2020年1月12日
我们描述了一种逆行示踪的方法 果蝇 使用脂溶性荧光染料标记胚胎运动神经元。
本方案中描述的示踪技术有助于我们研究神经元的形态发生,并捕捉果蝇运动神经元系统的连接性。脂溶性染料能够以极高的密度迅速扩散至细胞膜的各个部分,这正是本方案能够高效解析标记神经元结构的原因。
如果轴突末梢可通过注射微移液管触及,则该技术可应用于果蝇幼虫和成虫阶段的任何神经元,或其他生物体中的神经元。如果您没有解剖或使用显微注射仪的经验,对样本进行精确操作可能会具有挑战性。了解胚胎的解剖结构将有助于指导正确使用工具,以完成解剖或显微注射操作。
首先,准备好所有用于收集胚胎的材料并摆放整齐。通过截断一个50毫升离心管,并在管盖上切开一个孔,制备过滤装置。然后将孔径为100微米的网筛滤膜置于离心管和管盖之间。
使用内径为1.2毫米的同一根毛细管制备染料注射微针和解剖针。用微电极拉制仪在最大输出电压170伏的7%条件下拉制毛细管,以制备尖端长度约0.4厘米的锐利针头。制备染料注射微针时,先将磨针器用润湿剂浸泡,然后将针头以25至30度的角度固定在微电极夹持器上。
然后将尖端放至从磨削面中心向外三分之二半径处的位置。在研磨针头的同时,使用带管路的注射器向其内推动空气。使用细头永久性记号笔在微电极上标记,以指示研磨后尖端开口的位置,因为以一定角度形成的狭窄开口较难定位。
让果蝇在室温下过夜产卵,并于次日早晨收集带有卵的管道。为收集胚胎,将培养皿中的卵用50%次氯酸钠溶液脱氯处理五分钟。待卵壳表面的氯离子清除后,将培养皿中的内容物倒入过滤装置或细胞筛中,以分离出胚胎。
使用装有水的洗瓶稀释残留于培养皿上的次氯酸钠,并通过倾倒混合液将尽可能多的胚胎收集至滤膜上。用水清洗胚胎三到四次,直至次氯酸钠的气味消失。从装置上取下滤膜,用水将胚胎冲洗至另一干净的培养皿中。
然后将胚胎所在新培养皿中的水倒出。用精细镊子挑选产卵后15小时的5至10个胚胎,将其背侧朝上放置于双面胶带上。向解剖液池中加入昆虫林格氏液,以防止胚胎干燥。
在解剖显微镜下,使用玻璃针将胚胎从胶带上的中层膜中拖出至载玻片表面,注意避免损伤胚胎内部组织。随后,沿单个胚胎表面的中线,从后端至前端将其切开。将上皮组织从中部翻起,并将表皮边缘贴附于载玻片表面。
使用带有约300微米开口的连接针头的移液管,通过吸取或吹气去除背侧纵行气管干及任何残留的肠道组织。在旋转摇床上,用4%多聚甲醛(PFA)和磷酸盐缓冲液(PBS)在室温下固定胚胎5分钟,然后用PBS洗涤3次。
将一微升与Cy3染料偶联的抗辣根过氧化物酶抗体和200微升PBS加入胚胎中,在摇床上孵育一小时。随后用PBS重复洗涤。为填充注射用微量移液管,请将其放入毛细管支架中。
接下来将染料载玻片放置在载物台上,并使用显微操作器将其定位在载玻片上方。然后调节载物台,使微移液管对准染料。通过设定注射压力为200至500百帕、注射时间为0.1至0.5秒、补偿压力为零,持续五分钟,使微移液管吸取染料。
收集染料后,移除染料载玻片,将样品置于显微镜载物台上。随后将补偿压力增加至30至60百帕的范围,并将微量移液管插入样品中。使用10倍物镜定位胚胎,并将微量移液管与胚胎对齐。
将物镜更换为40倍水浸物镜,并将物镜浸入PBS中。使用荧光显微镜观察由抗-HRP Cy3标记的神经元形态,并确定注射位点。
当胚胎处于焦点时,调整微移液管的位置,使其轻轻接触目标轴突的末端。然后在注射过程中使用明场显微镜观察染料液滴。将DiD或DiO染料滴加至aCC或RP3神经肌肉接头所在的右侧腹部半节段处。
使用手动控制器释放染料并移出微量移液器,然后转移到下一个注射位点。成像前将样品置于摇床中,在室温下孵育一小时。
使用精细镊子从载玻片上取下胶带。为固定样品,准备一个盖玻片,并在四角涂少量真空脂。小心地将其放置在样品上,注意避免产生气泡。
将盖玻片轻轻下压,以调节样本与盖玻片之间的空间,确保物镜与载玻片之间留有足够的工作距离。用纸巾吸除多余的PBS。用指甲油将盖玻片边缘完全密封。
使用共聚焦显微镜以10倍和100倍放大倍数成像,并利用ImageJ软件处理图像。本实验方案用于逆行标记支配肌肉1的aCC运动神经元以及支配肌肉6和7的RP3运动神经元。aCC和RP3运动神经元的树突分支显示出广泛的重叠。
这两种神经元均为双极性,形成两组不同的树突群体。为了展示该方法的定量能力,对野生型和 Dscam1 突变体中的树突末端总数进行了统计。野生型中显示了 aCC 神经元的同侧树突,但在 Dscam1 突变体中观察到的同侧树突极少。
进行此操作时,需注意染料液滴的大小至关重要,约为10至20微米。应先在双面胶带上测试液滴大小,然后将其应用于注射位点。通过此方法,可利用DiD探针的光可切换特性,获得细胞质膜的超分辨率图像。
通过这种方法,我们可以研究神经肌肉接头处突触膜的超微结构特征。我们进行了点击化学反应。我们对突变品系中aCC树突进行了表型分析,发现Dscam1-Dock-Pak信号通路决定了aCC树突生长的起始位点。
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本文介绍了一种利用脂溶性荧光染料对果蝇胚胎运动神经元进行逆行示踪的方法。该技术有助于研究运动神经元系统内神经元的形态发生及连接性。
利用亲脂性荧光染料对果蝇胚胎运动神经元进行高分辨率逆行示踪,可实现神经元形态和突触连接性的精确绘图。该技术有助于神经生物学相关发现流程中的早期靶点验证和机制性风险排除。该方法的定量输出和多色标记能力支持在不同遗传背景下进行可靠的表型筛选和比较分析。
这种逆行示踪技术贯穿了从早期假设验证到先导物识别及临床前模型验证的整个发现流程。