Name: 小鼠无创气管内脂多糖滴注 (视频) | JoVE Journal
Uploaded: 2023-03-31T13:40:00.000+00:00
Duration: 4 min 10 s
Description: 了解小鼠无创气管内脂多糖滴注方法，通过口咽插管技术将LPS精准递送至肺部，用于评估炎症反应和TNF-alpha水平变化。该技术减少手术创伤，适用于肺部药物递送和炎症研究的临床前实验。

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

本工作得到国家自然科学基金（编号：81903902）、中国博士后科学基金（编号：2019M663457）、四川省科技计划项目（编号：2020YJ0172）以及成都中医药大学杏林学者科研提升计划项目（编号：QJRC2022053）的资助。

动物实验方案已通过成都中医药大学管理委员会的审查和批准（记录编号：2021-11）。本研究使用雄性C57/BL小鼠（20–25 g，6–8周龄）。实验期间，小鼠饲养于动物饲养箱中，可自由饮水和进食。
1. 准备
<ol>
	<li>确保插管平台由底座、升高管、一个回形针、两个橡皮筋和若干细绳组成。取一根细绳，将其穿过升高管顶部的两个孔，并将细绳的两端分别系在升高管顶部的小突起上。 
	注意：需在细绳与两个孔之间预留足够空间，以便小鼠头部穿过。</li>
	<li>将两个橡皮筋分别系在回形针的两端，并用胶带将带橡皮筋的回形针固定在升高管背面。最后，将升高管以90°角固定在底座上（图1）。</li>
	<li>选择合适尺寸和长度的导管。对于20−30 g的小鼠，可使用22 G导管（长度为2.5−3.8 cm）11。将导管安装至导管笔上，并打开导管笔的光源（图2）。</li>
	<li>使用70%酒精对小型手术镊和巴斯德吸管进行消毒处理。</li>
</ol>
2. 测试化合物的制备
<ol>
	<li>称取3 mg LPS并溶于1 mL磷酸盐缓冲液（PBS，pH 7.2）中，配制成浓度为3 mg/mL的LPS溶液。</li>
	<li>称取10 mg戊巴比妥钠并溶于1 mL生理盐水中，配制成1%的戊巴比妥钠溶液。使用0.45 µm注射器滤器对该溶液进行过滤除菌。</li>
</ol>
3. 非侵入性口咽部滴注
<ol>
	<li>以每公斤体重50 mg的剂量，通过腹腔注射1%戊巴比妥钠对小鼠进行麻醉12,13。通过观察翻正反射是否消失来判断麻醉深度。</li>
	<li>将麻醉后的小鼠置于插管平台上。用线固定上门齿，用橡皮筋固定两只前肢（图3）。</li>
	<li>用镊子将舌头拉出，并用左手固定。右手持导管，沿口腔缓慢向上推送至下颌会厌处。利用导管笔的光源寻找气管，并缓慢将其插入气管内（图4）。</li>
	<li>导管插入气管后，缓慢撤出插管笔，保留导管在原位。将巴斯德吸管插入导管接口，并按压头部（图5）。 
	注意：若小鼠胸部隆起，则表明插管成功（图6）。</li>
	<li>成功实施气管插管后，使用平头微量注射器经导管向小鼠给予3 mg/kg的3 mg/mL LPS溶液14,15（图7）。</li>
	<li>操作完成后，移除导管和微量注射器。将小鼠从支架上取下，单独放入笼中恢复。观察其呼吸状态，直至小鼠恢复意识。 
	注意：在LPS气管滴注后12小时，按照动物伦理委员会批准的程序处死小鼠。采用标准方法进行血清TNF-α检测和肺组织干湿重比测定。</li>
</ol>

