Name: 用于清醒、头部固定大鼠神经成像的头部植入物 (视频) | JoVE Journal
Uploaded: 2022-09-07T13:40:00.000+00:00
Duration: 7 min 1 s
Description: 了解清醒头部固定大鼠神经成像方法，使用轻量化头部植入物进行长期慢性成像研究。该技术可消除麻醉剂干扰，使功能成像信号强度提高140倍，为神经科学研究提供更可靠的数据。

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感谢Clara Jones、James Stirwalt、Linh Hoang、Young Joon Ha和Amirsoheil Zareh在大鼠训练及吊带制备过程中的帮助。本研究由美国国立卫生研究院（NIH，资助号：NS119852）和Leducq基金会（资助号：15CVD02）提供资金支持。

所有操作均符合美国国立卫生研究院指南，并经加州大学欧文分校动物护理和使用委员会批准。本研究使用了七只雄性大鼠和一只雌性大鼠（Sprague-Dawley品系，体重：185–350 g）。研究结束后，采用过量二氧化碳处死大鼠。
1. 不同组分的设计
<ol>
	<li>头植入物的设计：
	<ol>
		<li>使用CAD软件设计头植入物（图1C），并将其设计为可对前囟后方、靠近中线且以体感皮层为中心的区域进行成像。确保头植入物在颅骨上覆盖距离成像区域0.9 mm至1.9 mm的范围。</li>
		<li>仅使用三颗螺钉将头植入物固定在大鼠颅骨上。所有螺钉孔应设计在成像半球对侧半球的中线对侧，以保持在中线的相反一侧。</li>
		<li>在头植入物的上部设置一根内部中空的横杆，以便通过导线将头帽固定在头植入物上，如图1D所示。</li>
	</ol>
	</li>
	<li>头帽的设计：
	<ol>
		<li>确保头帽完全覆盖成像区域，并保护其免受任何形式的创伤，如图1A、B所示。为头帽添加弧度，使其与头部形状贴合，同时不影响动物在标准丰富化笼具中的日常活动。</li>
		<li>将头帽内侧切割成较宽的矩形，以便头植入物的上部可嵌入其中，如图1E所示。垂直于该矩形，再切割两个矩形区域，用于将头帽固定在头植入物上。</li>
		<li>将一根导线穿过头植入物上方的中空横杆，以将头帽固定在大鼠头部，如图1E-G所示。以相同方式穿入第二根导线。 
		注：这些导线可使用钳子或镊子轻松移除。3D打印文件（文件格式：STL）作为补充文件1和补充文件2提供。</li>
	</ol>
	</li>
	<li>头架的设计：
	<ol>
		<li>设计头架时，使其一个切口部分能够穿过头植入物的上部横杆，并通过夹具固定。</li>
		<li>将另一个切口部分倾斜，以增强固定大鼠头部的稳定性，使对侧完全暴露以便成像。在本研究中，使用剪钳切割钢板以制作头架（图1H、I）。 
		注：该部件也可采用3D打印方式制作。</li>
	</ol>
	</li>
</ol>
2. 大鼠初始训练
<ol>
	<li>将大鼠置于笼中，在动物房环境中适应 2-3 天。</li>
	<li>在安静的房间内开始对大鼠进行抓取训练。打开笼子，实验人员将手放入笼内靠近大鼠处，持续 15-20 分钟，使大鼠逐渐习惯。</li>
