视角记录小鼠的行为。然而，该方法需要较强的光照，不可避免地导致小鼠需要更长的适应时间，以消除环境应激。在测量方法方面，推荐采用基于视频的行为分析技术来记录和量化行为4。可使用具有逐帧播放功能且推荐快门速度高于 1/1000 s 的录像设备来记录小鼠的快速运动。在黑暗环境中记录时，必须使用高分辨率红外摄像机。为分析录像，需配备带有图像采集卡的计算机，以便捕获行为的单帧图像并进行计算机处理。小鼠具有极强的行为可塑性，几乎在任何处理后均可表现出代偿性行为4。因此，对某些行为的分析可能存在对各个运动身体部位判断的模糊性。故而，某些行为的分析可能需要更高分辨率和更高速度的摄像设备。
小鼠的雄性性行为受多种因素影响，包括品系差异、激素变化以及基因突变1,3,9,10。McGill 和 Blight11 阐明了小鼠交配行为中的品系差异。例如，C57BL/6 雄性小鼠通常能迅速获得插入，并在约 20 分钟内射精11；DBA/2 雄性小鼠获得插入较慢，但射精速度较快；而 BALB/c 雄性小鼠由于求偶期较长，达到射精所需时间较慢（平均潜伏期为 1 小时）11。睾酮促进并维持雄性性行为2，睾酮水平的变化可改变性行为表现12。手术去势和抗雄激素治疗均可降低睾酮水平，导致性行为迅速减少，甚至影响性动机和性唤起13。外源性给予睾酮可恢复去势小鼠的交配前行为和交配行为。最后，基因敲除和基因敲降小鼠在性行为的多个方面表现出与野生型小鼠的差异。例如，Adcy3、Cnga2 和 Gnao 基因靶向突变的雄性小鼠检测信息素的能力下降，而 Trpc2 基因敲除小鼠则表现出配偶偏好的改变14,15,16。Crawley3 还进一步解释了转基因和基因敲除对小鼠性行为的其他影响。
本文介绍了一种评估雄性小鼠与经激素处理后具备接受性的去卵巢雌性小鼠配对时性行为的常用方法。提供了一项在小鼠中开展性行为实验的研究方案。此外，还展示了社会隔离对CD-1小鼠性行为模式影响的一个实例。

<table><tbody><tr><td>水合氯醛</td><td>国药集团化学试剂有限公司</td><td>20160225</td><td></td></tr><tr><td>涂有VICRYL Plus的缝合线</td><td>Ethicon, Inc.</td><td>缺失</td><td></td></tr><tr><td>苯甲酸雌二醇</td><td>J&amp;amp;K Scientific, Ltd.</td><td>L930Q170</td><td></td></tr><tr><td>无水乙醇</td><td>北京化学工业有限公司</td><td>20160715</td><td></td></tr><tr><td>布洛芬（儿童用美林）</td><td>上海强生 &amp;安普&强生有限公司</td><td>160629478</td><td></td></tr><tr><td>异氟烷</td><td>RWD生命科学有限公司</td><td>217180501</td><td></td></tr><tr><td>利多卡因</td><td>河北天成药业有限公司</td><td>1170506107</td><td></td></tr><tr><td>雄性和雌性CD-1小鼠</td><td>北京维通利华</td><td>SCXK(&lt;img src=&quot;/files/ftp_upload/60154/SCXK.jpg&quot;/&gt;)2013-0023</td><td></td></tr><tr><td>橄榄油</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>青霉素钠</td><td>华北制药股份有限公司</td><td>F5126420</td><td></td></tr><tr><td>孕酮</td><td>J&amp;amp;K Scientific, Ltd.</td><td>LR50Q07</td><td></td></tr><tr><td>索尼数码相机</td><td>索尼公司</td><td>HDR-CX290E</td><td></td></tr><tr><td>测试盒</td><td></td><td></td><td>自制</td></tr><tr><td>ThinkStation 计算机</td><td>联想</td><td>S/N PCOGLQKG</td><td></td></tr><tr><td>异氟烷蒸发器</td><td>RWD生命科学有限公司</td><td>E05904-009M</td><td></td></tr></tbody></table>