<ol><li>Xia, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Protective+effect+of+human+amnion+epithelial+cells+through+endotracheal+instillation+against+lipopolysaccharide-induced+acute+lung+injury+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Xi+Bao+Yu+Fen+Zi+Mian+Yi+Xue+Za+Zhi%22%5BJournal%5D)">Protective effect of human amnion epithelial cells through endotracheal instillation against lipopolysaccharide-induced acute lung injury in mice.</a> Xi Bao Yu Fen Zi Mian Yi Xue Za Zhi. 33 (1), 7-11 (2017).</li>
<li>Butt, Y., Kurdowska, A., Allen, T. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Acute+lung+injury%3A+A+clinical+and+molecular+review%5BTitle%5D)+AND+%22Archives+of+Pathology+and+Lab+Medicine%22%5BJournal%5D)">Acute lung injury: A clinical and molecular review.</a> Archives of Pathology and Lab Medicine. 140 (4), 345-350 (2016).</li>
<li>Ware, L. B., Matthay, M. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+acute+respiratory+distress+syndrome%5BTitle%5D)+AND+%22The+New+England+Journal+of+Medicine%22%5BJournal%5D)">The acute respiratory distress syndrome.</a> The New England Journal of Medicine. 342 (18), 1334-1349 (2000).</li>
<li>Fan, E., Brodie, D., Slutsky, A. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Acute+respiratory+distress+syndrome%3A+Advances+in+diagnosis+and+treatment%5BTitle%5D)+AND+%22JAMA%22%5BJournal%5D)">Acute respiratory distress syndrome: Advances in diagnosis and treatment.</a> JAMA. 319 (7), 698-710 (2018).</li>
<li>Meyer, N. J., Gattinoni, L., Calfee, C. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Acute+respiratory+distress+syndrome%5BTitle%5D)+AND+%22Lancet%22%5BJournal%5D)">Acute respiratory distress syndrome.</a> Lancet. 398 (10300), 622-637 (2021).</li>
<li>An, N., Yang, T., Zhang, X. X., Xu, M. X. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Bergamottin+alleviates+LPS-induced+acute+lung+injury+by+inducing+SIRT1+and+suppressing+NF-%CE%BAB%5BTitle%5D)+AND+%22Innate+Immunity%22%5BJournal%5D)">Bergamottin alleviates LPS-induced acute lung injury by inducing SIRT1 and suppressing NF-κB.</a> Innate Immunity. 27 (7-8), 543-552 (2021).</li>
<li>Liu, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Comparative+study+of+trans-oral+and+trans-tracheal+intratracheal+instillations+in+a+murine+model+of+acute+lung+injury%5BTitle%5D)+AND+%22The+Anatomical+Record%22%5BJournal%5D)">Comparative study of trans-oral and trans-tracheal intratracheal instillations in a murine model of acute lung injury.</a> The Anatomical Record. 295 (9), 1513-1519 (2012).</li>
<li>Virag, J. A., Lust, R. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Coronary+artery+ligation+and+intramyocardial+injection+in+a+murine+model+of+infarction%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Visualized+Experiments%22%5BJournal%5D)">Coronary artery ligation and intramyocardial injection in a murine model of infarction.</a> Journal of Visualized Experiments. (52), e2581(2011).</li>
<li>Li, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Panaxydol+attenuates+ferroptosis+against+LPS-induced+acute+lung+injury+in+mice+by+Keap1-Nrf2%2FHO-1+pathway%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Translational+Medicine%22%5BJournal%5D)">Panaxydol attenuates ferroptosis against LPS-induced acute lung injury in mice by Keap1-Nrf2/HO-1 pathway.</a> Journal of Translational Medicine. 19 (1), 96(2021).</li>
<li>Zhou, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Soluble+epoxide+hydrolase+inhibitor+attenuates+lipopolysaccharide-induced+acute+lung+injury+and+improves+survival+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Shock%22%5BJournal%5D)">Soluble epoxide hydrolase inhibitor attenuates lipopolysaccharide-induced acute lung injury and improves survival in mice.</a> Shock. 47 (5), 638-645 (2017).</li>
<li>Nosaka, N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Optimal+tube+length+of+orotracheal+intubation+for+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Laboratory+Animals%22%5BJournal%5D)">Optimal tube length of orotracheal intubation for mice.</a> Laboratory Animals. 53 (1), 79-83 (2019).</li>
<li>Cicero, L., Fazzotta, S., Palumbo, V. D., Cassata, G., Lo Monte, A. I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Anaesthesia+protocols+in+laboratory+animals+used+for+scientific+purposes%5BTitle%5D)+AND+%22Acta+Bio-Medica%3A+Atenei+Parmensis%22%5BJournal%5D)">Anaesthesia protocols in laboratory animals used for scientific purposes.</a> Acta Bio-Medica: Atenei Parmensis. 89 (3), 337-342 (2018).</li>
<li>Ehrentraut, H., Weisheit, C. K., Frede, S., Hilbert, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Inducing+acute+lung+injury+in+mice+by+direct+intratracheal+lipopolysaccharide+instillation%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Visualized+Experiments%22%5BJournal%5D)">Inducing acute lung injury in mice by direct intratracheal lipopolysaccharide instillation.</a> Journal of Visualized Experiments. (149), e59999(2019).</li>