	<li>当大鼠不再受惊或躲避实验人员的手，并表现出平静状态时，可轻柔地将其抓起进行操作。在吊带训练前，每天抓取操作 30-45 分钟。</li>
</ol>
3. 悬吊训练
<ol>
	<li>在植入头部装置和头帽手术前，至少对大鼠进行2-3天的吊带训练。</li>
	<li>按照图2A所示布置吊带装置，并使用乙醇擦拭清洁吊带装置。 
	注意：所有吊带均为手工缝制，底部或两侧均采用网状材料，如图2A、B所示。</li>
	<li>进行吊带训练时，使用4%异氟烷诱导麻醉，1%维持麻醉，直至大鼠后肢无夹趾反射。</li>
	<li>在异氟烷麻醉下，将大鼠置于一块尺寸为20 cm × 8 cm（长×宽）的柔性塑料片上，其中10 cm × 8 cm的区域完全覆盖有尼龙搭扣的柔软部分。 
	注意：对大鼠进行吊带训练时实施麻醉为可选步骤，主要用于减轻其应激和焦虑。</li>
	<li>训练的前两天，将大鼠头部从婴儿袜（尺寸0-3个月）末端剪开的小孔中穿出，身体 snug 地套入袜中。</li>
	<li>用一小块吸水垫包裹大鼠下半身，以保持干燥并收集排泄物。</li>
	<li>用一块透气棉布（尺寸：25 cm × 25 cm）将大鼠包裹起来，并将其放置在粘有尼龙搭扣条的塑料片上。</li>
	<li>使用宽0.5 cm的尼龙搭扣条，以彼此间隔3-6 mm的距离进一步将大鼠固定在塑料片上。</li>
	<li>将大鼠稳妥固定在吊带中，撤除气体麻醉，让大鼠在吊带中恢复清醒。</li>
	<li>当大鼠开始运动胡须时，每隔10-15分钟给予几滴10%蔗糖溶液作为奖励。</li>
	<li>随机向大鼠呈现成像过程中将使用的感官刺激（此处为胡须刺激，每15-25分钟一次），使其适应这些感官刺激。在随机时间间隔手动刺激其胡须。</li>
	<li>如图2C所示，第1天训练1小时，第2天训练2小时，第3天训练3小时。</li>
</ol>
4. 术前准备
<ol>
	<li>使用3D打印机打印头部植入物和头帽（图1）。</li>
	<li>将所有手术器械和头部组件（植入物和头帽）浸入Metricide28&#160;消毒剂中10小时进行灭菌。手术前用无菌水彻底冲洗器械。</li>
	<li>用4%异氟烷暴露大鼠，随后维持在1%-2%异氟烷浓度，直至后肢足底夹捏反射消失。&#160;本手术可采用多种麻醉方式，例如异氟烷、戊巴比妥钠或氯胺酮-赛拉嗪组合。</li>
	<li>肌肉注射阿托品（0.05 mg/kg），以减少黏液分泌，辅助呼吸。</li>
	<li>使用修毛器从两眼之间至耳后区域，沿中线为中心剃除大鼠头部约5 mm范围的毛发。</li>
	<li>将脉搏血氧仪和心率监测探头固定于大鼠后肢，持续监测血氧饱和度和心率。</li>
	<li>使用聚维酮碘和70%酒精棉片交替擦拭大鼠头部及周围区域，共擦拭三次。</li>
	<li>将大鼠固定于立体定位仪中。</li>
	<li>插入凡士林润滑的直肠探头，测量大鼠体温，并通过加热毯的反馈系统维持体温，防止麻醉后低体温。</li>
	<li>在手术部位皮下注射盐酸利多卡因局部麻醉剂，浓度为20 mg/mL，剂量为0.07 mg/kg ±0.2体重。</li>
	<li>在双眼涂抹眼用软膏，防止角膜干燥。</li>
	<li>在手术区域皮下注射2%局部麻醉剂。</li>
	<li>皮下注射3 mL室温乳酸林格液，以预防脱水并在手术期间提供营养支持。</li>
