Name: 通过螺纹栓塞方法建立高级射手座-鼻塞的鼠模型 (视频) | JoVE Journal
Uploaded: 2021-07-04T14:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 7 s
Description: 了解通过螺纹栓塞技术建立Sprague-Dawley大鼠上矢状窦血栓模型的方法。该模型创伤小、稳定性高，可用于研究脑静脉窦血栓的发病机制及评估潜在治疗方案。

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本研究由福建中医药大学高层次人才科研基金（X2019002-talents）资助。

涉及动物受试者的实验程序已获得温州医科大学医学伦理与规范委员会的批准，并符合中国关于实验动物使用与护理的法律法规。
1. 线塞、SD大鼠及实验设备的准备
<ol>
	<li>使用直径为 0.28 mm 的尼龙线作为线栓的主体。 
	注意：尼龙线的软硬度应适中。</li>
	<li>用硅胶材料包裹尼龙线的一端，线栓硅胶部分长度约为 1.2 cm，直径约为 1.2 mm。头部呈锥形，硅胶部分为圆柱形，另预留 5–7 cm。尼龙线易于夹持，术后可根据具体需要进行裁剪。</li>
	<li>术前用 75% 乙醇浸泡线栓 3 分钟，堵闭前用生理盐水冲洗残留的乙醇。</li>
	<li>选取 12 只雄性 SD 大鼠，体重介于 280 至 320 g 之间，随机分为假手术组和实验组（每组 n = 6）。经过一周的环境适应后，术前禁食 12 小时，禁水 4 小时。</li>
	<li>准备实验所需以下仪器设备：小动物麻醉机、脑立体定位仪、解剖显微镜、高速颅骨钻、剪刀、镊子、血管钳、持针器、缝合针线、2 mL 注射器、激光散斑血流成像系统以及小动物 MRI 扫描仪。</li>
</ol>
2. 通过线栓栓塞法构建 SD 大鼠 SSS 栓塞模型
<ol>
	<li>将SD大鼠放入麻醉诱导箱中，使用小动物麻醉机输送4%异氟烷以诱导麻醉。随后用镊子确认SD大鼠后肢及脚趾对中度夹捏无反应。</li>
	<li>迅速将头部毛发已剃除的SD大鼠俯卧位固定于脑立体定位仪上。以1.5–2.0%异氟烷（流速0.5 L/min）维持麻醉，呼吸频率稳定在40–60次/分钟。通过加热垫将大鼠体温维持在37±0.2 °C。
	<ol>
		<li>将大鼠固定于立体定位架后，涂抹无菌眼用润滑剂，以保护角膜在麻醉期间不致干燥。</li>
	</ol>
	</li>
	<li>用5%聚维酮碘与75%乙醇交替擦拭大鼠头部表面三次进行消毒。于头部正中做一长约2.0 cm的皮肤切口，随后小心剥离顶部筋膜及骨膜，充分暴露颅骨。
	<ol>
		<li>确认前囟、后囟、冠状缝、矢状缝及人字缝的位置。</li>
	</ol>
	</li>
	<li>以冠状缝与人字缝之间的区域作为血流观察区。为避免颅骨影响激光散斑血流成像的观察效果，需在观察区域磨薄颅骨，直至血管清晰可见。磨薄区域大小约为1.0 cm × 1.0 cm。此步骤及后续操作均在解剖显微镜下进行。
	<ol>
		<li>颅骨打磨过程中，应使用常温生理盐水反复冲洗钻头，避免高温灼伤大脑皮层。</li>
	</ol>
	</li>
	<li>使用高速钻头在以bregma为中心的6.0 mm × 4.0 mm骨窗范围内磨除颅骨，暴露bregma区域的上矢状窦（SSS）。
