2021年12月29日
本方案描述了一系列方法,包括采用分析型尺寸排阻色谱研究组蛋白伴侣的寡聚化状态与稳定性,通过下拉实验解析组蛋白伴侣与组蛋白之间的相互作用,利用分析超速离心分析蛋白复合物的化学计量比,以及开展组蛋白分子伴侣功能检测以对潜在的组蛋白伴侣进行功能性表征 体外.
本方案描述了如何利用拉下实验、分析型尺寸排阻色谱、分析型超速离心以及组蛋白伴侣活性检测等技术,来验证一种蛋白质是否具有组蛋白伴侣功能。此处涵盖的技术若联合使用,可直接用于表征候选伴侣蛋白,并可与结构生物学技术相结合。
这些技术适用于染色质研究领域。然而,根据需要,各个方法也可应用于任何其他目标蛋白。复杂的免疫共沉淀实验将由我实验室的博士生Surajit Gandhi先生进行演示;
Archana Samal(一名博士生)与 Ruchir C. Bobde 先生共同完成分析型超速离心实验;Somanath Baral 先生(一名博士生)与 Ketul Saharan 先生共同完成质粒超螺旋实验。首先,在 300 微升平衡缓冲液中混合 5 µM 组蛋白伴侣蛋白与 20 µM H2A/H2B 二聚体。离心组蛋白伴侣蛋白-H2A/H2B 复合物,以去除任何沉淀物。
将样品上样至预先用平衡缓冲液平衡的离心柱中。用100个柱体积或4毫升洗涤缓冲液洗涤柱子,以去除过量的H2A/H2B二聚体。接下来,将组蛋白伴侣H2A/H2B复合物与20至60微摩尔的H3/H4四聚体混合。
用100个柱体积或4毫升洗涤缓冲液重新洗涤层析柱,以去除未结合的H3/H4四聚体,然后用洗脱缓冲液洗脱样品。将洗脱的样品进行18% SDS-PAGE电泳。随后,用考马斯亮蓝R250染色并观察凝胶。
使用分析型尺寸排阻色谱法,分别用透析缓冲液纯化组蛋白伴侣中的H2A/H2B二聚体和H3/H4四聚体。保留色谱运行所用的缓冲液,用于后续稀释以及作为AUC样品池中的参比液。对于AUC样品,将纯化的伴侣蛋白分别与二聚体或四聚体在不同的离心管中混合,总体积为450微升,使用之前保留的透析缓冲液调节至OD280在0.3至0.6之间。
使用分析型超速离心机配备的双通道中心部件和石英窗组装离心池。分别向参比通道和样品通道中加入 400 µL 样品溶液和 420 µL 透析缓冲液。称重并精确平衡离心池,然后将其装载到四孔钛转子中。
使用细胞底部的标记和转子对齐细胞。将转子放入离心机中,关闭盖子并启动运行,以使真空形成且温度稳定。对于数据分析,使用程序 SEDNTERP 根据蛋白质的氨基酸组成计算蛋白质缓冲液组分的密度、黏度以及偏微比容。
将AUC仪器的数据载入SEDFIT程序。定义弯月面(红线)、细胞底部(蓝线)以及数据分析范围(绿线)。选择连续c(s)分布作为模型。
在参数部分,将分辨率最大值设置为100。接着,将沉降系数的最小值设为0,最大值设为10至15。初始时将摩擦比设为1.2,并选择浮动以从数据中推导该比值。
将 F 比值设为 0.68 以进行一西格玛正则化。根据 SEDNTURP 获得的部分比容、缓冲液密度和黏度进行设置。按下“运行”以允许软件求解 lam 方程。
按“拟合”以优化结果。在主工具栏的显示功能中选择“在CS中显示峰Mw”,以估算分子质量。在组装缓冲液中,将2微摩尔的H3/H4四聚体与4微摩尔的H2A/H2B二聚体混合,并加入浓度逐渐增加的组蛋白伴侣蛋白(范围为1至6微摩尔),最终体积为50微升。
将混合物在 4 摄氏度孵育 30 分钟。同时,在终体积为 50 µL 的组装缓冲液中,用 1 µg 的拓扑异构酶 I 处理 500 ng 的负超螺旋 PUC-19 质粒。接着,将含有四聚体、二聚体和组蛋白伴侣的预混溶液与松弛的质粒 DNA 混合。
加入100微升2X终止缓冲液,通过去除质粒DNA的蛋白质来终止连接反应。在含有反应混合物的试管中加入等体积的Tris饱和酚,并充分混匀反应混合物。然后,离心样品。
用微量移液器轻轻收集含有质粒DNA的上层水相,并加入等体积的氯仿。涡旋混合该混合物。接着,收集上层水相,加入1/10体积的pH 5.5的3摩尔乙酸钠溶液和2.5体积的预冷乙醇。
将溶液上下颠倒混匀3至4次。在16,200 G离心10分钟,轻轻弃去上清液。将离心管敞口置于室温,直至乙醇完全挥发,仅留下管中沉淀的质粒DNA。
分析型SEC结果表明,拟南芥蛋白FKBP53的重组N端核质素结构域在溶液中为五聚体,分子量为65千道尔顿。对核质素样品进行热处理后显示,该结构域具有高度热稳定性。该核质素结构域在氯化钠浓度高达2摩尔、尿素浓度高达4摩尔的条件下均表现出盐稳定性和尿素稳定性。
下拉实验证实,核质蛋白结构域与H2A/H2B二聚体的相互作用在氯化钠浓度高达0.4摩尔时仍保持稳定,而与H3/H4的结合则在高达0.7摩尔时仍稳定。该分子伴侣可同时结合H2A/H2B二聚体和H3/H4四聚体,且不受其加入顺序的影响,表明这两种寡聚体具有独立的结合位点。通过AUC-SV测定的分子质量显示,核质蛋白结构域与组蛋白寡聚体之间呈1:1的化学计量比。
在质粒超螺旋实验中,重组植物组蛋白伴侣蛋白 AtNRP1 和 AtNRP2 增加了超螺旋质粒的数量,表明它们可将组蛋白沉积到 DNA 上形成核小体,从而引起 DNA 超螺旋。质粒超螺旋实验需要特别注意,并可能需要针对组蛋白、DNA 和伴侣蛋白的特性进行优化。异构体表征遥测技术可作为分析型凝胶过滤实验的后续手段,用于确认结合稳定性。
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本文介绍了一种利用多种体外生物化学技术相结合的方法,全面验证蛋白质组蛋白伴侣活性的实验方案。所述方法可使研究人员表征蛋白质-组蛋白相互作用,评估结合的特异性和稳定性,并检验候选伴侣蛋白促进核小体组装的能力。
表征组蛋白伴侣功能可通过确认蛋白质-组蛋白相互作用的特异性和复合物的稳定性,从而支持表观遗传药物发现中的靶点验证。这种机制层面的风险评估能够为调控染色质动态以实现治疗干预提供可预测的信心。整合的检测方法可提供定量且可重复的数据,对于早期靶点筛选和先导化合物鉴定至关重要。
该工作流程将生物化学表征置于发现过程的早期阶段,在表型筛选或先导化合物优化之前为靶点选择提供依据。