2019年12月14日
本研究对巨噬细胞针对癌细胞(特别是4T1小鼠乳腺癌细胞)的吞噬活性进行了成像。通过荧光显微镜与微分干涉差显微镜联用,建立并观察了活细胞共培养模型。利用成像软件对这一评估过程进行成像,生成了多点时间延时视频。
本研究的总体目标是获得共培养体系中M1型巨噬细胞对4T1小鼠乳腺癌细胞吞噬活性的延时二维成像。通过荧光显微镜与微分干涉差显微镜相结合的方法,建立并观察活细胞共培养模型。利用成像软件对多点延时视频进行叠加处理,以评估巨噬细胞的吞噬活性,随后进行孵育实验。
本研究旨在探讨巨噬细胞与癌细胞相互作用过程中,巨噬细胞行为及其吞噬活性的调控机制,特别是针对小鼠乳腺癌的研究。本研究的第一部分始于4T1小鼠乳腺癌细胞与RAW 264.7小鼠巨噬细胞的活细胞共培养模型。
实验开始时,培养41株小鼠乳腺癌细胞和RAW 2647小鼠巨噬细胞。首先,解冻一管4T1细胞和RAW 2647细胞。将解冻后的细胞稀释于10毫米的15毫升锥形管中。
接下来,以660 g离心力离心5分钟,获得细胞沉淀。小心吸除培养基,将细胞重悬于8 mL完全培养基中,并将细胞转移至组织培养瓶中。在37°C、5%二氧化碳条件下培养细胞。
在贴壁条件下培养一周后,每天观察培养瓶,并根据需要补充atmil完全培养基。下一步继续进行M1极化的RAW 2647巨噬细胞的免疫染色。此步骤旨在确保M1巨噬细胞完全极化。
当 RAW 264.7 细胞融合度达到 70% 至 80% 时,弃去培养基,并用 PBS 轻轻冲洗两次。用细胞刮轻轻刮下贴壁细胞,将细胞收集至 50 mL 圆锥形离心管中,以制备巨噬细胞。使用血细胞计数板对细胞进行计数,并通过向已设定的密度中加入剩余溶液,制备每皿 100,000 个细胞的细胞悬液。
将2毫升巨噬细胞悬液分别加入两个成像培养皿中。在37摄氏度、5%二氧化碳条件下孵育细胞2至3小时,以促进细胞贴壁。通过在含有10%胎牛血清的完全培养基中添加100纳克/毫升脂多糖(LPS)和20纳克/毫升干扰素-γ,制备M1极化培养基。
弃去孵育前的巨噬细胞培养上清液,用 PBS 小心地将培养皿中的单层细胞洗涤两次。向其中一个配对的培养皿中加入 2 毫升 M1 极化培养基,使硬脑膜细胞极化为 M1 巨噬细胞表型。免疫染色前,使用 2 毫升 4% 多聚甲醛固定 RAW 细胞和 M1 巨噬细胞,在室温下孵育 50 分钟。
吸除上清液,用 PBS 洗涤细胞单层,至少三次。加入 2 mL 含 50 mmol/L 氯化铵的 PBS 溶液淬灭,在室温下孵育 50 分钟。用含 0.3% Triton X-100 的 PBS 溶液在室温下透化处理 50 分钟。
在室温下,使用含10% FBS的PBS封闭30分钟。加入含1% FBS的PBS中稀释的FITC标记抗iNOS抗体,4°C避光孵育过夜。将1 mL DAPI加入成像培养皿中,37°C避光孵育10分钟,可用铝箔覆盖以避光。
使用 PBS 至少洗涤细胞 3 次,并向对应的培养皿中加入 1 毫升 DMEM,准备进行荧光成像。下一步进行 4T1 小鼠乳腺癌细胞的接种。当 4T1 细胞融合度达到 70% 至 80% 时,弃去培养基,并用 PBS 轻柔冲洗两次。
加入1 mL预热的胰蛋白酶以解离细胞,并在37°C下孵育最多20分钟。当细胞出现脱落时,将脱落的细胞转移至15 mL锥形管中,再加入2 mL预热的完全培养基以灭活胰蛋白酶。
在600 ×g 力量下离心5分钟以获得细胞沉淀。弃去上清液,并将沉淀重悬于10毫升级预运行取样DMEM培养基中。使用血细胞计数板对细胞进行计数,并将100,000个细胞接种至毫升级DMEM培养基中。