雄性小鼠交配行为评估

Assessment of Sexual Behavior of Male Mice

性行为具有高度的物种特异性。尽管啮齿类动物的性行为略有差异，但小鼠和大鼠具有相似的性行为模式。本文旨在描述由激素诱导处于动情期的卵巢切除雌性动物模型，以及用于评估雄性小鼠性行为的实验步骤。视频和图示展示了最重要的性行为要素。同时阐述了性行为测试中的关键步骤、优势与局限性。最后介绍了行为参数，并区分了交配过程中的爬跨、插入和射精行为。行为参数通过测试期间发生的持续时间与发生次数进行评估。

展示了隔离饲养与群养 CD-1 小鼠之间性行为的比较。将雄性 CD-1 小鼠随机分配至隔离饲养组（IS，每笼 1 只小鼠，n = 30）和群养组（GH，每笼 5 只小鼠，n = 15）。小鼠从出生后第 23 天至第 93 天进行隔离饲养。随后，对两组小鼠的性行为进行评估。本研究发现，IS 组的交配成功率较 GH 组有降低趋势（IS：80.0%，GH：86.7%），但组间差异无统计学意义（p = 0.458）。IS 组的爬背潜伏期长于 GH 组（p = 0.002，图 3A），表明前者启动性行为所需时间更长。IS 组的插入潜伏期也长于 GH 组（p = 0.015，图 3B），表明前者完成阴茎插入雌性阴道所需时间更长。两组在射精潜伏期和射精后爬背潜伏期方面均未观察到统计学显著差异。IS 组的交配序列持续时间短于 GH 组（p = 0.002，图 3C）。在爬背次...

本文介绍了如何在雄性小鼠中进行性行为测试。

性行为具有高度的物种特异性。尽管啮齿类动物的性行为略有差异，但小鼠和大鼠的性行为模式相似……

性行为是一个受生物、社会和环境因素影响的动态而复杂的过程。对小鼠性行为的研究可以进一步揭示这些相互作用的机制。本实验方法有助于记录雄性小鼠性行为的次数和持续时间，从而实现对小鼠性行为相互作用及其模式的识别与表征。在进行性行为测试前48小时，将20微克苯甲酸雌二醇溶于100微升无菌橄榄油中，对6至8周龄雌性小鼠进行腹腔注射，以诱导其进入动情期。同一天，将待测雄性小鼠置于一个40厘米×40厘米×40厘米的方形开放场箱体中央，箱体由三面黑色有机玻璃壁和一面透明前壁构成。接下来连续两天，每天让动物在该环境中自由探索30分钟。在测试当天，实验开始前4小时，向雌性小鼠腹腔注射500微克孕酮溶于100微升无菌橄榄油中的溶液，并将房间光照强度调节至650勒克斯。然后设置一台连接至计算机的数码相机，用于录制小鼠的活动和行为。进行行为检测时，在黑暗周期的最初几小时内打开相机，将待测雄性小鼠置于测试箱开放场的中央，持续5分钟。当小鼠适应测试环境后，将一只经激素诱导处于动情期的雌鼠放入测试箱中，记录雄鼠与雌鼠之间的社交行为和交配行为及互动，持续30分钟。测试结束后，确认视频已保存，并关闭摄像机。将小鼠放回各自的家庭饲养笼中，并清理装置内的尿液、粪便和垫料。然后用75%乙醇去除被测动物的气味，并按照上述方法开始下一只雄性小鼠的测试。分析行为数据时，在所有小鼠完成测试后回放视频记录，统计30分钟实验期内发生的爬背次数和插入次数。记录从雌性个体引入到首次爬背的时间作为爬背潜伏期，从雌性个体引入到首次插入的时间作为插入潜伏期，以及从首次插入到首次射精的时间作为射精潜伏期。然后在30分钟内记录所有交配序列的次数和时间。单独饲养组的交配成功率往往低于群体饲养组，这可能至少部分归因于与群体饲养组相比，单独饲养组的爬背潜伏期更长。此外，单独饲养组的插入潜伏期也更长，表明这些动物需要更长时间才能完成阴茎插入雌性阴道的动作。在射精潜伏期或射精后爬跨潜伏期方面，两组之间未观察到具有统计学意义的差异。单独饲养组的交配序列持续时间短于群体饲养组。在爬跨次数、插入次数或交配序列次数方面，两组之间未观察到具有统计学意义的差异。性行为是神经及神经内分泌功能的反映。了解小鼠的性行为模式有助于进一步理解人类的性行为及其相互作用。

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Research

科研

JoVE Journal

Behavior

行为

雄性小鼠性行为评估

本文详细描述了利用克劳利（Crawley）的社会性及社会新颖性偏好测试对小鼠社会行为进行检测的实验方案。我们介绍了该方法的优势及其可能的应用，并包括了对正确解读实验结果至关重要的关键细节。...