</ol>
5. 手术
<ol>
	<li>使用锋利的手术剪在头部中线中心位置去除手术区域的皮肤（直径4 mm），并在头部颞区耳眼之间去除左侧体感皮层上方的部分皮肤（约2 mm直径）。</li>
	<li>使用手术刀去除下方的皮肤（骨膜）组织以暴露颅骨。用无菌棉纱布清洁颅骨。</li>
	<li>剥离或切除颞肌，以暴露成像区域所需的大小[本研究为7.5 mm × 7.5 mm]。&#160;</li>
	<li>暴露对侧半球的颅骨以安装头件。将头件放置在颅骨上，以确定头件固定螺钉的位置，如图2D-F所示。</li>
	<li>使用印度墨水和钻头1在颅骨上标记螺钉钻孔位置。使用牙科钻头3钻出螺钉用的骨孔，并将头件用螺钉固定。</li>
	<li>用无菌纱布干燥颅骨。在头件周围及下方涂抹一层薄薄的组织粘合剂，将其粘附于颅骨上。再涂布一层牙科水泥以进一步加固头件，并让水泥干燥2–3分钟。 
	注：使用组织粘合剂结合牙科水泥可确保牢固固定8。</li>
	<li>使用牙科钻头3，在颅骨左侧、前囟后方且偏离中线的区域，磨薄一块7.5 mm × 7.5 mm的区域。将颅骨磨薄至约50 µm，如图3A所示。</li>
	<li>在手术区域涂抹局部抗生素软膏，然后覆盖一层薄的硅橡胶以保护磨薄的颅骨，如图3B所示。使用头帽覆盖手术区域，如图3C所示。通过两根细金属丝穿过头件和头帽将其固定，如图3D、E所示。再涂抹硅橡胶覆盖头帽和颅骨，以进一步稳定大鼠头部的头帽，如图3F所示。 
	注：硅橡胶为磨薄的颅骨提供额外保护。</li>
	<li>皮下注射氟尼辛葡甲胺（2.5 mg/kg）以控制大鼠的疼痛和炎症。&#160;为预防感染，腹腔注射Enrosite抗生素恩诺沙星（22.7 mg/mL，10 mg/kg ± 0.01）。</li>
	<li>将大鼠转移至恢复室，使用加热毯和加热灯帮助维持其体温。持续监测大鼠，直至其恢复意识并能维持胸卧位。</li>
	<li>待大鼠完全恢复后，将其放回单独的笼子中。</li>
	<li>术后连续3天，每天两次给予氟尼辛和布托啡诺以减轻炎症和疼痛，并给予Enrosite以预防感染。</li>
</ol>
6. 清醒状态成像
<ol>
	<li>使用4%异氟烷进行诱导麻醉，当无后肢足垫夹捏反射时，以1%异氟烷维持麻醉。皮下注射乙酰丙嗪（0.3–0.5 mg/kg）。 
	注意：该浓度的乙酰丙嗪低于轻度镇静水平，仅有助于在整个成像过程中保持大鼠镇静。</li>
	<li>使用定制的维可牢尼龙搭扣条带，将大鼠固定在训练过程中使用的塑料板上。用吸水垫包裹大鼠下半身，并将其稳妥地置于吊带中。</li>
	<li>移除硅橡胶。通过拆除固定钢丝取下头部帽。将头架固定在头颅植入物中，如图2G所示。</li>
	<li>将头架锁紧在夹具中，如图2H、I所示。</li>
	<li>停止气体麻醉。用生理盐水冲洗成像区域3次，并用湿纱布清洁。干燥成像区域，并使用凡士林在成像区域周围构建一个围堰。将围堰内充满灭菌生理盐水，并覆盖盖玻片（图2E）。</li>
	<li>有关内在信号光学成像的采集流程、胡须刺激方案以及数据分析与呈现方法，请参见先前详细讨论的文献6,7。</li>
	<li>在整个实验过程中，监测大鼠是否出现躁动和不安迹象；可通过使用软布或纱布覆盖大鼠眼睛进一步减轻此类行为（可选）。</li>
</ol>

