2022年2月22日
本文描述了一种Tg(Myh6-cre)1Jmk/J /Gt(ROSA)26Sortm38(CAG-GCaMP3)Hze/J(下文简称αMHC-Cre/Rosa26A-Flox-Stop-Flox-GCaMP3)小鼠报告基因品系的建立及其在心脏重编程评估中的应用。从小鼠品系中分离得到的新生小鼠心肌成纤维细胞(NCFs)可被转化为诱导性心肌细胞(iCMs),从而可通过钙离子(Ca2+)流信号,便捷且高效地评估iCMs的重编程效率及功能成熟度。
本方案中描述的方法将为评估心肌重编程研究中心内细胞(ICMs)的功能成熟度提供一个有价值的平台。钙离子流仅在心内细胞中被观察到,因此可作为评估心内细胞功能成熟度的一种手段。该小鼠品系简化了评估流程,并提高了实验结果的可重复性。
本方案是评估心肌细胞重编程领域内心肌细胞(ICMs)功能成熟度的一种新方法。该方法也可用于评估心肌细胞分化及心脏功能。首先获取8至10只出生0至2天(P0至P2)的幼鼠,以分离1000万只新生心脏成纤维细胞(NCFs)。
通过低温使仔鼠深度麻醉。在荧光显微镜下观察心脏,确保具有目标基因型的心脏显示出钙离子流,表现为GCaMP3荧光且心脏仍在搏动。其他基因型的心脏不会显示荧光。
心脏分离后,将其切成四个松散相连的部分。在6厘米培养皿中,用预冷的杜氏磷酸盐缓冲液(DPBS)反复彻底清洗数次,以减少分离细胞中的血细胞污染。用8毫升37摄氏度的温热0.25%胰蛋白酶-EDTA溶液消化心脏组织10分钟。
弃去胰蛋白酶上清液,加入5毫升含有0.5毫克/毫升预热的II型胶原酶的Hank's平衡盐溶液。充分涡旋混匀,在37°C下孵育5分钟。孵育结束后,再次充分涡旋混匀,静置使未消化的组织通过重力沉降下来。
将上清液收集到含有5毫升冷的成纤维细胞培养基的15毫升锥形管中。用成纤维细胞培养基稀释细胞,使接种密度约为每立方厘米2×10⁴至2.5×10⁴个细胞。然后将细胞接种至培养皿或培养板中。
接种后第二天,贴壁的成纤维细胞应呈椭圆形至圆形。在第0天,将NCF以每立方厘米约1×10⁴至2×10⁴个细胞的密度接种于成纤维细胞培养基中。在第1天,根据需要将每孔的培养基更换为含病毒的培养基。
在第2天,即病毒感染后24小时,将含有病毒的培养基更换为常规ICM培养基。在室温下使用倒置荧光显微镜检测钙离子流。在10倍物镜下观察GCaMP3阳性细胞,确保明场通道中可见细胞自发搏动。
具有正确基因型的心脏表现出与搏动同步的钙离子流,表现为GCaMP3荧光。而在对照组心脏中未观察到荧光。分离的NCFs在2小时内贴壁,并在接种后一天呈现椭圆形至圆形。
钙离子振荡显示出GCaMP3荧光在最大值与最小值之间的变化,且此类细胞的钙离子振荡呈周期性改变。引入IMAP后,搏动细胞簇的数量显著高于对照组,因为在高倍视野下,IMAP培养基处理组中GCaMP3阳性且具有钙离子流的细胞数量增加。NCFs在分离后应保持新鲜且状态良好。
快速的心脏分离、切割以及适当的消化时间有助于避免细胞活力和状态的下降。该方法为心脏重编程研究人员提供了一种鉴定功能性成熟心肌细胞的途径。结合多种进一步的评估方法,可更全面地了解功能性成熟心肌细胞的特性。
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本文介绍了一种用于评估心脏重编程的新型小鼠报告基因品系 αMHC-Cre/Rosa26A-Flox-Stop-Flox-GCaMP3。该已建立的实验方案可通过钙流分析,对由新生小鼠心肌成纤维细胞(NCFs)诱导生成的诱导型心肌细胞(iCMs)进行评估。
评估诱导型心肌细胞的功能成熟度仍是再生治疗中心脏重编程领域的一个关键瓶颈。本方案提供了一种直接的、基于报告基因的钙流检测方法,可对诱导型心肌细胞(iCM)的功能成熟度进行客观评价,支持早期发现阶段的靶点验证和机制层面的风险排除。通过将转录重编程与功能性电生理输出相联系,该方法提高了临床前模型的预测可信度,并为心脏修复策略的研发管线决策提供依据。
该方法适用于从靶点验证到先导化合物发现直至临床前评价的整个发现流程,特别能够在转录重编程后、体内验证前实现功能评估。