2021年12月28日
本文报道了一种 体内 通过腹腔手术和睾丸注射 CENP-E 抑制剂 GSK923295,建立了一种研究雄性减数分裂的有价值模型。利用免疫荧光、流式细胞术和透射电子显微镜检测,我们发现 CENP-E 抑制会导致小鼠初级精母细胞中染色体排列紊乱和基因组不稳定。
减数分裂是真核生物中一种进化上保守的事件,对配子发生和有性生殖至关重要。本方案提供了一种研究减数分裂和精子发生的有效方法。我们已描述了一系列用于分析精母细胞的实验方案。
该技术可用于观察减数分裂纺锤体、同源染色体以及精母细胞中的亚细胞器。该方法适用于减数分裂分析、基因编辑动物模型的构建以及组织或器官中的基因转染。实验人员在进行腹腔手术时应保持无菌环境,并注意本实验方案中的温度、时间及其他关键实验条件。
本实验操作将由我实验室的研究生许梦菲(Miss Meng-Fei Xu)进行示范。首先,将麻醉后的小鼠四肢固定并绑扎,置于蜡盘上。消毒手术区域后,使用无菌手术刀在小鼠腹腔处切开一个5毫米的开口,随后在皮肤上放置无菌手术钳。
然后用无菌解剖镊夹住附睾脂肪垫,借助无菌镊子找到睾丸。在体视显微镜下用无菌镊子固定睾丸后,使用10 µL Riodine将10 µL的GSK923295缓慢注入曲细精管,终浓度为10 µmol。操作完成后,将睾丸推回腹腔,并按照文稿中所述方法缝合手术部位。
对采集的小鼠睾丸进行梯度脱水时,按照文中的描述,将样品依次浸入不同的介质中。经过系列浸润后,将组织置于包埋盒底部,并向盒中加入熔化的石蜡。为使石蜡完全凝固,将样品在4°C条件下冷却六小时。
随后,将样品固定在超薄切片机的样品台上,同时保持样品与刀片表面之间的角度为5至10度。调节切片厚度为5 µm,使用超薄切片机制备5 µm厚的切片。切片制备完成后,将样品载玻片置于40 °C的水浴中展片,然后在37 °C的载玻片烘干机中干燥12小时。
12小时后,按照前述方法对玻片进行依次孵育。随后,将玻片在蒸馏水中冲洗5分钟,再于室温下用迈氏苏木精溶液染色6分钟。然后,在流水下冲洗染色后的玻片5分钟,接着在蒸馏水中孵育2分钟。
将切片在1%乙醇盐酸溶液中孵育3秒,然后用流水冲洗2分钟。用1%伊红染色15秒,随后进行逐级孵育。完成后,取15微升中性树胶和24×50毫米的盖玻片封片。
进行免疫荧光实验时,将切片放入抗原修复液中,在高压锅内高温高压下煮沸4分钟以进行抗原修复。随后自然冷却至室温,用蒸馏水冲洗两次,每次5分钟,再用PBS缓冲液冲洗5分钟。为通透细胞,将切片在含有0.25% Triton X-100的500微升PBS溶液中孵育10分钟,然后用PBS缓冲液冲洗三次,每次5分钟。
进行抗原封闭时,将样本与300微升含3%牛血清白蛋白(BSA)的溶液在室温下孵育一小时,随后在4°C条件下,用含3% BSA的PBST缓冲液与一抗共同孵育16小时。孵育结束后,将载玻片置于湿盒中,防止组织干燥。随后将载玻片在室温下自然复温30分钟。
弃去一抗,随后用PBST缓冲液漂洗切片,每次五分钟,共三次。用3% BSA和PBST缓冲液稀释二抗,然后将样品在37摄氏度下与稀释后的二抗孵育一至两小时。
用PBST冲洗样本,每次5分钟,共5次,然后在室温下用50微升DAPI染色5分钟。用抗荧光淬灭封片剂封片,并用指甲油封固盖玻片。对于流式细胞术,将小鼠睾丸收集至6厘米的培养皿中,用手术剪将睾丸剪切成1立方毫米大小的组织块。
然后在37摄氏度下,将睾丸组织置于含有1毫升1%胶原酶的1.5毫升离心管中消化10分钟。为沉淀生精细胞,以1,000 ×g离心5分钟,弃去上清液,随后向样品中加入1毫升0.25%胰蛋白酶-EDTA溶液,在37摄氏度下作用20分钟。之后,再次以1,000 ×g离心5分钟。
弃去上清液,将沉淀的细胞与一毫升 70% 冷乙醇在 4°C 下孵育超过八小时。在 1,000 G 下离心五分钟,收集细胞沉淀,并用 500 微升碘化丙啶(propidium iodide)或 PI 染色液在 37°C 下对生殖细胞染色 30 分钟。孵育后,使用 300 目滤网过滤样品,以去除细胞碎片,并将细胞收集至流式管中,在 4°C 下保存细胞。
使用流式细胞仪在488纳米激发波长下检测荧光信号和光散射。利用ModFit MF LT 32软件分析样品中的DNA含量和光散射情况。在睾丸内注射GSK923295后,由于CENP-E被抑制,生精小管中的生精波发生改变。
然而,对照组中曲细精管内的生精波是规则且有序的。观察发现,CENP-E 抑制后,多条同源染色体未能在赤道板上对齐。此外,CENP-E 抑制导致曲细精管中处于第一次减数分裂中期的精母细胞数量增加。
免疫荧光分析显示,在抑制CENP-E后,每条生精小管中抗联会复合体蛋白3(SYCP3)阳性细胞的数量减少。另一方面,在GSK92395处理组中,每个中期细胞的SYCP3点状信号数量以及每个细胞的SYCP3条状结构均未受到影响。由于CENP-E的抑制,第一次减数分裂中期精母细胞中纺锤体两极之间的距离增加。
代表性分析表明,与对照组相比,GSK923295组中CENP-E抑制导致单倍体细胞比例下降。二倍体细胞和非整倍体细胞的比例在CENP-E抑制后未发生显著变化。相反,GSK923295组中四倍体细胞的比例较对照组升高。
对生精细胞进行的透射电子显微镜分析显示,GSK923295组中生精细胞的排列结构出现紊乱。实验人员在进行腹腔手术和睾丸注射时,应注意注射部位、药物剂量、注射方法以及缝合方法。该技术结合体内电穿孔,针对特定蛋白质和基因编辑工具,可用于有丝分裂和精子发生领域的研究。
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本文介绍了一种通过体内抑制CENP-E来研究减数分裂和精子发生的方法。该研究利用多种检测手段,展示了CENP-E抑制对小鼠精母细胞中染色体排列和基因组稳定性的影响。
该方法可对雄性生殖细胞中染色体分离保真度的机制进行深入研究,这一过程对于基因组稳定性和生殖健康至关重要。通过建立体内CENP-E抑制模型,研究人员能够评估动粒-微管耦合缺陷对减数分裂进程的影响,从而为调控配子发生通路中的靶点验证提供一种发现阶段的研究工具。该方法有助于在评估与不育症及非整倍体风险相关的分子靶点时建立预测性信心,为生殖治疗领域的早期研发决策提供依据。
该方法适用于发现生物学阶段,可在进入先导化合物筛选或临床前药效学研究之前,用于验证参与减数分裂的靶点,支持基于假设的靶点确认。