使用TC处理后进行成像。下一步是利用CFSE染色对活体4T1小鼠乳腺癌细胞进行标记。首先,从之前接种了4T1细胞的成像培养皿中移除现有的培养基。
通过将CFSE染色液用1 mL PBS稀释,配制5 µM的工作浓度染色溶液。向成像培养皿中加入1 mL CFSE染色溶液,在室温或37°C避光条件下孵育细胞20分钟。向细胞和染色溶液中加入等体积的DMEM,并继续孵育5分钟。
下一步是接种 RAW2647 小鼠巨噬细胞并与 4T1 细胞共培养。在对 4T1 细胞进行 CFSE 标记后,用 PBS 洗涤成像培养皿两次。将 2 毫升巨噬细胞悬液接种至含有 4T1 细胞的成像培养皿中。
下一步是将 RAW 264.7 巨噬细胞极化为 M1 表型。向培养皿中加入 2 毫升 M1 极化培养基,使 RAW 细胞分化为 M1 巨噬细胞表型。研究的第二部分是通过延时成像评估 M1 巨噬细胞对 4T1 细胞的吞噬作用。
下一步包括活细胞视频显微镜吞噬作用评估。首先,打开显微镜。将温度设置为37摄氏度。
以及5%的二氧化碳气体。将共培养细胞置于载物台中央,并轻轻拧上顶部腔室。通过操纵杆选择不同的位置,以电动方式移动载物台并捕获图像。
进行活细胞成像时需要考虑多种因素。为了获得高质量的小型视频,必须优化成像曝光时间、时间间隔测量,并实现焦点校正的自动化。
如果视频曝光过度、时间间隔不正确或对焦不准,将导致视频无法使用。一旦发现上述任一情况,均需重复实验。图一显示了用抗iNOS抗体标记的绿色免疫荧光图像。
蓝色为细胞核标记物 DAPI。以及大部分图像的增强版本。视频 1 是展示 M1 巨噬细胞与 4T1 细胞相互作用的代表性活细胞视频。
使用荧光和IC显微镜多通道采集捕获的CFSE染色小鼠乳腺癌细胞共培养图像。视频2为单个共培养培养皿中多点拍摄的活细胞视频显微镜影像,显示诱导型M1巨噬细胞对4T1细胞的吞噬作用。
每隔50分钟采集一次图像,持续13小时。视频3为活细胞视频显微镜录像,展示了一个选定的单坐标点,以深入可视化M1型巨噬细胞对4T1细胞的吞噬作用。红色箭头指示M1型巨噬细胞,黄色圆圈显示部分4T1细胞荧光淬灭并脱离4T1细胞群。
M1 巨噬细胞的运动方式表现为胞质呈伪足状,而 4T1 小鼠记忆性癌细胞则具有上皮样形态。可见巨噬细胞向 4T1 细胞移动,形成细胞间接触,随后 M1 巨噬细胞吞噬 4T1 细胞。
观看本视频后,您应能够充分掌握如何使用 4T1 小鼠乳腺癌细胞和 RAW 264.7 巨噬细胞进行活细胞视频显微镜实验;您还应能够建立两种细胞类型的过夜共培养体系,以开展吞噬作用实验。此外,您还应理解 4T1 细胞与经 LPS 和干扰素-γ 激活的巨噬细胞共培养的操作方法。
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本研究利用活细胞共培养模型,探究M1型巨噬细胞对4T1小鼠乳腺癌细胞的吞噬活性。通过荧光显微镜和微分干涉差显微镜进行成像,获得多时间点延时视频评估结果。
在与4T1癌细胞共培养体系中对M1型巨噬细胞吞噬作用进行定量延时成像,可直接观察免疫细胞与肿瘤细胞之间的相互作用,这一关键节点对肿瘤免疫学研究具有重要意义。该方法有助于解析巨噬细胞介导的抗肿瘤作用机制,降低研发风险,并提升早期靶点验证的可预测性。该技术能够记录细胞动态行为,为癌症免疫治疗研发管线中的转化策略制定和项目优先级排序提供依据。
这种活细胞成像工作流程通过实现对免疫-肿瘤相互作用的假设驱动式探究,并支持后续筛选和转化研究,从而连接了早期发现与临床前研究。