	<ol>
		<li>打磨过程中使用生理盐水冷却颅骨。当颅骨变薄后，用镊子小心移除残留骨片，避免撕裂上矢状窦。</li>
	</ol>
	</li>
	<li>选择合适的线栓，以上矢状窦bregma点作为插栓点，用2 mL注射器针头小心穿刺，迅速将线栓头部插入插栓点。
	<ol>
		<li>此时线栓头部末端与上矢状窦之间的角度应约为30–45°；随后调整线栓末端与上矢状窦之间的角度至0–10°，缓慢将线栓沿窦腔中心插入，直至头部到达窦汇后缘。随后剪除多余的尾部。 
		&#8203;注意：穿刺上矢状窦时可能出现快速出血。若线栓末端无法一次性迅速插入插栓点，可用小块纱布或棉球轻轻压迫插栓点，同时缓慢滑动以小心暴露插栓点，再迅速将线栓末端插入上矢状窦。线栓插入后，若插栓点仍有出血，可使用明胶海绵等止血材料进行止血。</li>
	</ol>
	</li>
</ol>
3. SD 大鼠脑表面血流的检测
<ol>
	<li>使用激光光源均匀照射血流观测区域。反射光由相机采集后传输至计算机进行分析。激光散斑血流成像系统的参数设置如下：波长：λ = 785 nm；图像曝光时间：T = 10 ms。</li>
	<li>将SD大鼠的血流观测区域置于激光散斑血流成像系统的视野中央，持续监测脑表面血流2分钟。采集并处理每只SD大鼠栓塞前后血流数据，获得观测区域的激光散斑血流图。</li>
	<li>用生理盐水反复冲洗手术区域，清除骨屑和残留物。缝合皮肤（0#缝线），并用碘伏消毒。</li>
	<li>术后维持大鼠体温，直至其苏醒后单笼饲养，并自由摄取食物和水。ad libitum。假手术组不得进行栓塞。</li>
	<li>数据采集完成后，进行后期处理。
	<ol>
		<li>利用激光散斑血流成像系统软件提供的工具完成感兴趣区域（ROI）的选择。所得数值为ROI内的平均血流值，以及栓塞前后局部脑血流值。以栓塞前的血流值作为基线值。</li>
		<li>选择四个ROI，测量每个ROI内脑血流的相对变化，以相对于基线值的百分比变化表示。</li>
	</ol>
	</li>
</ol>
4. 小动物磁共振成像中线材位置的检测
<ol>
	<li>使用以下T2加权成像（T2WI）参数进行MRI扫描：回波时间（TE）= 33 ms，重复时间（TR）= 3000 ms，激发次数（NEX）= 4，层数 = 28，层厚 = 0.8 mm，矩阵大小 = 256*256 mm2，翻转角 = 80°，视野（FOV）= 30*30 mm2，扫描时间 = 6分24秒；磁共振血管成像（MRA）参数设置如下：TE = 4.4 ms，TR = 12 ms，NEX = 4，层数 = 80，层厚 = 0.4 mm，矩阵大小 = 256*256 mm2，翻转角 = 80°，FOV = 30*30 mm2，扫描时间 = 16分23秒40毫秒。</li>
	<li>将动物固定于MRI扫描台上，通过定位扫描校准脑部位置，确认位置无误后进行T2WI和MRA序列扫描。</li>
	<li>检测过程中通过动物麻醉机持续维持麻醉状态，随后通过腹腔注射过量戊巴比妥处死SD大鼠。</li>
	<li>图像采集与后处理：图像数据采集完成后，为更清晰地观察上矢状窦（SSS）内血栓栓塞状态，采用伪彩增强方法显示大鼠脑部T2WI图像。</li>
</ol>

