2021年2月20日
本文介绍了一种可重复的大鼠重症监护病房导向型内毒素模型。
该方案是一种稳定且可重复的内毒素血症模型,可对生理学和分子参数进行多次评估。该方法有助于回答脓毒症研究中的相关问题。尽管我们的模型不能替代动物实验,但通过持续镇静优化了脓毒症模型,并通过重复取样减少了动物使用数量。
初学者可能在动脉和静脉导管插入过程中遇到困难,但只需有限的训练即可掌握这些技术。通过可视化整个实验装置,研究人员能够更顺利地搭建或调整模型,以更贴近重症监护室(ICU)中的实际情况。首先将麻醉后的动物转移至加热垫上。
将体温维持在36.5至37摄氏度之间。通过鼻罩提供氧气,确保动物自主呼吸。在进行气管造口术以及动脉和静脉插管前,通过检查脚趾夹捏反射是否消失来确认麻醉深度。
使用眼膏保护眼睛。准备无菌手术器械和导管,并进行压力和血氧饱和度监测,以确保充分氧合。在大鼠尾部近端使用止血带以方便静脉穿刺,并用酒精对尾部消毒三次。
将26号静脉导管插入两条侧尾静脉之一,避免注入空气。放置静脉导管后松开止血带,并用胶带固定导管位置。将注射泵通过三通旋塞连接至静脉通路,用于持续输注液体和药物。
开始气管切开术时,先剃除动物颈部前侧区域的毛发,然后用聚维酮碘溶液对剃毛后的皮肤消毒三次。使用10号手术刀片做一道2厘米长的纵向切口。用2-0丝线缝合线牵开皮肤。
然后用手术剪 bluntly 准备好喉部和气管以便切开。将一根无菌气管插管插入气管,注意不要插入过深,以避免单侧通气。使用 2-O 丝线缝合固定插管,然后将插管连接至呼吸机,进行压力或容量控制通气。
在开始实验前,定义液体补充方案、血管收缩剂应用方案以及终止实验的标准。用聚维酮碘溶液对大鼠尾部消毒三次,然后使用手术刀在腹侧纵向切开皮肤,长度为1厘米,注意不要切得过深,以免损伤尾动脉。使用手术显微镜小心暴露动脉。
使用手术显微剪剪开动脉周围的筋膜。然后在远端动脉处进行近端6-0丝线结扎,但暂不收紧丝线。将一根26号导管插入远端与近端丝线结扎之间的动脉内,随后收紧近端丝线,以固定导管位置。
将导管连接至压力传感器,以实现连续的动脉压测量。此外,在连接至压力传感器的导管与26号导管之间安装一个三通旋塞,用于动脉采血。在动物达到稳态后,通过注射LPS诱导脓毒症,并采集血样。
按照1比4的比例用林格氏液补充血液样本流失的液体,操作过程中应始终避免注入空气,以防发生空气栓塞。无论是否接受LPS刺激,动物的平均动脉压均保持稳定。经LPS处理的动物会出现脓毒症的特征性表现,例如负碱剩余。
经LPS处理的动物也出现了强烈的炎症反应,可通过血浆细胞因子(如趋化蛋白-1、单核细胞趋化蛋白-1和白细胞介素-6)进行检测。在实施该方案时,务必预先设定液体治疗和血管加压药物使用方案,并明确定义终止实验的标准,以获得可靠且可重复的研究数据。该方案可适用于其他脓毒症模型。
因此,研究问题通过最合适的方法得到解答,并遵循动物福利的“减少、优化、替代”原则。
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本文介绍了一种在大鼠中建立内毒素血症的稳健且可重复的模型,专为面向重症监护病房的研究而设计。该模型可对生理学和分子参数进行多次评估,有助于脓毒症相关研究。
这种以重症监护病房(ICU)为导向的内毒素模型支持在脓毒症研究中对生理和分子参数进行可重复的评估,通过重复采样减少动物使用,同时实现治疗干预的迭代测试。该模型符合3R原则,并可在临床相关的镇静、通气和血流动力学监测条件下,促进对调节脓毒症化合物的临床前评价。
该模型适用于从靶点验证到临床前疗效测试的脓毒症研究连续过程,尤其适用于靶向过度炎症或血管功能障碍的化合物。