2020年7月10日
本文介绍了一种基于液相色谱-质谱(LC-MS)的测序方法的详细实验方案,该方法可作为直接测序短链RNA(<35 nt每轮)的手段,无需经过cDNA中间步骤;同时,也可作为在单个研究中以单碱基精度对多种核苷酸修饰进行测序的通用方法。
本方案涵盖了使用新开发的直接测序RNA方法时所需的所有关键步骤,无论RNA样本是单链、混合的还是经过修饰的。该方法不受酶促错误或碱基互补性的影响,提供了一种直接的工作流程和通用解决方案,使得能够同时测序多种RNA修饰,而非一次仅检测一种特定修饰。
该技术可开发为一种诊断工具,用于确定与人类疾病相关的特征性RNA片段,同时可作为研究表观转录组水平RNA修饰的精确工具。该方法不依赖于任何先前的测序技术,而是一种全新的方法,我们的目标是使其成为测序任何修饰RNA的首选方法。
本实验方案的某些部分包含一些关键步骤,通过视觉演示可以更准确地传达,例如对RNA进行3'端标记、LC-MS数据采集以及使用MassHunter软件进行数据分析。我将演示该操作流程,并设置LC-MS仪器以检测我们的RNA样品。进行一步法标记反应时,将2微升150微摩尔的AppCp-生物素、3微升10倍浓度的连接酶反应缓冲液、1.5微升100微摩尔的RNA样品、3微升无水DMSO、10单位T4 RNA连接酶以及19.5微升DEPC处理水混合,总体积为30微升。
将反应物在16摄氏度下孵育过夜,然后根据手稿说明进行柱纯化。将RNA分为三等份,加入等体积甲酸后,在40摄氏度下孵育反应体系。每个反应完成后,立即用干冰冷冻样品,以终止酸降解反应。
使用离心真空浓缩仪将样品干燥约30分钟。用20 µL经DEPC处理的水重悬干燥后的样品,并将其混合。在LC-MS检测前,将样品储存在20 °C条件下。
在配制好流动相后,将RNA样品转移至LC-MS进样小瓶中。每次进样应包含100至400皮摩尔的RNA,体积为20微升。数据采集完成后,使用分子特征提取工作流程提取化合物信息,包括质荷比、保留时间、峰面积和质量评分。
在小分子设置中使用质心数据格式。将峰高设置为至少100,但小于1,000,质量评分设置为至少50。最后,将数据导出为Excel文件。
在此处的二维质谱保留时间图上展示了3'梯形条带与5'梯形条带及其他非目标片段的分离情况。还可以对包含两条不同长度RNA链的混合样品进行测序,每条RNA均带有5'生物素标记。为了区分尿苷与假尿苷,对RNA进行了CMC处理,该处理可将假尿苷转化为CMC-假尿苷加合物。
该加合物在尿苷中具有不同的质量,可在二维-HELS MS测序中加以区分。通过分析假尿苷转化为其CMC加合物反应的粗产物的HPLC谱图,计算出转化率为42%。采用带有3'端标记的二维-HELS MS测序法对五种不同RNA链的混合物进行测序,并进行了归一化处理,以便更清晰地显示多种RNA序列。若不进行归一化处理,这五种RNA序列的字母编码将会过于密集而难以分辨。
进行该实验操作时,应仔细设置标记反应,以获得高产量的标记RNA样本。同时,需精确控制降解时间,以生成可靠的分子量梯度条带,并用20微升水收集最大量的干燥样本。完成本实验方案后,可提出的一个问题是:如何提高测序方法的长度分辨率和通量?
更优的算法以及分辨率和灵敏度更高的先进仪器可提供帮助。该实验方案开发完成后,即可直接测序更广泛的RNA样本,包括含有标准核苷酸和修饰核苷酸的样本,且不会产生与基于CDA的RNA测序相关的任何错误。
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本文介绍了一种基于液相色谱-质谱(LC-MS)的短链RNA测序新方法,该方法无需依赖cDNA中间体。该实验方案可实现多种RNA修饰的同步测序,并达到单碱基精度。
这种基于液相色谱-质谱(LC-MS)的RNA测序方法能够直接对修饰RNA混合物进行从头测序,无需合成cDNA,从而解决了表观转录组学靶点验证中的一个关键瓶颈。该方法可提供定量的、分辨修饰位点的测序数据,有助于RNA生物标志物的早期发现,并降低治疗性寡核苷酸的机制风险。通过生成序列确认的、特异性针对修饰的输出结果,该方法可直接应用于筛选和检测开发流程,从而提高先导分子鉴定的预测可信度。
该方法可整合到早期发现工作流程中,作为假设驱动型RNA分析的前端测序工具,在功能筛选前通过确认合成或内源性RNA靶标的序列及修饰状态,进而推动先导分子的鉴定。