<ol><li>Bousser, M. G., Ferro, J. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cerebral+venous+thrombosis%3A+an+update%5BTitle%5D)+AND+%22Lancet+Neurology%22%5BJournal%5D)">Cerebral venous thrombosis: an update.</a> Lancet Neurology. 6 (2), 162-170 (2007).</li>
<li>Guenther, G., Arauz, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cerebral+venous+thrombosis%3A+A+diagnostic+and+treatment+update%5BTitle%5D)+AND+%22Neurologia%22%5BJournal%5D)">Cerebral venous thrombosis: A diagnostic and treatment update.</a> Neurologia. 26 (8), 488-498 (2011).</li>
<li>Stam, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Thrombosis+of+the+cerebral+veins+and+sinuses%5BTitle%5D)+AND+%22New+England+Journal+of+Medicine%22%5BJournal%5D)">Thrombosis of the cerebral veins and sinuses.</a> New England Journal of Medicine. 352 (17), 1791-1798 (2005).</li>
<li>Einhäupl, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((EFNS+guideline+on+the+treatment+of+cerebral+venous+and+sinus+thrombosis+in+adult+patients%5BTitle%5D)+AND+%22European+Journal+of+Neurology%22%5BJournal%5D)">EFNS guideline on the treatment of cerebral venous and sinus thrombosis in adult patients.</a> European Journal of Neurology. 17 (10), 1229-1235 (2010).</li>
<li>Coutinho, J. M., Zuurbier, S. M., Stam, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Declining+mortality+in+cerebral+venous+thrombosis%3A+a+systematic+review%5BTitle%5D)+AND+%22Stroke%22%5BJournal%5D)">Declining mortality in cerebral venous thrombosis: a systematic review.</a> Stroke. 45 (5), 1338-1341 (2014).</li>
<li>Gotoh, M., Ohmoto, T., Kuyama, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Experimental+study+of+venous+circulatory+disturbance+by+dural+sinus+occlusion%5BTitle%5D)+AND+%22Acta+Neurochir+%28Wien%29%22%5BJournal%5D)">Experimental study of venous circulatory disturbance by dural sinus occlusion.</a> Acta Neurochir (Wien). 124 (2-4), 120-126 (1993).</li>
<li>Miyamoto, K., Heimann, A., Kempski, O. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Microcirculatory+alterations+in+a+mongolian+gerbil+sinus-vein+thrombosis+model%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Clinical+Neuroscience%22%5BJournal%5D)">Microcirculatory alterations in a mongolian gerbil sinus-vein thrombosis model.</a> Journal of Clinical Neuroscience. 8 (4), (2001).</li>
<li>Ungersböck, K., Heimann, A., Kempski, aO. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cerebral+Blood+Flow+Alterations+in+a+Rat+Model+of+Cerebral+Sinus+Thrombosis%5BTitle%5D)+AND+%22Stroke%22%5BJournal%5D)">Cerebral Blood Flow Alterations in a Rat Model of Cerebral Sinus Thrombosis.</a> Stroke. 24 (4), (1993).</li>
<li>Röttger, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+new+model+of+reversible+sinus+sagittalis+superior+thrombosis+in+the+rat%3A+magnetic+resonance+imaging+changes%5BTitle%5D)+AND+%22Neurosurgery%22%5BJournal%5D)">A new model of reversible sinus sagittalis superior thrombosis in the rat: magnetic resonance imaging changes.</a> Neurosurgery. 57 (3), 573-580 (2005).</li>
<li>Chen, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Photothrombosis+combined+with+thrombin+injection+establishes+a+rat+model+of+cerebral+venous+sinus+thrombosis%5BTitle%5D)+AND+%22Neuroscience%22%5BJournal%5D)">Photothrombosis combined with thrombin injection establishes a rat model of cerebral venous sinus thrombosis.</a> Neuroscience. 306, 39-49 (2015).</li>
<li>Yang, H., Meng, Z., Zhang, C., Zhang, P., Wang, Q. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Establishing+a+new+rat+model+of+central+venous+sinus+thrombosis+and+analyzing+its+pathophysiological+and+apoptotic+changes%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Neuroscience+Methods%22%5BJournal%5D)">Establishing a new rat model of central venous sinus thrombosis and analyzing its pathophysiological and apoptotic changes.</a> Journal of Neuroscience Methods. 203 (1), 130-135 (2012).</li>
<li>Longa, E. Z., Weinstein, P. R., Carlson, S., Cummins, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Reversible+middle+cerebral+artery+occlusion+without+craniectomy+in+rats%5BTitle%5D)+AND+%22Stroke%22%5BJournal%5D)">Reversible middle cerebral artery occlusion without craniectomy in rats.</a> Stroke. 20 (1), 84-91 (1989).</li>
<li>Fluri, F., Schuhmann, M. K., Kleinschnitz, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Animal+models+of+ischemic+stroke+and+their+application+in+clinical+research%5BTitle%5D)+AND+%22Drug+Design%2C+Development+and+Therapy%22%5BJournal%5D)">Animal models of ischemic stroke and their application in clinical research.</a> Drug Design, Development and Therapy. 9, 3445-3454 (2015).</li>
<li>Wang, E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mapping+tissue+pH+in+an+experimental+model+of+acute+stroke+-+Determination+of+graded+regional+tissue+pH+changes+with+non-invasive+quantitative+amide+proton+transfer+MRI%5BTitle%5D)+AND+%22Neuroimage%22%5BJournal%5D)">Mapping tissue pH in an experimental model of acute stroke - Determination of graded regional tissue pH changes with non-invasive quantitative amide proton transfer MRI.</a> Neuroimage. 191, (2019).</li>
<li>Liu, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Identification+of+Vigilin+as+a+Potential+Ischemia+Biomarker+by+Brain+Slice-Based+Systematic+Evolution+of+Ligands+by+Exponential+Enrichment%5BTitle%5D)+AND+%22Analytical+Chemistry%22%5BJournal%5D)">Identification of Vigilin as a Potential Ischemia Biomarker by Brain Slice-Based Systematic Evolution of Ligands by Exponential Enrichment.</a> Analytical Chemistry. 91 (10), 6675-6681 (2019).</li>
</ol>