社会互动行为评估

干式巴恩斯迷宫被广泛用于测量动物在轻度厌恶刺激下的空间导航能力。在连续数天的测试中，对照组受试动物的表现（例如 找到逃生笼所需的时间）会逐渐改善，表明其具有正常的學習與記憶能力。大鼠與小鼠之間的差異需要對儀器和方法進行相應調整，本文將詳細介紹這些改動。...

小型与大型啮齿类动物模型的巴恩斯迷宫测试策略

我们正在测量经历早期生活应激范式——新生儿期母体分离的雄性C57BL/6小鼠前列腺中的会阴部机械敏感性及肥大细胞活化情况，以建立慢性前列腺炎/慢性盆腔疼痛综合征的临床前模型。...

新生儿期母体分离小鼠模型中肛周感觉敏感性及前列腺肥大细胞活化的评估

精液液化是精子从精液凝胶中释放出来的必要条件。本研究提供了从雌性生殖道在交配后收集精液以及测定精液液化时间的操作步骤。...

从小鼠雌性生殖道收集交配后精液并测定精液液化

我们开发了一种评估小鼠在全身麻醉过程中福利状况的方案。该方案分析了一系列反映福利水平的行为学参数以及糖皮质激素代谢物。本方案可作为一种通用工具，以科学且以动物为中心的方式评估实验操作的严重程度。...

使用全身麻醉的小鼠程序中系统性评估其健康状况

本方案采用巴恩斯迷宫测量空间学习和记忆能力。通过一种新颖的“危难中的少女”范式来评估小鼠的运动活动性和亲社会行为。...

利用巴恩斯迷宫和遇险少女范式分析小鼠的空间学习与亲社会行为

许多治疗方法和基因突变会影响性成熟和生育能力的时间。本方案描述了一种非侵入性方法，用于在性成熟动物中开展生育力研究之前，评估小鼠和大鼠的青春期起始时间。...

通过确认小鼠和大鼠青春期启动及进行生育力检测来评估生殖能力

我们开发了一种针对青春期C57BL/6小鼠的加速社交挫败应激模型，该模型适用于雄性和雌性小鼠，并允许在特定的青春期阶段进行暴露。暴露于该模型可诱导社交回避行为，但仅发生在部分经历挫败的雄性和雌性小鼠中。...

用于青春期 C57BL/6 雄性和雌性小鼠的社会挫败应激模型

啮齿类动物模型是研究自闭症谱系障碍（ASD）核心行为的有力工具。本文详细阐述了两种用于模拟小鼠ASD核心特征的行为学实验：自我理毛实验，用于评估重复性行为；以及三室社交互动实验，用于记录社交功能障碍。...

评估小鼠类自闭症行为的策略

通过整合四种日常社会应激源，本研究描述了一种用于雌性C57BL/6J小鼠精神疾病研究的多重整合社会应激（MISS）模型。经过连续十天重复暴露于MISS后，小鼠表现出类似抑郁和焦虑的表型，从而为研究女性精神疾病提供了一种自然的、基于病因的动物模型。...

一种用于雌性C57BL/6J小鼠精神疾病研究的多重整合社会应激模型

本方案描述了一种利用管状测试评估啮齿类动物社会优势地位的行为学实验方法。社会优势地位在时间上保持稳定，而多种发育性和神经性障碍模型均表现出显著的社会优势异常。因此，管状测试可作为机制研究或临床前治疗筛选的便捷结局指标。...

使用管状测试评估小鼠模型中的社会优势地位

学习使用标准化行为测试方法评估雄性小鼠的性行为模式。本研究通过注射苯甲酸雌二醇诱导雌性发情，在开放场环境中记录雄鼠的爬跨、插入等行为数据，为神经科学与行为生物学研究提供可靠的动物模型评估手段。

雄性小鼠交配行为评估

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