2021年2月9日
本文介绍了一种利用3-(4′,5′-二甲基噻唑-2′-基)-2,5-二苯基四氮唑溴盐(MTT)的生物测定法,用于测试先前合成的螺环肟类化合物。
本方案采用一种可循环利用且经过改进的方法来制备螺环化合物。MTT 法有助于解答这些新型分子细胞毒性的相关问题。该技术利用可再生的起始材料,生成可进一步修饰的新型分子。
MTT 法可提供相对快速且易于分析的生物学结果。首先,按照先前已展示的方法进行螺环杂环化合物六和七的固相合成。使用无菌 PBS 作为稀释液,配制 20 毫升浓度为 5 毫克/毫升的 MTT 溶液。过滤后于 -20 °C 保存。
然后,用DMEM将MTT溶液按1:1比例稀释。在1.5毫升微量离心管中,分别配制1毫升以DMSO为溶剂的待测化合物储备液。将储备液于-20°C保存。
通过将储备浓度稀释,在无血清培养基中每剂量配制 200 微升的测试化合物工作液,稀释倍数为 1 至 1000。在组织培养超净台中,将 COS-7 细胞以每 200 微升 4,000 个细胞的浓度接种于平底组织培养处理的 96 孔板中,使用完全培养基。
使用多通道移液器。将细胞在37摄氏度、含5%二氧化碳的 atmosphere 中孵育24小时。次日,使用连接真空泵的玻璃巴氏移液器吸出孔板中的上清液。
使用先前配制的工作液,将待测化合物以三复孔的方式加入细胞中。然后将细胞放回培养箱中孵育。24小时后,吸去各孔中的上清液,并向每孔加入200微升MTT溶液。
将培养板孵育四小时。轻轻抽吸各孔中的上清液,注意不要扰动紫色的甲臜结晶。每孔加入200 µL DMSO以溶解结晶。
然后在室温下孵育平板15分钟。使用96孔板读板仪在590或600纳米波长下测定每个孔的吸光度。以不含细胞的孔作为空白对照,并计算吸光度的平均值。
采用改进的方案合成了螺环缩醛糖苷六和七。通过红外光谱法检测α,β-不饱和酯的消失来监测反应进程。使用MTT法测定细胞活力。
已知在高浓度下可诱导细胞死亡的顺铂被用作阳性对照。正如预期,顺铂浓度越高,细胞存活率越低。随后采用MTT法检测螺环化合物六和七以及糠基胺。
糠基胺与螺环化合物六的细胞毒性相似。然而,螺环化合物七的毒性明显高于糠基胺和化合物六。在进行本实验方案时需注意,使用大位阻的酰卤进行N-烷基化反应会降低β-消除反应的速率,从而导致产物收率下降。
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本研究描述了一种利用MTT法评估新型螺环肟类化合物细胞毒性的方法。该方案重点介绍固相合成,并评估经合成化合物处理的COS7细胞的存活率。
本研究介绍了一种简化的固相合成方法,用于制备螺环杂环化合物,该方法减少了合成步骤并避免使用有毒试剂,从而提高了肿瘤药物发现中先导化合物的筛选效率。MTT 法可对微摩尔浓度化合物进行快速、定量的细胞毒性筛选,支持早期靶点验证和作用机制的风险评估。上述两种方法结合使用,可增强对螺环骨架化合物进行优先排序的预测可靠性,进而推动其进一步的临床前评价。
该整合工作流程将固相合成与基于MTT的细胞毒性筛选相结合,作为杂环化合物在肿瘤学领域从发现到临床前评价的桥梁。