作者声明不存在任何竞争性经济利益。

本研究通过将自制的线栓插入SD大鼠的上矢状窦（SSS），成功建立了一种新型的CVST模型。此外，结合激光散斑血流成像与小动物MRI，对SD大鼠栓塞前后脑表面血流变化进行监测，以标准化缺血的时间点与部位。
1989年，Longa 等人通过将自制的尼龙缝合线逆行插入大鼠的颈外动脉，建立了可逆性的大脑中动脉（MCA）阻塞模型12。为了提高该模型的稳定性，此后陆续提出了多种改进方法13。该MCA阻塞模型能够精确定位缺血的时间和部位，易于实现再通，已被广泛应用于脑动脉卒中的基础研究14,15。在本研究中，基于MCAO模型的设计，通过将自制的线栓插入上矢状窦（SSS）起始位置的中心，建立了一种新型的脑静脉窦血栓形成（CVST）模型。
为了阐明颅内静脉窦血栓形成（CVST）的致病机制，已建立并应用了多种动物模型（表...

脑静脉窦血栓形成（CVST）是一种罕见的脑静脉系统疾病，占所有卒中病因的0.5%-1.0%，但在儿童和青年人群中相对发病率较高1。尸检发现，CVST占脑血管疾病死亡原因的10%2。血栓可发生于颅内静脉系统的任何部位，其中上矢状窦（SSS）是CVST最常受累的区域之一，且可累及多支血管。由于静脉窦狭窄或闭塞，颅内静脉回流受阻，常伴有颅内压升高3。CVST的临床表现复杂且随时间变化，尽管症状缺乏特异性，最常见的症状仍包括头痛（77.2%）、癫痫发作（42.7%）和神经功能缺损（39.9%）。严重情况下可出现昏迷甚至死亡4,5。近年来，随着整体医疗健康水平和公众健康意识的提高，相关危险因素的比例发生变化，创伤和感染所占比例下降，而由妊娠、产褥期、口服避孕药及其他因素引起的CVST比例逐渐上升5。
目前，脑静脉窦血栓形成（CVST）的发病机制仍不明确。为了深入探索CVST，需要进一步开展病理生理学研究。然而，大多数研究方法具有侵入性，因此在临床上难以实施。由于临床研究存在诸多限制，动物模型在基础研究和转化研究中具有不可替代的优势。
CVST 的病因复杂，因其初始发病常被忽视，且血栓形成的位置具有高度变异性。幸运的是，动物模型能够更好地控制这些因素。在过去的几十年中，已建立了多种 CVST 动物模型，每种模型均有其自身的缺点。根据不同的制备方法，大致可分为以下几类：简单的 SSS 结扎模型6,7；SSS 内注射促凝剂模型8；三氯化铁诱导的 SSS 血栓形成模型9；光化学诱导的 SSS 血栓形成模型10；以及自制栓塞闭塞 SSS 模型11。然而，大多数这些模型无法避免对动物大脑皮层造成的侵入性损伤，也无法精确控制缺血的时间和部位。在某些模型中，血栓会自发再通；而在其他模型中，SSS 则会永久闭塞。此外，复杂的操作和/或严重的损伤可能会影响这些模型后续的病理生理学研究结果。
本研究将线栓插入Sprague-Dawley（SD）大鼠的上矢状窦（SSS），成功建立了一种损伤小、可控性强且稳定性良好的脑静脉窦血栓形成（CVST）模型。此外，结合小动物磁共振成像（MRI）和激光散斑血流成像技术，验证了该模型的有效性。我们评估了模型建立前后脑血流的变化情况，并考察了模型的稳定性，为深入研究CVST的发生、发展及其相关病理生理机制奠定了基础。