<li>Yang, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((STAT6+inhibits+ferroptosis+and+alleviates+acute+lung+injury+by+regulating+P53%2FSLC7A11+pathway%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Death+%26+Disease%22%5BJournal%5D)">STAT6 inhibits ferroptosis and alleviates acute lung injury by regulating P53/SLC7A11 pathway.</a> Cell Death & Disease. 13 (6), 530(2022).</li>
<li>Aramaki, O., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Induction+of+operational+tolerance+and+generation+of+regulatory+cells+after+intratracheal+delivery+of+alloantigen+combined+with+nondepleting+anti-CD4+monoclonal+antibody%5BTitle%5D)+AND+%22Transplantation%22%5BJournal%5D)">Induction of operational tolerance and generation of regulatory cells after intratracheal delivery of alloantigen combined with nondepleting anti-CD4 monoclonal antibody.</a> Transplantation. 76 (9), 1305-1314 (2003).</li>
<li>Lan, W. Activation of mammalian target of rapamycin (mTOR) in a murine model of lipopolysaccharide (LPS) -induced acute lung injury (ALI). <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=%22Peking+Union+Medical+College%22">Peking Union Medical College</a>. , PhD Thesis (2010).</li>
<li>Lv, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Tenuigenin+ameliorates+acute+lung+injury+by+inhibiting+NF-%CE%BAB+and+MAPK+signalling+pathways%5BTitle%5D)+AND+%22Respiratory+Physiology+%26+Neurobiology%22%5BJournal%5D)">Tenuigenin ameliorates acute lung injury by inhibiting NF-κB and MAPK signalling pathways.</a> Respiratory Physiology & Neurobiology. 216, 43-51 (2015).</li>
<li>Yang, H., Lv, H., Li, H., Ci, X., Peng, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Oridonin+protects+LPS-induced+acute+lung+injury+by+modulating+Nrf2-mediated+oxidative+stress+and+Nrf2-independent+NLRP3+and+NF-%CE%BAB+pathways%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Communication+and+Signaling%22%5BJournal%5D)">Oridonin protects LPS-induced acute lung injury by modulating Nrf2-mediated oxidative stress and Nrf2-independent NLRP3 and NF-κB pathways.</a> Cell Communication and Signaling. 17 (1), 62(2019).</li>
<li>Im, G. H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Improvement+of+orthotopic+lung+cancer+mouse+model+via+thoracotomy+and+orotracheal+intubation+enabling+in+vivo+imaging+studies%5BTitle%5D)+AND+%22Laboratory+Animals%22%5BJournal%5D)">Improvement of orthotopic lung cancer mouse model via thoracotomy and orotracheal intubation enabling in vivo imaging studies.</a> Laboratory Animals. 48 (2), 124-131 (2014).</li>
<li>Hamacher, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Microscopic+wire+guide-based+orotracheal+mouse+intubation%3A+description%2C+evaluation+and+comparison+with+transillumination%5BTitle%5D)+AND+%22Laboratory+Animals%22%5BJournal%5D)">Microscopic wire guide-based orotracheal mouse intubation: description, evaluation and comparison with transillumination.</a> Laboratory Animals. 42 (2), 222-230 (2008).</li>
<li>Nelson, A. M., Nolan, K. E., Davis, I. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Repeated+orotracheal+intubation+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Visualized+Experiments%22%5BJournal%5D)">Repeated orotracheal intubation in mice.</a> Journal of Visualized Experiments. (157), e60844(2020).</li>
<li>Zhang, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Microvesicles+packaging+IL-1%CE%B2+and+TNF-%CE%B1+enhance+lung+inflammatory+response+to+mechanical+ventilation+in+part+by+induction+of+cofilin+signaling%5BTitle%5D)+AND+%22International+Immunopharmacology%22%5BJournal%5D)">Microvesicles packaging IL-1β and TNF-α enhance lung inflammatory response to mechanical ventilation in part by induction of cofilin signaling.</a> International Immunopharmacology. 63, 74-83 (2018).</li>
<li>Feng, Z. Comparative study of different intratracheal instillation in acute lung injury model of mice. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=%22Jilin+University%22">Jilin University</a>. , Master's Thesis (2010).</li>
<li>Chen, J. H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Comparison+of+acute+lung+injury+mice+model+established+by+intranasal+and+intratracheal+instillation+of+lipopolysaccharide%5BTitle%5D)+AND+%22Pharmacology+and+Clinics+of+Chinese+Materia+Medica%22%5BJournal%5D)">Comparison of acute lung injury mice model established by intranasal and intratracheal instillation of lipopolysaccharide.</a> Pharmacology and Clinics of Chinese Materia Medica. 38 (02), 222-227 (2022).</li>
<li>Luckow, B., Lehmann, M. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+simplified+method+for+bronchoalveolar+lavage+in+mice+by+orotracheal+intubation+avoiding+tracheotomy%5BTitle%5D)+AND+%22BioTechniques%22%5BJournal%5D)">A simplified method for bronchoalveolar lavage in mice by orotracheal intubation avoiding tracheotomy.</a> BioTechniques. 71 (4), 534-537 (2021).</li>
<li>Cai, Y., Kimura, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Noninvasive+intratracheal+intubation+to+study+the+pathology+and+physiology+of+mouse+lung%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Visualized+Experiments%22%5BJournal%5D)">Noninvasive intratracheal intubation to study the pathology and physiology of mouse lung.</a> Journal of Visualized Experiments. (81), e50601(2013).</li>
</ol>

