2021年11月6日
将苹果果肉细胞的原生质体分离后,用钙荧光试剂负载,以检测细胞质中Ca2+浓度。
作为一种重要的矿物元素,钙在苹果等果树果实的生长和品质调控中发挥着关键作用,能够调节果实的硬度、糖含量、贮藏期以及贮藏期间的生理失调。钙成像是检测细胞质中钙离子动态变化最常用的方法。小分子荧光探针(如 fluo-4/AM)具有对钙离子的特异性选择性,可通过酯化孵育实现非侵入性加载,具有操作灵活、快速且无细胞毒性的优点。
本方案将介绍一种将小分子化学荧光试剂Fluo-4/AM加载到植物原生质体中的方法。原生质体提取:向一个1.5毫升离心管中加入0.5毫升酶解液。选取一个健康且成熟的苹果,将果肉切成10 × 5 × 1 立方毫米大小的片状。
将果肉组织放入酶解液中,然后盖紧管盖。在28摄氏度条件下孵育1小时,于黑暗环境中以70 rpm振荡。
随后,清洗原生质体碎片,吸除全部酶解液,然后加入 0.5 毫升基础溶液。以 300 ×g 的速度离心 2 分钟。通过吸取底部溶液即可获得原生质体悬液。
小分子化学荧光试剂染色。按1:1:2的比例,将2毫摩尔的Fluo-4/AM、20%乙基127和10倍浓度的磷酸盐缓冲液混合,配制Fluo-4/AM负载溶液。取1微升Fluo-4/AM负载溶液加入99微升原生质体悬液中。
荧光染料的终浓度为 5 微摩尔。混匀溶液后盖上管盖。同时,镧系元素铁对小分子化学荧光试剂的钙离子或特异性具有影响。
向98微升原生质体悬浮液中加入一微升或十微升镧离子,然后加入一微升fluo-4/AM染料负载溶液。镧离子的终浓度为100微摩尔。混匀溶液后盖紧管盖。
在避光条件下37摄氏度孵育30分钟。随后以300 ×g离心2分钟。吸除上清至剩余17 µL溶液,加入17 µL基础溶液。
将原生质体悬液在37摄氏度下孵育30分钟以充分完成反应。随后,吸取50微升原生质体悬液滴加到载玻片上,在荧光显微镜下观察。选择20倍放大倍数及GFP通道进行观察。
将亮度统一调整为0.5。本方法中的关键步骤是洗涤原生质体中的染料,并孵育30分钟。洗涤不充分会导致观察时荧光背景过高,而孵育有助于探针更好地进入细胞质。
原生质体活力检测:将原生质体悬浮液在37摄氏度下孵育30分钟后,取99微升。向原生质体悬浮液中加入1毫升FD溶液。用移液器反复吹打数次以混匀溶液,然后盖紧管盖。
避光、室温孵育五分钟。制备载玻片,并在荧光显微镜的GFP通道下观察。我们向您展示图一的实验结果。
我们采用酶解法从果肉中获得原生质体。部分原生质体含有液泡,而另一些则不含。原生质体用FD染色5分钟,显示细胞质中出现荧光,表明高温(37摄氏度)不影响原生质体的活力,如图2所示。
原生质体在一种钙离子荧光指示剂中未表现出荧光,或该指示剂未成功加载至原生质体中。随后将Fluo-4/AM加载到原生质体后,细胞质部分出现荧光,而液泡则未产生荧光。在原生质体Fluo-4/AM加载过程中,加入了可有效阻断钙离子通道的镧系离子,其作用于细胞膜。
在100微摩尔浓度的镧离子存在下,细胞质钙离子的荧光强度显著降低。该结果进一步表明,Fluo-4/AM 能有效保留在细胞质的钙离子中,并可反映钙离子含量的动态变化。图三:使用 IMH Approved Plus 6.0 软件分析 Fluo-4/AM 实验结果,加入镧离子后,细胞质钙离子的荧光值显著下降。
在本视频中,所有原生质体均通过酶解法获得。我们成功在37摄氏度下将荧光探针导入原生质体。此外,该方法未影响原生质体的活力。
综上所述,本文所述方法较为详尽,可提供苹果果肉细胞质中钙离子动态变化的10个均等支持,从而为进一步开展钙相关研究奠定基础。
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本文介绍了一种从苹果果肉细胞中分离具有活性的原生质体,并利用小分子荧光指示剂Fluo-4/AM检测胞质Ca2+动态变化的实验方案。该方法可实现对植物细胞中钙离子的无创、快速且有效的成像,为研究钙在果实发育和品质调控中的作用提供了有力工具。
对植物原生质体中胞质 Ca2+ 进行定量成像,可精确研究与果实发育和质量控制相关的钙信号通路。使用 Fluo-4/AM 可实现无创、可重复的动态 Ca2+ 变化检测,有助于在基于植物的生物产品研发管线中进行早期发现和机制层面的风险评估。该技术能力增强了农业生物技术领域转化研究和项目推进的预测可靠性。
该钙成像方案可融入植物性状开发与质量评估从发现到临床前研究的连续流程中。