<table><tbody><tr><td>2 mL 注射器</td><td>Becton,Dickinson and Company</td><td>301940</td><td></td></tr><tr><td>脑立体定位仪</td><td>深圳瑞沃德生命科技有限公司</td><td>68025</td><td></td></tr><tr><td>解剖显微镜</td><td>武汉赛默飞奥光电技术有限公司</td><td>SIM BFI-HR PRO</td><td></td></tr><tr><td>高速颅骨钻</td><td>深圳瑞沃德生命科技有限公司</td><td>78046</td><td></td></tr><tr><td>激光散斑血流成像系统</td><td>武汉赛默飞奥光电技术有限公司</td><td>SIM BFI-HR PRO</td><td></td></tr><tr><td>持针器</td><td>深圳瑞沃德生命科技有限公司</td><td>F31022-12</td><td></td></tr><tr><td>缝合线</td><td>深圳瑞沃德生命科技有限公司</td><td>F33303-08</td><td></td></tr><tr><td>剪刀</td><td>深圳瑞沃德生命科技有限公司</td><td>S13029-14</td><td></td></tr><tr><td>硅胶</td><td>Heraeus Kulzer</td><td>302785</td><td></td></tr><tr><td>小动物麻醉机</td><td>深圳瑞沃德生命科技有限公司</td><td>R540</td><td></td></tr><tr><td>小动物磁共振成像仪</td><td>Bruker Medical GmbH</td><td>Biospec 94/30 USR</td><td></td></tr><tr><td>镊子</td><td>深圳瑞沃德生命科技有限公司</td><td>F11029-11</td><td></td></tr><tr><td>血管钳</td><td>深圳瑞沃德生命科技有限公司</td><td>F22003-09</td><td></td></tr></tbody></table>

通过线栓栓塞法建立大鼠上矢状窦闭塞模型

Establishment of a Rat Model of Superior Sagittal-Sinus Occlusion via a Thread-Embolism Method

导致脑静脉窦血栓形成（CVST）自然发病的机制大多尚不明确，且该疾病的发生过程涉及多种不可控因素，这给临床研究带来了极大的局限性。因此，建立能够标准化多种不可控混杂因素的稳定CVST动物模型，有助于克服临床研究中的不足。近几十年来，已构建了多种CVST动物模型，但基于这些模型所得出的研究结果存在不一致和不完整的问题。因此，为了进一步深入探讨CVST的病理生理机制，有必要建立一种新型且高度可重复的动物模型，这对于CVST的诊断与治疗具有重要的实践价值和科学意义。在本研究中，采用导丝栓塞法成功建立了一种新型的Sprague-Dawley（SD）大鼠上矢状窦（SSS）血栓形成模型，并验证了该模型的稳定性和可靠性。此外，我们还评估了CVST形成后大鼠脑静脉血流的变化情况。综上所述，该SD大鼠SSS血栓模型是一种新型的CVST动物模型，具有建模简便、创伤小、稳定性好以及可精确控制缺血时间和部位等优点。

