2022年2月11日
TGT 表面是一种用于研究生长因子与整合素串扰的创新平台。该平台采用灵活的探针设计、特异性的黏附配体以及对刺激条件的精确调控,可对 EGFR 与整合素之间的相互作用进行可靠的定量评估。研究结果表明,EGFR 作为一种“机械组织者”,能够调节整合素的力学特性,影响黏着斑的组装和细胞铺展。
该方案的重要性在于采用了结构简单的TGT传感器平台,用于研究EGFR-整合素串扰及其对细胞力学力的影响。Rao提出该方案旨在探究表皮生长因子(EGF)依赖性的细胞力学调控机制。该方案可适用于不同的配体、细胞类型、刺激模式,并可与具有不同张力阈值的TGT传感器联用。
表面合成最初可能看起来令人望而生畏。关键在于做好充分准备并有条不紊,通过使用试剂制备和计算的清单,精确执行复杂的步骤。在第一天,将最多八片25毫米的玻璃盖玻片放入聚四氟乙烯架中。
将支架放入盛有40毫升纯乙醇的50毫升硼硅酸盐玻璃烧杯中,在室温下以35千赫的运行频率超声处理10至15分钟。取一个50毫升烧杯,加入40毫升新配制的piranha溶液,该溶液由浓硫酸与过氧化氢按3:1的比例在Pyrex烧杯中混合,并用玻璃移液管搅拌制得。
将载玻片架转移至烧杯中,于通风橱内室温孵育30分钟,以蚀刻载玻片表面。蚀刻完成后,用镊子将载玻片架转移至盛有超纯水的烧杯中。目视检查载玻片,确保表面清洁,无任何图案或灰尘颗粒附着于玻璃表面。
将盖玻片架转移至含有200度乙醇的烧杯中,清洗两次,每次15秒,以使表面与有机溶剂达到平衡。将盖玻片架转入含有3% APTES的200度乙醇溶液中,在室温下孵育1小时,以对盖玻片进行硅烷化处理。随后将架子浸入装有干净的200度乙醇溶液的烧杯中。
使用低出口压力的氮气吹干盖玻片。将盖玻片放入一个内铺有平展石蜡膜的10厘米聚苯乙烯培养皿中。取四片置于石蜡膜上的盖玻片,每片上加入100 µL浓度为2 mg/mL的NHS-生物素DMSO溶液。
将另外四片盖玻片叠放成三明治结构,其中两片盖玻片相对放置,中间夹有功能化溶液。第二天,将培养皿从4°C取出,分离叠放的盖玻片。分离三明治结构时,避免刮伤或损坏功能化表面。
然后,将盖玻片在支架中放置,使涂层表面相对。用氮气吹干。将盖玻片放入一个新的培养皿中,培养皿内放置有封口膜。
向每个盖玻片中加入 800 微升含 0.1% 牛血清白蛋白的 1× PBS 溶液。将盖玻片在室温下孵育 30 分钟,以钝化表面并阻断后续功能化试剂的非特异性结合。为功能化盖玻片,加入 800 微升浓度为每毫升 1 微克的链霉亲和素 PBS 缓冲液(1× PBS),在室温下孵育 45 至 60 分钟。
使用PCR管和PCR仪组装TGT探针。孵育后,用1×PBS将盖玻片洗涤三次。向四片盖玻片上各加入100微升预组装的TGT探针,并将剩余四片功能化面向下的盖玻片覆盖其上,形成夹心结构。
用铝箔覆盖。孵育结束后,将夹心结构分开,并用1×PBS洗涤盖玻片三次。小心地将盖玻片组装到预先清洁的成像腔室中。
为了研究表皮生长因子刺激对Cos-7细胞力学特性、黏附及细胞铺展的影响,使用0.05%胰蛋白酶-EDTA处理Cos-7细胞,消化2分钟。用HBSS洗涤并以800 ×g离心5分钟以中和胰蛋白酶。将细胞以每孔40,000个细胞的密度接种于组装好的TGT表面,培养基为添加50纳克/毫升EGF的DMEM,或不含EGF的DMEM。
