2021年5月23日
本文介绍一种利用基质辅助激光解吸电离-飞行时间-飞行时间串联质谱(MALDI-TOF-TOF)及自主开发的软件进行自上而下蛋白质组学分析,快速鉴定基因组测序的致病菌所产生蛋白质的实验方案。由于天冬氨酸效应,亚稳态蛋白质离子发生断裂,该特异性被用于蛋白质鉴定。
该方案展示了一种利用抗生素诱导和质谱技术快速鉴定细菌蛋白质的方法。该技术的主要优势在于其快速和简便。样品制备过程简单。
该技术可拓展用于表征任何致病性细菌,例如毒力因子或抗生素耐药性,从而为细菌感染的适当治疗提供更充分的依据。首先,使用无菌的1微升接种环从LB琼脂平板上生长的单个菌落中采集细菌,然后转移至含有300微升HPLC级水的2毫升O形圈密封螺口微量离心管中。
然后短暂涡旋混匀管内样品,通过离心沉淀细胞,在不锈钢基质辅助激光解吸电离靶板上留下0.75 µL的样品上清液残留水,并使其干燥。将干燥后的样品点覆盖0.75 µL的芥子酸饱和溶液,该溶液由33%乙腈、67%水和0.2%三氟乙酸配制而成,再让其干燥。待样品点完全干燥后,将靶板装入质谱仪中。
打开采集软件,点击“MS Linear Mode Acquisition”或在相应字段中输入质荷比范围以及质荷比的上下限。在MALDI靶板模板上点击待分析的样品点,然后按住鼠标左键,拖动光标覆盖样品点,以确定用于激光消融或电离的矩形采样区域。
释放鼠标按钮以启动采集,并为每个样品点收集 1000 次激光脉冲。如果未检测到离子,则通过调节激光强度下方的滑动条逐步增加激光强度,直至检测到蛋白质离子信号。完成线性模式质谱采集后,单击进行二级质谱反射模式采集。
在“前体离子质量”字段中输入待分析的前体离子质量。接着,在前体离子质量窗口中,分别输入前体离子质量低质量和高质量端的隔离宽度(单位为道尔顿)。单击“关闭CID”按钮。
然后点击“亚稳态抑制器开启”按钮。通过调节滑动标尺,将激光强度调整至其最大值的至少90%,如图所示。在MALDI靶板模板上点击待分析的样品点,然后按住鼠标左键,拖动光标覆盖样品点以指定用于激光解吸或电离的矩形区域,松开鼠标按钮以开始采集,并对每个样品点采集10,000次激光射击,如图所示。
双击蛋白质生物标志物搜索器可执行文件,图形用户界面窗口将出现。在“成熟蛋白质质量”字段中输入蛋白质生物标志物的质量,在“质量容差”字段中输入质量测量误差。可选地,单击“互补 b/y 离子蛋白质质量计算器”按钮,以根据假定的互补碎片离子对计算蛋白质质量,此时将弹出蛋白质质量计算器工具的窗口。
输入假设的互补片段离子对的质荷比,点击“添加对”按钮,计算器将显示蛋白质质量。将此值复制并粘贴到成熟蛋白质质量字段中,然后关闭蛋白质质量计算器工具窗口。点击“设置残基限制”复选框。
选择末端终止信号肽的长度,此时将弹出带有滑动标尺和光标的窗口,请移动光标至所需的信号肽长度。如果未选择信号肽长度,软件将执行无限制的序列截断。在“片段离子条件”下,通过点击一个或多个残基(D、E、N 和/或 P)的复选框,选择多肽骨架裂解所对应的残基。然后点击“输入片段离子加一以进行搜索”按钮,片段弹出页面将会出现。
接下来,点击“添加碎片离子”按钮,将出现一个下拉字段用于输入每个碎片离子。输入碎片离子的质荷比及其相应的质荷比容差,然后点击“保存并关闭”按钮。
在“需要匹配多少个碎片离子”右侧框中,滚动选择用于鉴定所需的最少碎片离子匹配数量,并选择处于氧化状态的半胱氨酸残基。如果搜索后蛋白质仍未被鉴定出来,请使用还原状态的半胱氨酸重复搜索。在文件设置下,点击“选择FASTA文件”图标,浏览并选择之前构建的细菌菌株的蛋白质序列的FASTA文件。
然后选择一个输出文件夹并创建输出文件名。单击“在文件条目上运行搜索”图标。此时将弹出一个名为“确认搜索参数”的窗口,显示搜索开始前的搜索参数。
如果搜索参数正确,请单击“开始搜索”。如果参数不正确,请单击“取消”并重新输入正确的参数。搜索启动后,参数窗口将关闭,随后会弹出一个显示进度条的新窗口,实时显示搜索进度以及已找到的鉴定结果数量的动态统计。
搜索完成后,进度条将自动关闭,搜索结果摘要将显示在图形用户界面的日志字段中,同时会弹出一个新窗口,显示所找到的蛋白质鉴定结果。在本研究中,细菌培养物在含有两种不同浓度丝裂霉素C的LB培养基中培养。该质谱图来自在含有丝裂霉素C的培养条件下生长的细菌培养物。
鉴定出冷休克蛋白C、冷休克蛋白E以及一种功能未知的质粒编码蛋白。对分子量为9780的未知蛋白离子进行MS/MS分析,前体离子通过时间离子选择窗口约为100道尔顿进行分离。质荷比为9675.9的碎片离子来源于亚稳态蛋白离子9655的解离过程中的信号溢出。
大肠杆菌素E3的免疫蛋白序列含有可电离的碱性残基位点。在搜索过程中使用半胱氨酸的还原形式时,可检测到来自多肽骨架断裂的碎片离子。N端甲硫氨酸在翻译后修饰过程中被切除。
当细菌培养物在高浓度丝裂霉素C条件下生长时,鉴定了细菌素的免疫蛋白。通过串联质谱(MS/MS)分析了分子量为9651的未知峰,并采用更窄且不对称的TIS窗口(负75至正60道尔顿)对前体离子进行分离。该细菌素免疫蛋白的序列中含有碱性残基,可能是电离的潜在位点。
在搜索过程中使用半胱氨酸的还原形式时,检测到的来自多肽骨架裂解的碎片离子。在不同浓度抗生素作用下,相对蛋白质丰度可能发生变化。这些变化通过质谱分析进行检测。
收集细菌细胞时,应观察菌落形态以及细菌在不同抗生素及其浓度下的生长情况。检测蛋白质需要使用一微升环的细胞量。
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本方案介绍了一种快速且简便的方法,用于鉴定与致病性大肠杆菌(Escherichia coli)产生的杀菌酶(特别是大肠杆菌素E3和细菌素)相关的免疫蛋白。该方法结合了抗生素诱导、基质辅助激光解吸/电离-飞行时间串联质谱(MALDI-TOF-TOF)以及利用自主开发软件进行的自上而下蛋白质组学分析。该技术可高效鉴定免疫蛋白,对于理解细菌防御机制具有重要意义。
利用MALDI-TOF-TOF-MS/MS和自上而下的蛋白质组学技术快速鉴定细菌免疫蛋白,可直接支持抗感染药物发现早期阶段的靶点验证和作用机制去风险化。该工作流程能够高置信度地解析细菌防御机制,为抗菌研发项目中的靶点优先排序和转化连续性提供依据。该方法加速了从发现到可操作性洞见的转化过程,减少了蛋白质功能注释中的不确定性。
该方法在早期发现与先导物识别的交汇处发挥作用,通过提供经过验证的蛋白质靶点和机制性见解,为临床前研究搭建桥梁。