作者无任何利益冲突需要披露。

最初，我们通过观察口腔内部来寻找气管的位置19。然而，在此过程中，我们发现C57/BL小鼠的气管较窄，若无内窥镜等设备的辅助，很难通过该方法准确找到位置20。经过进一步探索，我们发现插管灯的光线能够穿透体表，使操作者能够判断导管的位置21。
为了检查导管是否进入气管，最初我们尝试使用一块小镜子，该镜子通过放置在冰上进行冷却。插管后，我们将镜子靠近套管口。如果镜子上出现雾气，则认为插管成功。然而，我们发现这种方法无法准确判断套管是否真正进入气管。首先，套管前端靠近小鼠口腔，难以确定镜子上出现的雾气是由呼出的口腔气体所致，还是来自气管。其次，镜子需要预先冷却，在反复使用过程中，冷却所需的时间也延长了实验总时长。随后，我们改用巴斯德移液管向气管内吹气；若套管已插入气管，小鼠胸部会明显隆起；若误插入食管，则右下腹部会膨胀22。因此，我们采用此方法作为判断插管是否成功的依据。
<p class=...

急性肺损伤（ALI）是一种常见的临床综合征。在多种致病因素作用下，肺上皮细胞和血管内皮细胞的生理屏障遭到破坏，导致肺泡通透性增加，从而引起肺顺应性下降、肺水肿以及严重的低氧血症1。急性呼吸窘迫综合征（ARDS）是ALI最严重的形式。目前认为，失控的炎症反应和氧化应激损伤是导致ALI以及更严重的ARDS的主要原因2。当肺泡上皮细胞因创伤而直接受损时，会激活肺泡巨噬细胞的炎症反应链，进而引发肺部炎症3。全球范围内，每年有超过300万例急性ARDS患者，约占重症监护病房（ICU）入院人数的10%；此外，重症病例的死亡率高达46%4,5,6。因此，有必要建立合适的ALI动物模型以研究其发病机制。小鼠是研究ALI最常用的实验动物，因其呼吸道能够很好地模拟人类呼吸道，适用于ALI相关研究。此外，ALI表现为大量炎性细胞浸润、肺血管通透性升高和肺水肿。血清中炎症因子的变化以及肺组织干湿重比可反映ALI的严重程度7。
目前，建立小鼠LPS诱导急性肺损伤（ALI）模型的主要方法包括经鼻给药和手术气管插管8,9在此，我们提出一种将LPS递送至气管的新方法 通过 无创经口咽插管法。该方法利用带有光源的插管器定位小鼠气管，随后将LPS递送至气管和肺部。与经鼻给药方法相比，该方法可更准确地将LPS递送至肺部。与手术法气管插管相比，该方法无需手术操作，避免造成创伤，减轻小鼠疼痛10因此，该方法可用于建立更具说服力的急性肺损伤小鼠模型。