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</ol>

作者声明无利益冲突。

使用清醒状态下头部固定的的大鼠进行成像在操作便捷性和可定制性方面具有诸多优势。定制设计的吊带可通过透气的网状材料将大鼠包裹，从而避免将动物长时间封闭在密闭的塑料固定装置中10,11。在整个连续成像过程中，通过使用远低于大鼠轻度镇静剂量的乙酰丙嗪（1.0–2.5 mg/kg），可使大鼠保持镇静且无应激状态12。为了保持大鼠稳定并进一步消除成像过程中的运动伪影，采用魔术贴条带进行固定。魔术贴条带之间的间距设置为3–6 mm，以避免长时间束缚导致的身体过度受限。大鼠在幼龄阶段即开始接受吊带训练和适应，以确保其在准备阶段和数据采集期间能够安静、舒适地静卧于吊带中。根据初步实验结果，体重约为150–175 g的幼龄大鼠相比成年大鼠更易于且更快完成训练。
大鼠头部的植入物重量仅为0.174 g，可拆卸的头帽重量为1.483 g。植入物覆盖单侧半球0.5 cm至1.5 cm的区域，使对侧半球完全可用于神经影像学检查。头帽的尺寸可确保...

大多数基础性、临床前及转化神经影像学研究的数据均来自麻醉状态下的动物1,2。麻醉虽便于实验操作，但会持续影响大脑和机体的代谢、血压及心率3。麻醉剂的种类、给药持续时间及给药途径会引入混杂变量，可能影响研究结果的可重复性及转化应用的成功率4。清醒状态下固定头部的大鼠神经影像学研究面临的主要瓶颈在于，需要在整个准备过程和数据采集过程中保持大鼠静止且镇静。微小的运动即可产生不必要的运动伪影，从而对数据分析与结果解释产生不利影响。
一种利用定制吊带、三维（3D）打印的颅骨植入物、头帽和头架，在清醒且头部固定的的大鼠中进行神经影像学研究的新模型已被开发出来，该模型具有多项优势，便于实验操作。该3D颅骨植入物重量轻，仅覆盖固定所需的颅骨小部分区域。3D打印的颅骨植入物和头帽均使用计算机辅助设计（CAD）软件进行设计。有关胡须刺激、数据采集、数据分析以及在麻醉大鼠中获得的结果的详细实验方案已在先前的研究中进行了描述5,6,7。

<table><tbody><tr><td>大鼠</td><td>查尔斯河实验室</td><td>斯普拉格-道利</td><td></td></tr><tr><td>异氟烷</td><td>Pivetal</td><td>21295098</td><td>全身麻醉药</td></tr><tr><td>盐酸利多卡因2%注射液</td><td>凤凰</td><td>L-2000-04</td><td>局部麻醉药</td></tr><tr><td>硫酸阿托品注射液</td><td>Vedco</td><td>5098907512</td><td>呼吸支持</td></tr><tr><td>乳酸林格氏注射液</td><td>Vedco</td><td>50989088317</td><td></td></tr><tr><td>氟尼辛注射液</td><td>Vedco</td><td>6064408670</td><td>疼痛管理</td></tr><tr><td>恩诺沙星注射液（恩诺沙星 2.27%）</td><td>VetOne</td><td>501084</td><td>避免感染</td></tr><tr><td>PromAce 注射液（马来酸乙酰丙嗪）</td><td>勃林格殷格翰</td><td>136059</td><td></td></tr><tr><td>Animax 软膏</td><td>德克拉动物保健产品</td><td>122-75</td><td>每克含制霉菌素1000单位、硫酸新霉素2.5mg、硫链丝菌素2500单位和曲安奈德1mg</td></tr><tr><td>Puralube 眼科软膏</td><td>德克拉动物保健产品</td><td>211-38</td><td></td></tr><tr><td>聚维酮碘（PVP-I）消毒垫</td><td>Medline</td><td>MDS093917</td><td>聚维酮碘通用名</td></tr><tr><td>异丙醇擦拭棉片</td><td>BD</td><td>326895</td><td></td></tr><tr><td>Vetbond 组织粘合剂</td><td>3M</td><td>1469SB</td><td></td></tr><tr><td>钻头（牙科车针），标准牙科用碳化钨</td><td>SS White 磨头</td><td>14829</td><td>#3 钻头</td></tr><tr><td>螺丝，00-90 × 1/8，平头，不锈钢</td><td>J.I. Morris</td><td>F0090CE125</td><td>锚定螺钉</td></tr><tr><td>立体定位系统</td><td>Kopf Instruments</td><td>1430</td><td></td></tr><tr><td>恒温加热毯</td><td>哈佛仪器</td><td>50-7220-F</td><td></td></tr><tr><td>脉搏血氧仪 &amp;和心率监测器</td><td>Kent Scientific</td><td>MouseStat Jr.</td><td></td></tr><tr><td>凡士林</td><td>Fisher Scientific</td><td>P66-1LB</td><td>凡士林通用型</td></tr><tr><td>裸铜线</td><td>Fisher Scientific</td><td>15-545-2C</td><td>20 号</td></tr><tr><td>Teets感冒冲剂粉末</td><td>Pearson Dental</td><td>C73-0054&amp;nbsp;</td><td>活性成分：甲基丙烯酸甲酯</td></tr><tr><td>Teets感冒灵口服液</td><td>Pearson Dental</td><td>C73-0078&amp;nbsp;</td><td>活性成分：甲基丙烯酸甲酯</td></tr><tr><td>硅胶模具橡胶</td><td>Smooth-On</td><td>身体双倍快速</td><td>硅聚合物</td></tr><tr><td>MetriCide 28（杀菌剂）</td><td>Metrex</td><td>10月5日</td><td></td></tr><tr><td>印度墨水，黑色</td><td>Pelikan</td><td>301051</td><td></td></tr><tr><td>牙科钻头</td><td>NSK Dental</td><td>Ultimate XL-F</td><td></td></tr><tr><td>3D 打印机</td><td>Prusa Research</td><td>i3 MK3S+</td><td></td></tr><tr><td>缝合固定装置</td><td>魔术贴</td><td>90030</td><td></td></tr><tr><td>宠物筛查实用织物</td><td>乔安</td><td>10173334</td><td>网状材料</td></tr><tr><td>钻头（牙科车针），标准牙科碳化钨钻头</td><td>SS White 磨头</td><td>14829</td><td>#1 bur</td></tr></tbody></table>

