2022年9月16日
本方案详细描述了使用反向引物通过数字液滴PCR(dd-PCR)精确定量细胞中环状RNA(circRNA)水平的方法。
dd-PCR 是一种用于靶标 DNA 或 RNA 绝对定量的高度敏感且准确的方法。该方法已用于其他常规技术无法提供准确结果的疾病诊断。dd-PCR 是检测极低丰度核酸分子的最敏感技术。
与定量PCR不同,dd-PCR在定量时无需任何看家基因作为内参对照。由于其高灵敏度和高准确性,dd-PCR可作为分子诊断和涉及低丰度RNA分子(如微小RNA和环状RNA)研究的工具。在使用dd-PCR之前,应先进行RT-PCR或RT-qPCR,以确认引物能够特异性扩增目标基因,且无非特异性PCR扩增产物。
首先,通过将环状 RNA 序列总长的最后 100 个核苷酸与环状 RNA 序列的前 100 个核苷酸连接,制备一段长度为 200 个核苷酸的 PCR 模板序列。使用该模板序列在 Primer 3 在线工具中设计引物。取一个含有约 500 万增殖性 C2C12 成肌细胞的 10 厘米培养皿,以及一个分化四天的 C2C12 成肌管细胞样本,用于 RNA 提取。
用 10 毫升 1× PBS 洗涤细胞三次,使用移液器弃去 PBS。加入 1 毫升 RNA 提取试剂,通过剧烈移液使细胞裂解。然后加入 200 微升氯仿,涡旋振荡 15 秒。
将离心管置于4摄氏度下,以12,000 G离心10分钟。取400微升上层水相,加载至硅胶柱上,并在室温下以12,000 G离心1分钟。收集穿流液至新的离心管中,加入600微升100%乙醇。加入20微升磁性硅胶珠,将离心管置于恒温混匀仪中,设置温度为25摄氏度、转速为1,200 RPM,孵育5分钟。
然后,将离心管置于磁力架上30秒,或直至溶液变澄清。用500微升含有90%乙醇的洗涤缓冲液重悬磁性二氧化硅珠。将离心管再次置于磁力架上30秒,待磁珠在磁场作用下沉降后,用移液器弃去上清缓冲液。
将离心管置于恒温混匀仪中,50摄氏度下开盖风干三分钟。加入20微升无核酸酶水,重悬磁珠。将溶解的RNA收集至新的离心管中,用于后续通过分光光度计进行定量和质量评估。
使用分光光度计测定RNA浓度,并取1微克RNA用于cDNA合成。将1微克总RNA与1微升dNTP混合物、4微升5X逆转录酶缓冲液、2微升10X逆转录酶随机引物、0.25微升逆转录酶以及0.5微升RNase抑制剂混合。用无核酸酶水补足体积至20微升。
将试管置于25摄氏度下10分钟,随后置于50摄氏度下1小时。然后将试管置于85摄氏度下5分钟以灭活酶。在0.2毫升PCR管或PCR条管中,设置总体积为22微升的PCR反应体系,并包括阴性对照管和无模板对照管。
配制NTC反应管时,加入11微升dd-PCR预混液、5.5微升浓度为1微摩尔的环状RNA特异性正向与反向引物混合液,以及5.5微升无核酸酶水。同样,配制检测反应管时,加入11微升dd-PCR预混液、5.5微升浓度为1微摩尔的环状RNA特异性正向与反向引物混合液,以及5.5微升cDNA。进行液滴生成时,将20微升PCR混合液从0.2毫升PCR管转移至液滴生成仪卡盒的样品孔中。
使用移液器小心地向微滴发生器芯片的油相孔中加入 70 微升微滴生成油。用橡胶垫片盖好微滴发生器芯片,并将其放入微滴发生器仪器中,以在芯片的微滴孔中生成样品油相微滴混合物。进行 PCR 扩增时,使用移液器将 40 微升样品油相微滴混合物从微滴发生器芯片的微滴孔中转移至 96 孔 PCR 板中。
用铝箔封膜密封96孔PCR板。将其放入预热至180摄氏度的封板机模块中,点击“封膜”以密封PCR板。随后,将该板放入数字PCR仪中,设置盖子温度为105摄氏度,升降温速率为每秒2摄氏度。
PCR 结束后,将反应板放入 dd-PCR 微滴计数仪中,并将板架置于正确位置以进行微滴计数。打开微滴分析软件,输入样品信息以设置运行程序。待微滴读取完成后,点击“分析”按钮以分析数据。
然后,点击 1D 振幅按钮以查看阳性液滴和阴性液滴。为了将阳性液滴与阴性液滴分离开,对具有相同靶标的全部样本设置一条共同的阈值线。点击导出按钮,将环状 RNA 计数数据导出为 csv 文件。
导出的数据展示了每个样本中环状 RNA 的数量。通过考虑每个反应中使用的 cDNA 总量,手动计算每纳克 RNA 中每个样本的环状 RNA 数量。此处展示了使用 QuantaSoft 软件进行的数据分析。
除MT1外,所有样本的液滴数均超过12,000。由于MT1的总液滴数较低,因此该样本未纳入最终数据分析。有趣的是,在分化四天的成肌管条件下,Circ B和C2的表达模式与成肌细胞相比存在明显差异。
以拷贝数表示的Circ B和C2丰度分析显示,C2C12成肌细胞的三个重复样本每纳克RNA分别含有76.8、67和46个拷贝,而两个肌管样本每纳克RNA分别含有558和610个拷贝。柱状图中的数据代表两次至三次生物学重复的均值加减标准差。ddPCR是测量目标环状RNA准确差异表达的最先进方法之一。
该方法将成为推动来年环状RNA研究和诊断产业发展的关键技术工具。
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本研究提供了一种利用反向引物通过数字液滴PCR(dd-PCR)定量细胞中环状RNA(circRNA)水平的详细实验方案,强调其相较于传统方法具有更高的灵敏度和准确性。
数字液滴PCR(dd-PCR)可实现对环状RNA(circRNA)的高度敏感和绝对定量,解决了在发现性研究和转化研究中检测低丰度RNA分子的技术难题。该技术提高了基因表达分析的预测可靠性,并有助于疾病诊断相关生物标志物的开发。dd-PCR具备的高精确性和对抑制剂的耐受性,使其成为生物制药研发管线中早期靶点验证和候选项目筛选的关键工具。
环状RNA定量的数字滴定PCR技术可融入从发现到临床前研究的全过程,支持早期发现、先导物识别以及转化生物标志物的验证。