2021年2月21日
我们介绍了两种用于检测人原代急性髓系白血病(AML)样本中NKG2D配体(NKG2DL)的不同染色方案。第一种方法基于一种融合蛋白,能够识别所有已知以及可能尚未发现的配体;而第二种方案则依赖于联合使用多种抗NKG2DL抗体。
本方案展示了在急性髓系白血病(AML)细胞表面检测NKG2D配体(NKG2DLs)的两种不同方法。该技术提供了一种快速、操作简便的染色方法,可用于检测所有已知及可能未知的NKG2D配体。此方法能够将白血病干细胞从大量AML细胞中分离出来,从而为进一步表征这些细胞提供了可能。
首先将生物素和NKG2D融合蛋白管在室温下解冻。迅速离心NKG2D FC冻干粉,然后加入500微升PBS溶解冻干粉,并使用P-1000移液器充分混匀。取100微升NKG2DL融合蛋白加入生物素管中,使终浓度达到10微克/毫升,并用P-100移液器充分混匀溶液。
复苏急性髓系白血病(AML)细胞时,从液氮储存罐中取出含有原代AML细胞的冻存管,立即放入37摄氏度水浴中。轻轻前后晃动试管,使管内物质逐渐融化,直至仅剩微小冰晶。迅速将已融化的细胞转移至含有培养基的试管中,并用1毫升培养基冲洗冻存管。
将细胞在300 × g条件下离心10分钟,弃去上清液,注意不要扰动沉淀。用5毫升含10% FCS的RPMI培养基重悬细胞,并重复离心步骤。用染色缓冲液重悬细胞沉淀,调整最终浓度为每毫升0.5 × 10⁷个细胞。
然后将100微升细胞悬液转移至96孔U型底细胞培养板中,以300 × g离心10分钟。弃去上清液,注意不要扰动沉淀。配制生物素标记的NKG2D融合蛋白预混液,使细胞重悬于每孔终体积50微升的溶液中,NKG2D终浓度为每毫升10微克每孔。
加入制备好的主混合液,并用200微升移液器重悬细胞沉淀。按照文稿中所述孵育并离心反应板。使用链霉亲和素PE配制主混合液,使细胞最终重悬于50微升的体积中。
将预混液加入细胞中,并用300微升多通道移液器重悬细胞沉淀。离心微孔板并弃去上清液后,使用300微升多通道微量移液器将细胞沉淀重悬于200微升染色缓冲液中,其中加入7-AAD。然后使用流式细胞仪分析细胞。
所分析的AML样本对CD34和NKG2DL呈阳性,但也存在阴性亚群,共包含四种不同细胞群。典型的设门策略首先根据细胞的FSC和SSC特征选择主要细胞群,双联体细胞和死亡细胞将在后续分析中被排除。
使用FMO对照调节设门,以确保正确鉴定阳性细胞。此处突出显示了CD34与NKG2DL阳性细胞的荧光强度。CD34阳性的急性髓系白血病(AML)细胞表现出较低的NKG2DL表面表达水平,表明NKG2DL的表达与干性缺失相关。
三个原代急性髓系白血病(AML)样本在融合蛋白染色中分别显示19.8%、49.8%和89.4%的阳性事件,而在混合抗NKG2DL抗体染色中则分别为20.4%、50.4%和90.6%。另一方面,单个配体染色显示阳性事件比例最高可达92%,具体百分比因配体不同而有所差异。在尝试该方法时,快速解冻原代AML细胞非常关键,因为这些细胞较为脆弱,在此步骤中容易死亡。
完成该实验方案后,可根据 NKG2DL 信号进行细胞分选,以进一步研究相关细胞群。
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本方案介绍了两种不同的染色方法,用于检测人原代急性髓系白血病(AML)样本中的NKG2D配体(NKG2DLs)。这些技术可实现白血病干细胞与大量AML细胞的分离,以便进一步表征。
区分白血病干细胞与大量急性髓系白血病(AML)细胞群体仍是靶点验证和临床前模型开发中的关键挑战。分离具有干细胞特性的NKG2DL阴性亚群的能力,有助于降低治疗假设的机制性风险,并增强早期发现工作流程的预测可信度。该方法通过识别具有更高致瘤潜能的疾病相关体系,直接为项目筛选提供依据。
该方法通过实现机制明确的亚群分离,将靶点验证、先导化合物鉴定及临床前评价的发现过程整合为一体。