清醒固定头部大鼠神经成像用头部植入装置

Head Implants for the Neuroimaging of Awake, Head-Fixed Rats

麻醉剂在临床前和基础科学研究中常用，但会对大脑的代谢、神经元和血管功能产生抑制作用，可能对神经生理学研究结果产生不利影响。使用清醒动物进行研究具有优势，但主要挑战在于如何使动物保持安静和静止，以最大限度地减少数据采集过程中的运动伪影。清醒状态下成像在体型较小的啮齿类动物（如小鼠）中较为常见，但在大鼠中仍较少见，因为大鼠体型更大、力量更强，且在成像所需的较长时间内更倾向于抗拒运动限制和头部固定。本文介绍了一种针对清醒、头部固定的 rats 的新型神经成像模型，该模型采用定制的手工缝制吊带、3D打印的头部植入物、头帽和头架。单次单根胡须刺激试验所获得的结果表明，诱发的功能性反应强度有所增强。与麻醉状态下的大鼠相比，从清醒、头部固定的大鼠获取诱发功能性反应的速度更快，结果可靠、可重复，并可用于多次纵向研究。

单次试验中麻醉大鼠的代表性光学成像信号以及清醒大鼠40次试验的叠加反应结果如（图4）所示。清醒大鼠单根胡须刺激所产生的信号强度可在比麻醉大鼠更高的阈值下被观察到，表明清醒动物的信号更强。实验中以5 Hz频率对大鼠C2胡须刺激1秒，功能反应以相对于基线的信号变化率表示。图像中较暗的区域（低于负阈值）代表主要的神经元活动区域，而较亮的白色区域（高于正阈值）则显示刺激引发的氧合血红蛋白反应9。图像方位已对齐，从左至右为头端到尾端（C），从上至下为内侧到外侧（L），如箭头所示。
<img alt="3D打印机校准，红色塑料部件，精密测量，公差测试，原型零件" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/64324/64324fig01.jpg" data-altupdatedat="1788282455000" data-alt="图1"> 
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本文介绍了一种用于清醒、头部固定的 rats 功能成像的详细新方法。

