2021年12月3日
在充分麻醉的条件下,通过肋间切口将小鼠心脏外置,并使用大多数实验室 readily available 的材料结扎左前降支动脉(LAD),成功诱导心肌梗死。
本报告介绍了一种在小鼠中诱导心肌梗死的独特方法。该方法操作简便、节省时间,且仅需使用大多数实验室中常见的手术管路和设备。心肌梗死模型的建立为研究心肌梗死后心室重构的既往机制以及评估新型治疗手段的疗效提供了前提条件。
将脱毛膏涂抹于小鼠胸部,等待一分钟。然后用湿纱布轻轻擦去脱毛膏及毛发。将小鼠仰卧位固定于手术平台上。
按照文中所述消毒手术区域。然后在消毒区域周围铺无菌巾。沿剑突与腋窝连线做一道0.5厘米的皮肤切口,并使用镊子钝性分离胸大肌与胸小肌。
使用微型蚊式止血钳打开第四肋间间隙。用左手食指将心脏推向第四肋间间隙,使心脏外露。用左手固定心脏,并在距左前降支起始处3毫米处用6/0缝线结扎该血管。
迅速将心脏放回胸腔内,通过轻压胸腔排出胸腔内的空气。术后镇痛处理:术后72小时内,每4至6小时皮下注射一次布托啡诺。
将小鼠置于加热垫上以从麻醉中恢复。将已处死的小鼠仰卧位固定在手术平台上。在上腹部做一条长约三至四厘米的腹侧切口。
从胸腔两侧切下肋骨,然后移除膈肌。通过心室注射,用 10 毫升冰冷的 4 摄氏度 1×PBS 灌注心脏。随后切断主动脉根部以获取心脏,并立即在 -80 摄氏度条件下保存。
将冷冻的心脏置于冰上,使用剃刀将其切成一毫米厚的切片。将制备好的心脏切片浸入含有1% TTC溶液的1×PBS缓冲液中,在37摄氏度下孵育10至15分钟。随后使用数码相机拍摄切片图像。
冠状动脉结扎后,TTC 染色分析表明心肌梗死成功诱导,并显示了心肌梗死后瘢痕大小的时间变化。生存分析结果显示,C57BL/6J 小鼠在心肌梗死后七天内出现明显的死亡率,雄性和雌性小鼠均如此。心室破裂是心肌梗死后死亡的常见原因。
心肌梗死后超声心动图评估显示,收缩功能障碍和心室重构成功建立。在尝试将心脏外置时,不要首先按压胸腔,当遇到阻力时,应根据阻力方向调整操作角度,而非强行推进。完成此操作后,可进行心肌内注射病毒载体或细胞,以评估基因治疗或细胞治疗在心脏病中的疗效。
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本文介绍了一种利用 readily available 外科材料在小鼠中诱导心肌梗死的方法。该技术可用于研究心肌梗死后的心肌重塑过程,以及评估新型治疗手段。
稳定可靠的在体心肌梗死(MI)模型对于心脏治疗手段的临床前评估以及MI后心室重构的机制研究至关重要。本简化冠状动脉结扎方案可在小鼠中实现可重复的心肌梗死诱导,支持转化医学研究及早期治疗假设的验证。该方法具有良好的可操作性和高效性,有助于在发现研究和临床前研发项目中更广泛地应用。
该心肌梗死(MI)诱导方案适用于早期发现与临床前验证之间的研究,可在生理相关模型中支持假设驱动的研究和候选物筛选。