孵育结束后,用1× PBS洗涤细胞三次。在室温下,用2毫升4%多聚甲醛固定12分钟。在室温下,用1× PBS每隔5分钟洗涤盖玻片一次,共洗涤五次。
可选步骤:将盖玻片在含有50毫摩尔氯化铵的1×PBS中,37摄氏度孵育30分钟。加入缓冲液A,将带有盖玻片的成像腔室置于湿盒中,在37摄氏度孵育30分钟,以封闭并通透细胞。
用封闭缓冲液按1:250稀释倍数稀释一抗paxillin抗体。每张盖玻片加入200 µL一抗溶液,37°C孵育2小时。同时,每张盖玻片使用200 µL封闭缓冲液,其中包含按1:800稀释的双标记山羊抗兔二抗和按1:400稀释的双标记鬼笔环肽,对细胞进行标记。
用 1× PBS 每隔五分钟清洗表面五次。首先,在物镜上添加油,清洁样品腔盖玻片底部,并将样品放置在载物台上。聚焦到一个细胞,并启用完美聚焦功能。
通过关闭并居中落射照明孔径光阑来对RICM进行对准。将488纳米激光聚焦到房间天花板上的一个小光斑,并逐渐增大入射角直至超过临界角,同时以实时模式在相机上监测荧光信号。当入射角超过临界角时,可观察到背景荧光显著降低,并出现一个清晰的焦平面。
使用RICM的相机实时模式识别用于成像的细胞。依次采集肌动蛋白在488纳米激发下的RICM和TIRF图像、整合素张力在561纳米激发下的图像以及paxillin在647纳米激发下的图像。采用200毫秒的曝光时间顺序获取图像。
更换盖玻片,重新对焦并重复操作。将Cos-7细胞接种于该TGT表面,有或无EGF刺激,以研究EGFR在配体刺激下激活对整合素力学的影响。若整合素结合配体并施加超过探针总张力阈值的力,则DNA双链将分离,从而产生荧光。
任何未被机械力断裂的TGT探针将保持非荧光状态。细胞在TGT表面有或无EGF的情况下孵育60分钟,随后固定并进行免疫染色,以显示黏着斑的分布及细胞骨架的排列情况。在RICM图像中,与无刺激相比,EGF刺激显著增强了Cos-7细胞在56皮牛顿TGT表面上的铺展。
经 EGF 刺激后,细胞呈现更趋圆形的形态,代表 Cos-7 细胞的铺展与生长。在张力荧光图像中也可观察到,EGF 刺激下开放探针的荧光信号更强。与未刺激组相比,EGF 刺激下开放探针的总荧光强度(与开放探针数量成正比)显著升高。
始终注意盖玻片的方向,确保功能化表面朝上。分离三明治结构时动作要轻柔,避免划伤或损坏表面。在完成表面合成后,可检测调控细胞黏附或机械转导的胞质蛋白。
这有助于鉴定参与调控细胞质膜上细胞力学过程的下游信号分子。
本研究通过一种新型的TGT传感器平台,探讨了表皮生长因子受体(EGFR)与整合素之间的相互作用。通过将TGT传感器适配于不同条件,该研究揭示了EGFR作为机械组织者的作用,影响整合素的力学特性,进而调控细胞黏附与铺展过程。
张力传感器系链(TGT)探针可实现对生长因子信号调控的整合素介导机械力的定量测量,填补了由力学生物学驱动的靶点验证中的关键空白。该平台通过将受体串扰与单细胞分辨率下的功能性黏附结果相关联,可在早期发现阶段提供可预测的置信度。TGT具备调节力阈值和配体环境的能力,因而可作为一种可重复使用的工具,用于机制层面的风险降低和项目筛选。
TGT探针通过实现假设验证、通路阐明以及受体力学的定量分析,融入从发现到临床前研究的连续过程。