2021年10月15日
本文介绍了一种从小鼠和人类细胞系中纯化MHC I类和II类肽复合物的实验方案,可获得高质量的免疫肽组学数据。该方案重点介绍使用商业化抗体进行样品制备的方法。
本方案具有重要意义,因其操作简便,任何实验室均可实施。该方案可用于从人或小鼠样本中分离HLA或MHC I类或II类肽段。该方法可应用于涉及免疫系统的各个研究领域的科学问题,无论是在癌症、病毒学还是自身免疫性疾病研究中。
本方案旨在为任何在科研实验室工作的人员提供便利。只需按照以下步骤操作即可。首先,称取每份样品80毫克的Sepharose溴化氰活化珠,转移至15毫升锥形管中,开始活化。
加入5毫升1毫摩尔盐酸。用移液器上下吹打5次,以促进干燥微珠的重悬,然后用额外的8.5毫升1毫摩尔盐酸补充满锥形管。使用旋转仪装置,在室温下以20转/分钟的速度旋转微珠30分钟。
在室温下以200×g离心磁珠两分钟,并通过抽吸去除上清液。向磁珠板中加入500微升偶联缓冲液,然后将磁珠悬液转移至一个新的2毫升离心管中,备用。为将抗体偶联到这些磁珠上,取2毫克选定的抗体加入一个新的2毫升微量离心管中,再用偶联缓冲液定容至1毫升,使终浓度为2毫克/毫升。
将先前配制的磁珠溶液转移并加入抗体溶液中。然后,使用旋转仪装置在20 RPM条件下旋转微量离心管120分钟,离心磁珠,随后按前述方法去除上清液。接下来,开始对磁珠进行封闭和洗涤:首先向含有抗体偶联磁珠的微量离心管中加入1毫升0.2摩尔的甘氨酸,再使用旋转仪装置在室温下以20 RPM旋转60分钟。
离心并去除上清液后,用一毫升 PBS 洗涤磁珠,再次离心去除上清液,并将磁珠保存在四摄氏度的一毫升 PBS 中,直至使用。为分离 MHC I 类或 II 类肽段,用手掌加热管底以融化含有一亿细胞的冷冻细胞悬液。向细胞悬液中加入 500 微升 PBS,反复吹打直至悬浮液均匀。
将悬液转移至一个新的2毫升微量离心管中,并加入等体积的细胞裂解缓冲液。使用旋转仪在4°C、10 RPM条件下旋转孵育60分钟。将细胞裂解物在4°C、18,000×g条件下离心20分钟(使用全制动),然后将上清液转移至一个新的2毫升微量离心管中。
通过离心回收抗体偶联的磁珠,并移除上清液。然后将细胞裂解物上清液转移至抗体偶联的磁珠中,使用旋转仪在4°C下以10 RPM孵育14至18小时过夜。第二天,取下聚丙烯柱的底盖,将柱子置于聚丙烯柱架上,并在下方安装一个空容器以收集穿流液。
用 10 毫升缓冲液 A 冲洗聚丙烯柱,并让其依靠重力自然流干。如果液体流出速度过慢,可进一步剪去聚丙烯柱底部的尖端。测量并收集珠子/裂解液混合物,转移至聚丙烯柱中。
让液体混合物依靠重力自然流出。可选步骤:收集20微升等分试样并冷冻,用于蛋白质印迹分析。现在向聚丙烯柱中残留的珠粒加入10毫升缓冲液A,让其依靠重力自然流出,以洗涤珠粒。
从支架上取下聚丙烯柱,将其置于新的2毫升微量离心管上,用手握住柱子和离心管。向聚丙烯柱中加入300微升1%三氟乙酸(TFA),通过上下吹打5次混匀磁珠。然后,将洗脱液转移至新的2毫升微量离心管中。
为脱盐并洗脱MHC肽,先在C-18柱上加入200微升甲醇,于1,546×g离心3分钟以弃去穿流液。随后在C-18柱上加入200微升含0.1%三氟乙酸(TFA)的80%乙腈溶液,再次离心以弃去穿流液。接着加入200微升0.1% TFA溶液,通过离心弃去穿流液。
最后,将200微升MHC肽复合物加样至C-18柱顶部,通过离心弃去穿流液,并重复此步骤直至全部体积加样完毕。接着,加入200微升含0.1%三氟乙酸(TFA)的溶液,离心弃去穿流液,将C-18柱转移至一个新的2毫升微量离心管中,然后加入150微升含28%乙腈的0.1%TFA溶液洗脱MHC肽。离心后,将穿流液收集至一个新的1.5毫升微量离心管中。
重复洗脱过程两次,总体积为450微升,并在负20摄氏度下冷冻,直至进行LC-MS-MS分析。使用这些纯化的肽段通过质谱仪鉴定MHC I类和II类分子的肽段。当抗体共价结合到CNBr珠上后,与偶联前的抗体相比,轻链和重链的信号染色强度显著降低,表明珠子的结合效率较高。
通过使用抗-HAL-ABC重链抗体检测到强烈的信号,证实了在酸性洗脱后成功分离出MHC肽复合物。本实验方案在个体内部和个体之间的结果重复性也进行了评估。在三个不同的生物学重复样本中,所检测到的肽段数量的平均变异系数较小,范围为1.9%至11%。然而,肽段的鉴定结果差异较大,在三个生物学重复样本中可重复检测到的肽段比例范围为39%至63%。生成的热图显示了已鉴定肽段预测的MHC结合强度。
对于小鼠MHC I类和II类肽,预测的强结合或弱结合肽分别占89%和87%。对于人类HLA I类和II类肽,预测的强结合或弱结合肽分别占97%和70%。同时还生成了小鼠和人类LHC I类和II类肽的肽结合基序。
在优化本方案之前,小鼠MHC I类和II类肽段的分离较为困难。该优化后的方案将有助于从小鼠体内模型中分离小鼠MHC I类和II类肽段,例如常用于多种不同疾病相关研究验证的实验模型。
本方案概述了一种从小鼠和人类细胞系中纯化MHC I类和II类肽复合物的简便方法,可获得高质量的免疫肽组学数据。该方法适用于任何实验室,有助于推动涉及免疫系统的多个领域的研究。
免疫肽组学能够直接研究抗原呈递过程,这是疫苗和免疫治疗开发中的关键步骤。本方案提供了一种标准化且易于实施的方法,用于从鼠类和人类模型中分离MHC相关肽段,支持早期发现阶段的靶点验证和机制去风险化。通过提供可重复的肽段谱型,该方法增强了候选分子筛选的预测可靠性,并减少了肿瘤学、病毒学和自身免疫性疾病项目中的生物学损耗。
该方法适用于从靶点验证到先导化合物优化的整个发现流程,提供抗原呈递数据,以指导免疫治疗设计及临床前候选分子的筛选。