2021年12月3日
该方案描述了快速高尔基染色法的一种改良方法,可适用于神经系统的任何部分,用于对大鼠海马和内侧前额叶皮层中的神经元进行染色。
尽管高尔基染色技术相对简单,但仍有一些关键步骤较为棘手,若操作不当,将导致细胞无法用于分析。该技术可实现高尔基染色神经元的快速、可重复标记,且由于均值的标准误较小,便于不同实验之间的比较。
该技术最具挑战性的部分是切割冷冻切片机切片,因为组织的一致性和固定状态较为特殊,因此要将切片平整地贴附在载玻片上具有一定难度,需要经过练习才能掌握。首先,在预冷的冷冻切片机持块器上放置少量组织包埋介质。将脑组织块安装到持块器上时,需用手套包裹组织块使其一侧轻微融化,然后将其置于组织介质上。
使用冷冻喷雾处理刀片和组织块。切片时使用防滚板或刷子保持切片平整。在–22 °C条件下,用冷冻切片机切割100 µm厚的切片。
如果可能,使用室温载玻片进行解冻贴片,并迅速将其与切片贴合。或者,将载玻片保留在冰冻切片机中使其保持冷冻状态。用预冷的镊子或冷毛笔转移切片,然后进行解冻贴片。
将三到四个冠状切片贴附于载片上。每切完一片后,用纸巾擦拭刀片。若刀片需要进一步清洁,使用100%乙醇清洗,并在切割下一片前晾干。
将载玻片放入支架中,间隔足够距离以确保溶液能够接触到切片。将切片先后浸入蒸馏水中两次,每次四分钟,然后将其放入高尔基浸渍液中10分钟。分开盖玻片,确保仅将单个盖玻片覆盖在切片上。
在载玻片上加入足量封片剂,然后将盖玻片覆盖在载玻片上。盖好盖玻片后,将载玻片放置于任何非多孔性纸张上干燥3至5天,并在干燥过程中轻微移动载玻片,尤其是在第一天之后,以防止粘连。随后将载玻片转移至载玻片盒中,并最好在观察前干燥至少三周。
为了分析内侧前额叶皮层和海马CA1区锥体神经元的树突棘密度,使用图像分析程序测量树突长度。用手工计数器计数树突上的树突棘,并记录树突长度及树突棘数量。进行分析时,应选择胞体和树突均被浸渍染色、且树突连续并可与邻近细胞清晰区分的神经元。
该图展示了海马体CA1区高尔基染色细胞在低倍和高倍镜下的示例。该图说明了一项实验,在该实验中,经过环境富集后,青春期雄性和雌性大鼠CA1区及内侧前额叶皮层的锥体细胞基底树突棘密度增加。切片过程中保持足够低温具有挑战性,为此我们使用了大量冷冻喷雾以实现这一目的。
随后,将切片转移到载玻片上并使其平整干燥也较为困难。该技术用于观察神经解剖学特征,可单独使用,也可与其他神经解剖学示踪方法结合使用。
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本研究详细介绍了一种改良的快速高尔基染色法,可特异性地对大鼠海马和内侧前额叶皮层中的神经元进行染色。该技术能够有效标记神经元,从而实现对神经解剖学特征的分析。
这种快速高尔基染色方法提供了一种可重复、低变异性的技术,用于可视化与神经精神疾病模型相关的关键脑区中的树突棘密度。该技术能够对海马体和前额叶皮层中的突触结构进行一致的定量分析,从而支持中枢神经系统药物发现项目中的靶点验证和机制去风险化。其与冷冻组织储存的兼容性以及极低的实验间变异性,增强了该方法在纵向临床前研究中的检测可靠性。
该方法适用于从早期靶点验证到临床前表型筛选的整个发现流程,尤其适用于以中枢神经系统为焦点、评估神经可塑性和突触完整性的研究项目。