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DOI: 10.3791/60622-v
Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.
该协议描述了正交胰腺肿瘤的外科生成和新鲜分离的鼠胰腺肿瘤的快速消化。消化后,可行的免疫细胞群可用于进一步下游分析,包括通过流式细胞测定检测细胞内细胞因子的T细胞外体刺激。
此方法可用于分析新的治疗剂或策略,影响或增强胰腺癌期间的细胞毒性T细胞反应。该技术允许肿瘤在体外快速消化和刺激,同时可以分析T细胞反应的多个参数,这些参数可以很容易地适应其他应用。首先,使用钳子,将肿瘤转移到培养皿上。
将五毫升消化介质储存在50毫升的冰管中,以防止酶活性开始。拿这个溶液的一小块,覆盖培养皿上的肿瘤。使用无菌手术刀和钳子将肿瘤切成小块,长度大约不到三毫米。
将肿瘤片刮入管中,轻轻反转管,直到所有碎片浸入消化介质中。将管子转移到震动装置上20分钟,温度为37摄氏度,以消化。确保所有肿瘤都被淹没,不要粘在管子的边缘。
消化步骤后立即将管子放在冰上以减缓酶活性。加入EDTA,达到20毫摩尔的最终浓度,并短暂地涡旋样品混合,以进一步减缓酶活性。打开管子,用新鲜的RPMI介质冲洗管盖上的任何肿瘤消化。
然后准备一个70微米过滤器,放在50毫升的开冰管上。用介质预湿过滤器。重新吸收消化的细胞,使用25毫升或更大的条纹清洗管的两侧。
条纹的更宽开口允许厚厚的消化容易通过。使用25毫升条纹将所有消化器转移到过滤器上。使用一毫升注射器柱塞在过滤器顶部上下捣碎肿瘤。
使用 RPMI 持续清洗通过过滤器的细胞。确保用足够的力清洗,以推动细胞通过。继续清洗,直到所有细胞都通过过滤器。
在300倍G和4摄氏度下将管离心5分钟。小心地重新暂停细胞颗粒,并完成RPMI,并直接通过另一个过滤器,以去除任何细胞外基质,或无法充分重新泵制的大细胞团。如果不需要刺激,立即染色分离的细胞进行流动细胞学分析,或在10%DMSO和FBS的冷冻介质中重新释放它们,并储存在零下80摄氏度。
要执行刺激,请先计算细胞数。在全介质中稀释细胞,达到每100微升的2倍至6倍。U型井板每个井的100微升细胞。
添加 100 微升的完整介质,包含 2 倍的 PMA 和 Ionomycin 制剂。将盘子放在37摄氏度的培养箱中,但将200万二氧化碳放置一小时。然后,在20微升的10倍制备布雷费尔丁 A 和莫宁辛,和完整的介质,以实现最终浓度 1.06 微摩尔,和 2.0 微摩尔,分别。
将盘子放回孵化器再放四个小时。将1000个TB32048细胞注射到胰腺后,正畸肿瘤大约需要30天才能发展。消化和刺激收获的正畸肿瘤后,进行荧光减一,以确定用于浇注的背景荧光。
而布雷费尔丁 A 莫宁只控制,以确定细胞因子的基础生产。对于与布雷费尔丁 A 和莫宁的干扰素伽马孵育, 在脾脏和肿瘤样本中, 干扰素伽马在 FMO 控制上没有增加。然而,添加PMA和离子素,增加了细胞内干扰素伽马在血与肿瘤衍生CD4阳性和CD8阳性T细胞中可检测到的百分比。
作为阳性对照的Splenic CD4阳性和CD8阳性T细胞具有比肿瘤渗透T细胞子集更高的干扰素伽马生成。指示免疫抑制发生在肿瘤内。对TNF alpha使用相同的策略,对细胞内TNFα,一个高百分比的splenic CD4阳性T细胞是阳性的。
与肿瘤渗透CD4阳性T细胞相比。渗透和肿瘤渗透CD8阳性T细胞,产生类似水平的TNFα。确保肿瘤被充分切碎,并且所有碎片都浸入消化介质中。
捣碎肿瘤时,一定要温和,彻底清洗细胞。肿瘤消化方案可以与流量辅助细胞分选相结合,以净化单个免疫细胞子集,用于额外的功能或基因表达分析。我们使用这种方法来描述B细胞在胰腺癌期间如何塑造免疫反应,在B细胞敲除和B细胞耗尽小鼠中产生正向肿瘤。
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