2022年7月26日
本方案介绍了配备光照系统的透射电子显微镜(TEM)的改造方法、液体样品池的制备以及 原位 细菌细胞与光敏剂在光照下相互作用的透射电子显微镜观察。同时讨论了样品制备方法、电子束损伤及成像技术。
该方案展示了如何结合液体池透射电子显微镜(liquid cell TEM)与光照,以观察在光照下被光敏剂包封的细菌所发生的结构变化。该技术的主要优势在于其简便性。该方案无需复杂的样品制备过程,且能够实现细菌与光敏剂溶液的充分包封。
首先,通过将光纤连接到物镜顶部的镜筒上,对透射电子显微镜进行改装。在物镜与聚光镜之间预留几厘米的空间,并留出一个用于配件的空闲插槽。将两个未经处理的、表面覆盖无定形碳的透射电镜载网放置在两把交叉的镊子之间,使碳膜面朝上。
尽可能靠近边缘持握载网。取 4 µL 菌液滴加至其中一个载网上。样品的光密度值必须在 5 到 10 的范围内。
等待60秒,然后用滤纸小心吸去液体。在此过程中,尽量将液体均匀扩散至整个网格表面。在同一网格上加入4 µL光敏剂。
五秒后,吸去液体,仅在基底上留下极薄的一层液体。迅速将干燥的载网放置在覆盖有液体的载网上方。
轻轻将上层网格移至第二层网格的边缘,用镊子夹住边缘处的基底并挤压。仔细重复挤压操作。将液滴留在镊子间的细胞中静置一分钟。
在完成制备后立即将样品插入透射电子显微镜(TEM)样品 holder 中。将样品放入显微镜后,以低倍模式开始观察,以寻找合适的观察区域。观察过程中应尽可能保持电子剂量最低。
延长曝光时间。在适当放大倍数下,使用延长的曝光时间找到被液体包围的细胞,并立即采集第一张图像。保持电子剂量恒定,每隔30秒采集一次图像,以观察变化。
仔细检查图像,并计算与细胞中首次出现可见变化相对应的总电子剂量。在开始实验之前,通过调节电流值来设定激光光强。将样品插入显微镜并找到观察区域。
在开始照射样品之前,先捕获细胞的首张图像,并使用束 blanker 关闭电子束,以避免电子辐照的影响。开启激光器。起始照射时间应较短,因为激光光强相对较高。
此后,关闭光源。关闭电子束快门,并立即捕获图像。如果可能,使用自动算法仅在拍摄图像所需的时间内对样品进行曝光。
仔细测量电子辐照时间,以计算成像所用的电子剂量。观察到在光照一分钟之后,光敏剂产生的活性氧导致细胞外层出现明显降解。进一步的光照使这些变化更加明显。
在低倍镜下,液体充足的合适观察区域很容易找到,这些区域看起来较暗且模糊。被液体覆盖的细菌比干燥的细菌更不易观察,但仍可分辨。成像时观察液体边界很有帮助,其移动很容易被检测到,这表明所选区域可能不合适且不稳定。
观察过程中的另一个问题是水分蒸发以及溶液在样品某些随机区域(包括细菌周围区域)发生沉淀。细菌的封装也可使用石墨烯和氮化硅膜来完成。虽然样品制备更为困难,但液体池的稳定性会更好。
该方法可用于观察液体上的光诱导反应。例如,光对金属材料、光诱导催化剂以及光化学反应的影响。
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本实验方案概述了采用透射电子显微镜(TEM)结合光照处理研究细菌与光敏剂相互作用的方法。重点强调了该方法的简便性以及对细菌的有效包封。
光诱导原位透射电子显微镜(TEM)能够在可控光照条件下直接可视化液体-软物质相互作用,有助于在早期发现阶段降低机制性风险。该技术对于区分光驱动效应与电子束诱导变化至关重要,可提高光动力学和催化研究中的预测可靠性。该方法简化了对生物和材料动态响应的评估,为处于发现研究与转化研究交叉领域的项目决策提供依据。
该方法通过实现对液体系统中光诱导反应的假设驱动成像,融入了从发现到临床前研究的连续过程。