麻醉剂在临床前和基础科学研究中常用，对代谢、神经元和血管功能具有抑制作用……

大多数基础和转化研究均来源于麻醉动物。麻醉剂可能为数据分析和解释引入混杂变量。本研究实现了大鼠清醒状态下的成像，从而规避了这一问题。这种设计非常简单。整个装置质量轻，因此不会影响动物的正常生活。这意味着它也可用于长期慢性成像。为我们演示该实验步骤的是来自本实验室的高级博士后Mehwish Bhatti博士。首先使用计算机辅助设计（CAD）软件，对位于前囟后方、靠近中线且以体感皮层为中心的颅骨区域进行成像，并据此制作头部植入件。确保头部植入件覆盖颅骨上距离成像区域0.9至1.9毫米的范围。仅使用三颗螺钉将头部植入物固定在大鼠颅骨上。所有螺钉孔应设计在图像半球对侧半脑的中线对侧位置。为便于导线将头帽固定在头部植入物上，在头部植入物的上部放置一根中空杆。接下来，设计颅顶帽，确保其完全覆盖成像区域并保护其免受任何外伤。使颅顶帽具有一定的曲率，以贴合头部形状，同时不妨碍动物在标准丰富化笼具中的日常活动。将颅顶帽内侧切割成较宽的矩形，以便颅内植入物的上部能够嵌入其中。垂直于该矩形，再切割另外两个矩形区域，以将头帽固定在头颅植入物上。将头帽固定在大鼠头部时，需将导线穿过头颅植入物上方的中空横杆。设计头架时，应使其中一个切割部分可穿过头颅植入物的上部横杆，并通过夹具固定。为了便于对侧成像，调整另一侧切面的角度，以提供额外支撑力，确保大鼠头部固定牢固。使用3D打印机打印头部植入件和头帽。测量动物体重，以计算所需麻醉剂的用量。通过腹腔注射戊巴比妥钠使动物麻醉。本手术可采用多种替代麻醉剂，如异氟烷、氯胺酮或赛拉嗪。肌肉注射阿托品以减少呼吸时的黏液分泌。使用理发修剪器，从大鼠眼睛之间开始，沿中线向后耳方向剃毛，范围宽约五毫米，以中线为中心。然后将脉搏血氧仪和心率监测探头固定在大鼠后肢，监测其血氧饱和度和心率。用碘伏和70%酒精棉片交替擦拭大鼠头部及周围区域三次。将大鼠固定于立体定位仪中。随后，插入涂有凡士林润滑的直肠探针以监测大鼠体温，并通过加热毯的反馈系统维持体温，防止麻醉后出现低体温。在双眼涂抹眼用软膏，以防角膜干燥。在手术部位皮下注射2%局部麻醉剂，并皮下注射3毫升室温乳酸林格氏液，以预防手术期间脱水并提供营养支持。使用锐利的手术剪，去除手术部位上方的皮肤组织。解剖并去除头部颞区耳部与眼部之间的部分皮肤。使用手术刀去除下方的皮肤组织以暴露颅骨。然后用无菌棉纱清洁颅骨。剪开颞肌，暴露对侧半球的颅骨区域，用于头部植入装置的安装。将头颅植入装置放置在颅骨上，以确定植入装置固定螺钉的位置。随后使用印度墨水在颅骨上标记螺钉钻孔位置，使用一号钻头进行钻孔。使用三号牙科钻头钻出螺钉用的环钻孔，并将头颅植入装置用螺钉固定到位。使用无菌纱布擦干颅骨，并在颅骨植入物周围及下方涂抹一层薄薄的组织粘合剂，以将其粘附于颅骨上。用牙科水泥进一步固定颅骨植入物，并静置2至3分钟使水泥干燥。随后，使用3号牙科钻头减薄颅骨左侧一个7.5毫米×7.5毫米区域的厚度，该区域位于前囟后方且偏离中线，减薄至50微米。在手术部位涂抹局部抗生素软膏，然后覆盖一层薄硅胶橡胶以保护薄层颅骨。接着，使用头帽覆盖手术部位，并用两根细金属丝穿过颅骨植入物和头帽，将头帽固定到位。再涂抹硅胶橡胶覆盖头帽和颅骨，以进一步稳定大鼠头部的头帽装置。腹腔注射布托啡诺和抗生素，分别用于缓解疼痛和炎症，并预防感染。图中显示了清醒大鼠的总和反应信号与麻醉大鼠单次试验的光学成像信号。清醒且头部固定的大鼠的功能反应强度是麻醉大鼠的140倍。注意不要在头板上添加过多的水泥，否则会阻碍帽盖的正确固定。该方法可广泛应用于清醒状态下头固定薄颅骨神经成像。通过开颅手术，该技术可扩展至其他神经成像方案，包括功能超声成像、钙成像和荧光成像。清醒状态下的成像将有助于开展一系列全新的研究工作，避免麻醉剂引入的混杂变量影响。

