2021年4月11日
面包酵母线粒体基因组编码八种多肽。本实验方案的目标是对所有这些多肽进行标记,随后将它们作为独立的条带进行可视化观察。
线粒体是真核细胞中能够进行有氧呼吸的重要细胞器。其功能障碍是人类疾病的一个众所周知的成因。酿酒酵母的线粒体含有环状基因组,编码八种蛋白质。
在本视频中,我们描述了通过翻译产物的放射性标记及随后的凝胶电泳分离,来检测酵母线粒体中蛋白质生物合成的实验方案。该程序包括以下几个主要步骤:将酵母从冷冻保存的菌种划线接种至含有适当培养基的新鲜平板上。
将培养皿置于30摄氏度的培养箱中培养24至48小时。从新鲜划线平板中挑取菌落,接种于15毫升离心管中含2毫升培养基的液体培养基中,于30摄氏度、200 RPM振荡条件下过夜培养。在600纳米波长下测定该培养物的光密度。
取相当于0.2吸光度单位的体积,加入无菌管中,在室温下以9,000 G离心30秒,收集酵母细胞。弃去上清液。用0.5毫升无菌水重悬细胞,涡旋振荡5秒进行洗涤。
在室温下以 9,000 G 离心酵母细胞 30 秒。弃去上清液。将细胞重悬于 2 毫升新鲜的擦拭琼脂培养基中。
在200 RPM和30摄氏度条件下培养菌液,直至光密度值达到1.5至1.9。转移相当于一个光密度单位的菌液体积至微量离心管中。在3000 ×g条件下离心1分钟。
弃去上清液。加入0.5毫升无菌水,涡旋振荡5秒以洗涤细胞。在室温下以9,000 G离心30秒收集酵母细胞。弃去上清液。
将酵母细胞重悬于 0.5 毫升无菌翻译缓冲液中。将悬液置于 15 毫升离心管中。向细胞悬液中加入环己酰亚胺,使其终浓度达到 0.2 毫克/毫升,在 200 转/分钟、30 摄氏度条件下孵育 5 分钟,以抑制胞质翻译。
向细胞悬液中加入 25 至 30 微居里的 S35 蛋氨酸,于 200 RPM、30 摄氏度条件下孵育 30 分钟。加入未标记的冷蛋氨酸和放线菌素以终止标记反应,于 200 RPM、30 摄氏度条件下继续孵育 10 分钟。在 9,000 G 条件下离心 30 秒收集酵母细胞。
用0.5毫升无菌水重悬细胞,涡旋振荡5秒。在室温下以9,000 G离心30秒收集酵母细胞。弃去上清液。
向样品中加入 75 微升裂解缓冲液,涡旋振荡 5 到 10 秒。加入 500 微升 pH 6.8 的 0.5 摩尔 Tris 缓冲液。pH 值为 6.8。
短暂涡旋。向样品中加入600 µL甲醇。涡旋5秒。
向样品中加入150微升氯仿。涡旋振荡5秒。在12,000 G条件下离心2分钟。小心弃去上清液。
向样品中加入 600 µL 甲醇。通过反复倒置离心管数次,小心混匀。在 12,000 ×g 条件下离心样品 2 分钟。弃去上清液。
在80摄氏度下将凝胶板干燥两分钟。用60 µL Laemmli上样缓冲液溶解沉淀的蛋白质。在14摄氏度下加热样品10分钟。
制备17.5% Laemmli SDS聚丙烯酰胺凝胶。将每个样品15微升加入加样孔中。在低温室中电泳,直至蓝色染料迁移至凝胶长度的约65%处。
用考马斯亮蓝染色凝胶,并进行扫描或拍照,作为上样对照。将凝胶在凝胶干燥仪中干燥。将其与存储磷屏一起置于暗盒中,保存三至五天。
使用磷屏成像仪扫描凝胶。按照上述实验方案,我们鉴定了两种酿酒酵母菌株的线粒体翻译产物:野生型菌株以及编码线粒体翻译起始因子3的Aim23基因缺失突变株。
线粒体翻译产物已在变性聚丙烯酰胺凝胶中进行活性标记并分离。在达到饱和前,每2.5分钟收集一次样品,以构建时间进程。凝胶经染色、干燥后,进行5天曝光检测。
若实验成功,图中会显示八条与标准模式相对应的条带。然而,各条带的强度可能因菌株和实验条件的不同而存在显著差异。每一条带对应一种翻译产物。
数据表明,该突变株具有线粒体蛋白质合成能力,因为野生型中出现的所有产物在该突变株中均可见。然而,条带强度与野生型不同,说明Aim23的缺失影响了线粒体基因表达。Kumasi经蓝色染色后作为上样对照。
可使用 Image G 或 Image Quan 软件对实验数据进行定量分析,以鉴定不同菌株或实验条件之间的差异。具体方法是计算每种产物对应信号占总信号的比值。所有数据均基于至少三次独立重复实验,计算其平均值和标准偏差。
在去年的一项实验中研究了合成蛋白质的周转动力学。在用冷甲硫氨酸和硼霉素终止标记反应后,在指定的时间点收集样品。该对照对于评估产物的稳定性是必要的。
使用抗孔蛋白一抗体进行免疫染色是一种上样对照。我们描述了该方法,该方法常用于研究酵母线粒体中的蛋白质生物合成。本方案相对简单且操作快速。
同时,该方法能够获得有关四种酵母线粒体mRNA翻译速率的宝贵信息,具有显著优势。然而,该方法存在若干局限性,需要进一步开展额外实验,且受限于蛋白质和mRNA在不同状态下的水平差异。该方法可提供线粒体翻译系统中这些功能的相关信息,但需采用更先进的技术来揭示其作用机制。
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本文介绍了一种用于标记和可视化酿酒酵母线粒体基因组所编码的八种多肽的实验方案。该方法包括对翻译产物进行放射性标记,随后进行凝胶电泳。
对酿酒酵母(Saccharomyces cerevisiae)线粒体翻译产物进行定量标记与可视化,可精确研究线粒体基因表达及蛋白质生物合成过程。该技术在早期发现阶段对于机制性降低风险至关重要,特别是在评估基因扰动对细胞器功能影响时尤为关键。该方法通过提供野生型与突变株之间线粒体翻译的可靠比较数据,支持科研项目组合的决策。
该方案可融入从早期假设验证到先导化合物鉴定及临床前模型验证的整个发现流程,其中线粒体功能是关键的检测指标。