通过线栓法建立SD大鼠下腔静脉窦血栓模型时，应预先准备好线栓（图1A）以及实验所需的设备（图1B) 应进行准备。由于操作较为精细，模型的制备需在解剖显微镜下完成。主要步骤如图所示 图2为便于描述模型血流观察的具体细节， 图3B 标记血流观察区域、骨窗和塞入点，并显示插入上矢状窦（SSS）的线栓状态图3C）。模型制备完成后，采用激光散斑血流成像技术检测SD大鼠脑表面的血流情况（图 4A，B). 图4C 显示上矢状窦（SSS）和桥静脉（BVs）的血流较大脑中动脉（MCA）和毛细血管（CAPs）显著减少。接下来，采用小动物MRI从水平位置检测上矢状窦（SSS）内线栓堵塞的状态<strong cla...

本研究通过线栓栓塞法建立了一种新型的Sprague-Dawley（SD）大鼠上矢状窦（SSS）血栓形成模型，并验证了该模型的稳定性和可靠性。

导致脑静脉窦血栓形成（CVST）自然发病的机制大多尚不明确，且存在多种不可控因素……

由于缺乏理想的动物模型，脑静脉窦血栓形成（CVST）的研究受到极大限制。目前，已通过在上矢状窦（SSS）起始段向心性插入自制栓子成功建立了一种新型SD大鼠CVST模型，该方法标准化了临床条件下各种或不可控的干扰因素。大鼠经腹腔注射成功麻醉后，将其固定于立体定位仪上，并涂抹眼用凝胶以保护角膜，防止麻醉期间角膜干燥。去除大鼠头部顶部的毛发。为了更有效地进行此操作，可在准备室中提前完成前述步骤。大鼠通过麻醉机成功麻醉后，还需涂抹无菌眼用润滑剂。用5%聚维酮碘对大鼠头部表面进行消毒，与75%乙醇交替使用三次。在头部正中做一条长约两厘米的皮肤切口。用手术刀切开筋膜，然后小心剥离顶部的筋膜和骨膜，充分暴露颅骨。确认前囟（A）和后囟（B）的位置。以冠状缝与人字缝之间的区域作为血流观察区。为防止颅骨影响激光散斑血流成像的观察，需将观察区域的颅骨磨薄，直至血管清晰可见。在磨颅骨过程中，应使用常温注射器反复冲洗硬脑膜，避免高温刺激对大脑皮层造成损伤。此步骤及后续操作均在解剖显微镜下进行。在此图中，红色线框的矩形区域为血流观察区域。颅骨变薄区域的尺寸应约为一厘米乘以一厘米。蓝色线框的矩形区域为骨窗。大约六毫米乘以四毫米。红色圆形区域为顶叶关节，箭头指向上矢状窦。当颅骨可见时，使用镊子小心移除骨窗剩余的骨片。选择合适的丝线探针，以前端尖端作为插入点。用2毫米注射器针头小心刺穿预设点，并迅速将丝线探针插入该点。此时，丝线探针末端与SSS之间的夹角应约为30至45度。然后将导丝探针末端与SS之间的角度调整为0到10度。缓慢将SSS插入结构内，直至其头部到达窦汇的后端。当SSS穿刺时，可能出现呼吸急促。如果导丝探针末端无法一次性快速插入准备点，可使用一小块纱布或棉球轻轻按压探针点，同时缓慢下滑，小心暴露准备点。完成此操作后，迅速将导丝末端插入至 SSS 内。蓝色箭头显示了探针从插入口插入 SSS 后的状态。白色箭头指示探针的杆部，红色箭头指示其头部。随后剪去尾部多余的组织。缝合大鼠的皮肤。对皮肤进行三次消毒，并将大鼠从立体定位仪中取出。使用激光光源均匀照射血流观察区域。图像记录了线状探针进入上矢状窦（SSS）的动态过程。该图中，A 和 B 显示了线圈栓塞置入前后血流的对比。C 显示，与大脑中动脉和毛细血管相比，上矢状窦（SSS）和脑静脉的血流显著减少。将动物固定在 MRI 扫描台上。通过定位扫描校准脑部位置，并在确认位置后进行T2加权成像（T2WI）和MRI序列扫描。为了更清晰地观察上矢状窦（SSS）中线探针的状态，采用C2头部固定法显示大鼠脑部的T2WI图像。本图中，A、B和C分别从水平位、矢状位和颅顶位展示上矢状窦（SSS）中线探针的位置。图像显示线栓探针已到位，证实上矢状窦（SSS）栓塞成功。由于大鼠上矢状窦血栓形成模型易于建立，创伤小，稳定性好，且可精确控制化学诱导的时间和位置，因此是一种理想的新型颅内静脉窦血栓形成（CVST）模型。

