结合条件敲击和适应球形成测定研究患者衍生胃癌干细胞的干细胞相关基因

在该协议中，我们提出了一个实验设计，使用条件敲制系统和适应球形分析，以研究聚类对患者衍生GCSC的茎的影响。该协议可以很容易地适应研究在不同类型的CSC的茎相关基因的体外和体内功能。

癌症干细胞与癌症复发转移耐药性有关。该协议为研究癌症干细胞中关键基因的功能提供了一种有效的方法。使用有条件的敲落系统和适应球体形成测定，该方法易于适应研究不同类型癌症干细胞中干细胞的体外和体内功能。

演示程序时，将李玉亭和谭香玉，来自我实验室的研究助理。为了产生扁病毒颗粒，将400万293T扁病毒包装细胞播种到100毫米培养皿中，其中10毫升DMEM辅以10%FBS。在37摄氏度和5%的二氧化碳下孵育细胞，确保细胞在转染当天汇合50%至80%。

将血清介质降低到室温，并根据手稿指示准备管 A 和 B。将管 A 的内容添加到管 B.Mix 中，在室温下孵育管 15 分钟，以准备脂质-DNA 复合物。从细胞培养皿中去除五毫升的培养皿。

然后将五毫升脂DNA复合物加入细胞培养皿中，轻轻旋转。在37摄氏度和5%的二氧化碳下孵育培养皿24小时。孵育后，小心地取出转染介质，代之以10毫升预热DMEM，并辅以10%FBS。

再孵育细胞24小时。转染后约48小时，收获10毫升含有超级杀伤剂的扁病毒，用0.45微米倒滤器过滤，清除细胞碎片。所有细胞培养容器、尖端、过滤器和注射器可能含有扁病毒，应在处置前用10%漂白剂进行处理。

将澄清的上清液转移到无菌容器中。添加Lenti-X浓缩器，并混合与温和的反转。在四摄氏度下孵育混合物过夜。

第二天，将样品在1500倍G下离心45分钟，温度为4摄氏度。小心地取出上清液，注意不要打扰底部的颗粒。轻轻将颗粒重新悬浮在一毫升 DMEM 中，并辅以 10%FBS，并将其储存在零下 80 摄氏度。

种子600万胃癌干细胞或GCSC的进入100毫米培养皿与10毫升DMEM补充10%FBS。在37摄氏度和5%的二氧化碳下培养细胞24小时。当细胞达到70-80%的汇合时，从培养皿中吸出培养基，加入用四毫米完整的DMEM培养基稀释的浓缩扁病毒颗粒，其中含有多纤维素试剂。

将细胞返回培养箱18小时。应在不同的条件下测试多纤维素，以确定有效浓度，通常每毫升2至10毫克。18小时后，用10%FBS将10毫升DMEM的介质更换，将细胞返回培养箱24小时。

然后，用细胞碎屑吸升清液，加入新鲜DMEM，辅以10%FBS和每毫升Puromycin2.5微克。再孵育细胞24小时。然后，再次将介质更改为新鲜的 DMEM，并辅以 10%FBS 和每毫升 5 微克的普龙霉素。

再孵育24小时后，用5毫升的DPBS冲洗两次，不带钙和镁。用一毫升预热细胞分离溶液分离细胞，并在37摄氏度下孵育两到三分钟。然后，在细胞悬浮液中加入五毫升新鲜预热GCSC完整培养介质。

将三毫升的悬浮液放入15毫升离心管中进行低温保存，将其他三毫升放入另一管中，用多氧环素诱导。两个管子在800倍G下离心5分钟。然后，从B管中吸出上先液，并在一毫升新鲜预热GCSC完整培养基中重新悬浮细胞。

将适当数量的细胞播种到新的100毫米培养皿中，配以10毫升新鲜预热GCSC完整培养基和每毫升多氧环素2.5微克。然后，孵育48小时的菜。使用自动细胞计数器确定 10 微升细胞样本的密度。

然后，使用预热的GCSC完整培养培养介质调节体积，获得每毫升2万个活细胞的浓度。将100微升的电池悬浮液分配到每个井中，一个新的超低附着96井培养板。用5%的二氧化碳在37摄氏度下孵育细胞。

球体形成应在三到十天内发生。每两天对肿瘤球形成进行成像。原发性人类胃腺癌的胃癌干细胞在血清自由培养基培养中。

六天后，细胞从像表型一样的单细胞扩展到大球体。为了评估GCSC中聚类的功能，将针对聚类素的短发夹RNA序列克隆到Tet-GV307-RFP-Puro载体中。与表达载体转染的细胞用多氧环素治疗48小时。

然后，通过西方印迹验证聚类表达，通过密度测定进行量化。GCSC中多氧环素的存在和聚类素的敲落抑制了肿瘤球的形成。虽然在用炒 shRNA 对子转导的细胞中未观察到肿瘤球形成抑制，但表明多氧环素本身并不抑制肿瘤球的形成。

这些结果表明，在聚类沉默后，GCSC生长缓慢，不能形成肿瘤球体。基于这些数据，聚基在促进GCSC的自我更新活动方面发挥着关键作用，表明它可能是抑制胃癌患者癌症干细胞的有希望的药物靶点。肿瘤球体应是单个或聚合细胞上的固体圆形结构，不应被视为肿瘤球体。

然而，一些癌症干细胞可能不会形成典型的肿瘤球结构。这个过程可以遵循其他方法检查癌症干细胞的可再生潜力在体外。例如，可以研究与茎相关标记的表达。

该协议可以扩展，以研究关键基因在癌症干细胞的功能，如干细胞对生存。