2025年1月24日
纳米凝胶是一种用于递送生物制剂的优良且多功能的纳米颗粒平台。采用一步交联共纳米聚合策略,在水相条件下合成了能够包载基于蛋白质的有效成分的响应性聚乙二醇基聚合物纳米凝胶。本文介绍了这些新型纳米颗粒的最佳制备方法及其表征过程。
本方案通过一步交联共聚技术,在温和的水相反应条件下,实现了小于100纳米的载蛋白纳米凝胶的合成,代表了该领域的重要进展。该技术的主要优势在于能够在温和条件下合成载蛋白纳米凝胶,避免使用剧烈的有机溶剂和高温,从而保持生物活性成分的完整性。首先,使用过滤后的去离子水清洗玻璃器皿。
为干燥玻璃器皿,将一个牢固的喷嘴连接到通风橱侧面的压缩空气出口。用手握紧小瓶,将喷嘴插入瓶内,打开压缩空气,释放出受控的气流。接着,取一个10毫升玻璃小瓶,加入去离子水,并用橡胶隔垫密封。
为了去除水中的氧气,先用氮气充满一个气球,并在气球上安装一根针头。将气球置于隔膜上方,刺穿橡胶隔膜以使氮气流入。同时,在烧瓶上安装一根排气针,以保持持续稳定的氮气流。
接下来,将 BSA 或 Cy7 标记的 BSA 溶解于脱氧去离子水中。然后将该溶液加入一个洁净的 10 毫升玻璃小瓶中。向烧瓶中加入 AETC 溶液,并用另一块橡胶隔垫密封。
将丙烯酰胺和脱氧去离子水溶解后,加入小瓶中的混合物中。然后将二硫交联剂溶解于去离子水中,并将其加入小瓶中的混合物。用氮气冲洗该混合物20分钟。
随后,将SDS溶解于脱氧去离子水中。使用经氮气冲洗的注射器将其加入混合物中。接着,向反应混合物中加入TEMED。
在持续通入氮气的条件下,使混合物脱氧三分钟。将过硫酸铵溶于1毫升脱氧去离子水中,然后加入反应混合物中。随后在氮气氛围下密封烧瓶,并在室温下搅拌混合物3小时30分钟。
为了终止反应,从烧瓶上移除密封盖。当混合物变为澄清且无色时,反应即告完成。为了纯化纳米凝胶,将反应混合物加入一个15毫升的离心过滤装置中。
用去离子水填充离心单元,并进行离心以去除未反应的化学物质或未包封的载荷。在离心单元中加入 2 mL 去离子水以稀释纳米凝胶样品。将最终样品储存在 2 至 8 °C 条件下,以防止包封的蛋白质降解。
取一个比色皿或一次性折叠毛细管池用于分析。先用滤过的去离子水清洗,再用压缩空气吹扫,以去除任何较大的灰尘颗粒。然后向比色皿中加入50至100微升样品,并用750至1,000微升滤过的去离子水稀释。
将比色皿插入DLS仪器时,打开样品室盖,捏住比色皿顶部边缘,避免在光学窗口留下指纹。将比色皿正确对准仪器的光路位置。然后关闭样品室,以隔绝环境光。
使用DLS仪器上的相关软件开始粒径测量。测量完成后,选择与样品相关的结果,包括Z均粒径、平均多分散系数(PI)、每分钟计数率、zeta电位及相关图形。确认相关函数显示平滑的S形曲线,表明样品均一。
分析完成后,小心地从DLS仪器中取出比色皿。观察到与BSA蛋白相关的峰强度逐渐降低,表明蛋白已被包封在纳米凝胶结构内部。对载有Cy7标记BSA的纳米凝胶进行理化表征,结果显示在50至100纳米处出现单一明确的峰。
然而,空载纳米凝胶表现出不一致且较大的粒径。在48小时内,多达86%的Cy7标记BSA被释放。另一方面,未添加谷胱甘肽的对照实验仅导致15%的蛋白质释放。
傅里叶变换红外光谱分析显示,在纳米凝胶合成过程中分离出的牛血清白蛋白(BSA)以及经谷胱甘肽孵育后的BSA均保持了其结构完整性,表现为在1,662 cm⁻¹处出现代表完整β转角的特征峰。然而,储存30天后的纳米凝胶中提取的BSA在1,613 cm⁻¹处出现新峰,提示存在分子间β片层结构及蛋白质聚集现象。圆二色光谱显示其光谱特征与天然BSA相似,表明α螺旋结构得以保留。
然而,30天后分离的BSA特征峰出现轻微畸变,表明存在一定程度的聚集。保持持续的氮气流对于防止氧气抑制自由基聚合反应至关重要。此外,引发体系各组分需迅速加入,以确保合成成功。
经过该步骤后,可通过动态光散射(DLS)、透射电子显微镜(TEM)以及与生理还原剂谷胱甘肽孵育来评估氧化还原响应性,进一步表征纳米凝胶的粒径分布、形态及载药释放动力学。
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本文介绍了一种利用一步交联与共聚技术合成载蛋白纳米凝胶的新方法。该方法可在温和的水相条件下制备粒径小于100纳米的纳米凝胶,从而保持生物负载物的完整性。
通过水相一步交联法合成的刺激响应型纳米凝胶可在温和条件下实现蛋白质治疗药物的包封与可控释放,直接应对早期生物制药研发中有效载荷完整性的挑战。该平台有助于提高生物大分子递送的可预测性,并降低从发现到临床前阶段制剂策略的风险。该方法与敏感生物分子的良好相容性,使其成为适用于全产品线转化研究的可重复使用技术。
这种纳米凝胶合成方法贯穿从早期发现到先导物识别及临床前制剂的全过程,支持对生物制剂的假设验证和递送优化。