2022年3月16日
本方案描述了Gja1基因中一个M213L突变,该突变可维持全长连接蛋白43的正常生成,但阻止较小的GJA1-20k内部翻译异构体的翻译。
单个残基替换的难点在于,尽管存在单个残基的差异,仍需高效地对动物进行基因分型。通过特别使用限制性内切酶,只需在常规基于PCR的基因分型流程中增加一个简单、快速且低成本的步骤即可。如果目标序列可被某种限制性内切酶识别(通常情况下均能满足),该方案可适用于任何其他具有点突变的小鼠模型。
用干净的剪刀剪取尾尖一至三毫米,转移至0.2毫升八联PCR管中。按照文稿所述包含尾部样本后,于零下20摄氏度保存,直至提取,最长可保存约一周。每管加入100微升组织裂解液,充分混匀,随后在室温下使用台式小型离心机以2,200 × g离心10秒。
确保尾部样本完全浸入溶液中。将试管放入已设定好组织裂解、灭活和保存程序参数的热循环仪中。若无法立即进行PCR,可将组织裂解液在4°C下保存最多一周。
在新的PCR管中,为每个样本配制PCR反应液,包含5 µL无核酸酶水、0.75 µL 10 µmol/L的正向引物和反向引物,以及7.5 µL PCR预混液。向PCR反应液中加入1 µL先前制备的组织裂解液。充分混匀PCR反应液后,使用台式小型离心机在室温下以2,200 × g离心10秒。
将试管放入程序化热循环仪中。反应完成后,将PCR产物在4摄氏度下保存一至两个月,或在零下20摄氏度下保存约一年。配制酶解溶液,其中包含7 µL无核酸酶水、2 µL 10X浓度的CutSmart缓冲液和1 µL NlaIII限制性内切酶。
若有多个样本,需将各组分按比例混合,并分装为每管10微升。向每管酶溶液中加入10微升先前获得的PCR产物。充分混匀后,用台式小型离心机离心沉淀,操作方法同前。
将试管置于程序化热循环仪或加热块上。孵育后,在低温条件下保存产物。在50毫升1倍浓度的TAE缓冲液中加入0.75克琼脂糖。
将琼脂糖在微波炉中加热并混匀,直至完全溶解。冷却后,加入5 µL DNA染料并轻轻混匀。将25 mL琼脂糖凝胶倒入凝胶模具中,静置使其完全凝固。
将10微升消化后的PCR产物加入加样孔中。以100伏电压电泳35分钟。在紫外光下成像观察琼脂糖凝胶。
使用消化后的PCR产物进行琼脂糖凝胶电泳,在每种基因型中均观察到多条不同大小的条带,其中野生型有两条条带,杂合子有三条条带,纯合子有一条条带。通过囊胚注射检测分析,每微升含有50纳克供体质粒的注射组成功率为76.9%,每微升含有25纳克供体质粒的注射组成功率为25%。最后,将每微升50纳克的供体质粒经乙醇沉淀后注射,获得的 founder 动物成功率为50%。
通过乙醇沉淀法纯化寡核苷酸供体可在保持高效基因组编辑的同时降低毒性。操作过程中需谨慎处理,并加入少量试剂,这一点至关重要。确保试剂正确添加并充分混匀。
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本方案介绍了一种对Gja1基因中具有单个M213L突变的动物进行基因分型的方法,该突变可导致全长Connexin43的表达,同时阻止较小的GJA1-20k亚型蛋白的翻译。该方法强调了在基于PCR的基因分型中使用限制性内切酶的高效性和成本效益。
该方案可实现对小鼠模型中点突变的精确基因分型,支持需要解析亚型特异性蛋白表达的靶点验证研究。通过消除干扰性的截短亚型,同时保留全长蛋白功能,该方法增强了早期发现阶段的机制性风险排除能力。该策略提高了针对连接蛋白43(Connexin 43)生物学及其相关缝隙连接通路的治疗假设的预测可信度。
该方法适用于从早期靶点验证到临床前药效测试的整个发现过程,特别是在需要解析亚型特异性蛋白功能时尤为适用。