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通过螺纹栓塞方法建立高级射手座-鼻塞的鼠模型

本视频演示了建立蛛网膜下腔出血大鼠模型的操作步骤。对麻醉后的大鼠植入探针，用于测量颅内压和脑血流量。确定目标位置后，将针头插入视交叉前位置。随后将自体血注入蛛网膜下腔，导致颅内压升高、脑血流量下降，从而成功建立模型。...

建立自体血注射诱导的蛛网膜下腔出血大鼠模型

本视频演示了通过使用栓线阻塞大脑中动脉（MCA）在大鼠模型中诱导缺血性脑卒中的过程。该操作包括结扎颈动脉，将栓线插入颈外动脉，并阻断大脑中动脉向脑部的血流，从而导致神经元死亡，模拟缺血性脑卒中。...

通过线栓法阻塞大脑中动脉诱导缺血性卒中

来源：Tang, X. 等. 通过自体血双次注射建立桥脑大量出血模型. J. Vis. Exp.

通过自体血注射在大鼠模型中诱导桥脑大量出血

已开发出多种脑缺血动物模型以模拟人类中风状况。本方案描述了内皮素-1（ET-1）诱导的大脑中动脉闭塞（MCAO）大鼠缺血性中风模型。此外，还讨论了该模型的重要注意事项、优势与局限性。...

内皮素-1诱导大鼠缺血性脑卒中模型结合激光多普勒血流仪引导的大脑中动脉阻塞

本文介绍了一种通过颅窗和时序性颅骨切除术观察大鼠大脑动脉的方法，以可视化大脑中动脉的近端部分（图1）。该方法具有良好的适应性，可与多种药物递送技术结合，用于在活体（in...

利用颅窗技术观察内皮素-1诱导的中动脉闭塞期间的中脑动脉

通过在大鼠和小鼠中应用角膜缘环扎缝线诱导慢性眼压升高，导致视网膜神经节细胞出现与青光眼一致的功能性和结构性损伤。...

一种通过巩膜周缝合诱导大鼠和小鼠青光眼的模型

蛛网膜下腔出血在人类中仍具有较高的死亡率和致残率。为了促进对该疾病及其病理生理机制的进一步研究，本文介绍了一种视交叉前单次注射模型。...

在大鼠模型中通过视交叉前单次注射自体血诱导实验性蛛网膜下腔出血

本方案描述了一种大鼠大脑中动脉闭塞/再灌注模型，该模型在不造成损伤的情况下保留了脑血管的解剖结构。...

一种不损伤脑血管解剖结构的大鼠中动脉闭塞/再灌注模型

本研究介绍了一种利用氯化铁诱导大鼠上矢状窦血栓形成的可重复、微创动物模型的建立方案，该方法结合丝线结扎技术，并采用激光散斑血流成像和高分辨率超声进行评估。...

改良氯化铁诱导上矢状窦血栓形成模型的建立

在大鼠中通过手术诱导缺血性脑损伤是卒中研究中广泛应用的模型。本文展示了通过阻断大脑中动脉诱导局灶性脑缺血的方法。同时展示了通过组织学染色和磁共振成像对所形成的梗死区域进行可视化。...

大鼠大脑中动脉线栓法内血管闭塞局灶性脑缺血模型

了解通过螺纹栓塞技术建立Sprague-Dawley大鼠上矢状窦血栓模型的方法。该模型创伤小、稳定性高，可用于研究脑静脉窦血栓的发病机制及评估潜在治疗方案。

通过线栓栓塞法建立大鼠上矢状窦闭塞模型

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