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用于清醒、头部固定大鼠神经成像的头部植入物

该视频演示了一种将无线双向多通道电极装置植入大鼠脑内的操作流程，用于记录和刺激多通道神经网络。...

在大鼠脑内植入无线双向微电极系统

本视频演示了在麻醉大鼠体内植入头部电极系统以进行实时癫痫发作检测的方法。该操作包括放置刺激和记录电极，使用牙科水泥固定电极，并将其连接至安装在头部的放大器。...

在大鼠模型中植入头戴式电极系统用于实时癫痫发作检测

本方案描述了一种在啮齿类动物中同时进行功能性磁共振成像与深部脑刺激的标准方法。结合使用这两种实验工具，可探索几乎任意脑区靶点在接受电刺激后所引发的全脑范围内的下游活动响应。...

啮齿类动物深部脑刺激联合同步功能性磁共振成像

本方案描述了一种用于在清醒大鼠中监测皮层下脑区神经元活动的头部固定装置的设计与外科植入方法。该方案详细说明了通过邻细胞记录配置分离单个神经元并有效确定其解剖位置的操作步骤。...

清醒且头部固定的雄性大鼠皮层下脑区单个神经元的紧密细胞外记录与定位

关键词：紧密细胞外记录，单神经元记录，皮层下脑结构，清醒动物，头部固定，大鼠

我们展示了在清醒大鼠中进行手术植入和记录程序，以测量来自眼睛（视网膜电图）和大脑（视觉诱发电位）的视觉电生理信号，该方法更接近人类情况，因为记录过程无需麻醉，避免了麻醉带来的干扰。...

清醒大鼠无线视网膜电图和视觉诱发电位的植入与记录

介绍了一种用于自由活动大鼠的多通道神经记录与刺激的无线双向系统。该系统轻便紧凑，对动物的行为模式影响极小。此外，这种双向系统为评估脑激活模式与行为之间的因果关系提供了先进的工具。...

一种无线双向接口 体内 在自由活动大鼠中记录与刺激神经活动

我们描述了一种用于评估急性深部脑刺激诱导的代谢性神经调节的临床前实验方法 体内 FDG-PET。本论文包含所有实验步骤，从立体定位手术到刺激治疗的实施，以及PET图像的采集、处理与分析。...

体内 正电子发射断层成像揭示大鼠深部脑刺激诱导的活动模式

本文介绍了一种专为大鼠设计的独特可3D打印植入物，名为TD...

TD驱动器：一种用于清醒及睡眠大鼠多脑区电生理记录的参数化开源植入装置

本文介绍了一种轻量化、低成本的探针植入系统，适用于啮齿类动物的慢性电生理实验，该系统在设计上优化了易用性、探针回收性、实验灵活性以及与行为学实验的兼容性。...

DREAM 植入体：一种用于固定头部及自由活动小鼠慢性电生理记录的轻量化、模块化且经济高效的植入系统

本方案介绍了一种基于微控制器的行为学检测箱，通过采集置于箱体下方传感器的加速度数据，评估 Prepulse...

开发用于评估精神疾病动物模型中脉冲前抑制及神经活动的行为箱

了解清醒头部固定大鼠神经成像方法，使用轻量化头部植入物进行长期慢性成像研究。该技术可消除麻醉剂干扰，使功能成像信号强度提高140倍，为神经科学研究提供更可靠的数据。

清醒固定头部大鼠神经成像用头部植入装置

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