<table><tbody><tr><td>脂多糖</td><td>MERK</td><td>L4130</td><td>LPS</td></tr><tr><td>微升注射器</td><td>SHANGHAI GAOGE INDUSTRY AND TRADE CO., LTD</td><td>10028505008124</td><td>用于递送LPS</td></tr><tr><td>小鼠套管</td><td>RWD Life Science</td><td>803-03008-00</td><td>小鼠套管</td></tr><tr><td>小鼠插管套件</td><td>RWD Life Science</td><td>903-03027-00</td><td>包含底座、支架、插管器、手术镊和若干细线</td></tr><tr><td>巴斯德吸管</td><td>Biosharp life science</td><td>BS-XG-03</td><td>用于验证插管是否成功</td></tr><tr><td>戊巴比妥钠</td><td>北京化学试剂公司，中国</td><td>20220918</td><td>用于麻醉小鼠</td></tr></tbody></table>

小鼠非侵入性气管内脂多糖滴注

Noninvasive Intratracheal Lipopolysaccharide Instillation in Mice

由脂多糖（LPS）或内毒素诱导的急性肺损伤（ALI）小鼠模型，至今仍是急性肺损伤或急性炎症动物研究中最常用的模型之一。目前在急性肺损伤小鼠模型中最为常用的方法包括腹腔注射LPS以及经气管切开进行LPS气管灌注。然而，前一种方法缺乏对肺部的靶向性，并可能损害其他器官；后一种方法则会引起手术创伤、感染风险以及较低的存活率。本文推荐一种用于小鼠LPS滴注的无创经口咽气管插管方法。该方法借助气管插管装置，将LPS通过口咽腔无创地导入气管，进而灌注至肺部。此方法不仅可确保对肺部的靶向给药，还能避免动物遭受损伤和死亡风险。我们预期该方法将在急性肺损伤研究领域得到广泛应用。

通过检测脂多糖（LPS）滴注后12小时小鼠炎性细胞因子TNF-α的表达水平及肺组织干湿重比，验证了本研究所提出的LPS滴注方法。实验共设四组：空白对照组（未接受任何处理）、手术气管插管组16、鼻内滴注组17,18以及无创经口咽插管组（n = 6）。与空白对照组相比，无创经口咽插管组小鼠血清中TNF-α水平显著升高（图8A）；肺组织干湿重比亦显著增加（图8B），达到与手术气管插管组相当的水平。数据采用非配对单因素方差分析（ANOVA）及事后多重比较的Tukey-Kramer检验进行统计学分析。所有数据均以均值 ± 标准误（SEM）表示，以p &lt; 0.05为差异具有统计学意义。
<p class="jove_content biglegend" fo:keep-t...

此处，我们提出一种经气管递送脂多糖（LPS）的实验方案 通过 无创经口咽气管插管。该方法可最大限度地减少手术操作对动物造成的创伤，并能准确地将LPS输送至气管，进而进入肺部。

由脂多糖（LPS）或内毒素诱导的急性肺损伤（ALI）小鼠模型仍是动物研究中最常用的模型之一。

本方案提出了一种更为精确的、将脂多糖（LPS）经气管无创递送至肺部的新方法。首次尝试该方法的研究人员应投入较多精力以准确定位气管位置。准备插管平台时，将绳子穿过两个孔，并将其两端系在支架顶部的小突起上。接下来，将两个橡皮筋分别固定在回形针的两端，并用胶带粘在垫块的背面。最后，将垫块以90度角固定到底座上。将套管针安装到套管针笔上，并打开笔上的光源。接下来，使用70%酒精对小型手术镊子和巴斯德移液管进行消毒。为配制测试化合物溶液，将3毫克脂多糖（LPS）加入1毫升pH 7.2的磷酸盐缓冲液（PBS）中。接着，将10毫克戊巴比妥钠溶解于1毫升生理盐水中，并使用0.45微米注射器滤器过滤该溶液。将麻醉后的小鼠置于插管平台上。用细线固定上门齿，用橡皮筋固定两只前肢。使用镊子将舌头拉出并固定。将套管沿口腔缓慢推进至下颌会厌处。使用插管笔的光源定位气管，并缓慢将套管插入气管内。随后撤出插管笔，保留套管在原位。将巴斯德移液管插入套管接头并按压头部。成功进行气管插管后，使用平头微量注射器通过套管注入每公斤体重3毫克剂量的预配LPS溶液。操作完成后，取出微量注射器和套管。将小鼠从插管平台移出，放入单独的笼子中恢复。观察小鼠的呼吸状态，直至其恢复并重新恢复意识。在气管内给予脂多糖（LPS）12小时后，评估并比较炎症性细胞因子TNF-α的表达水平以及肺组织干湿重比与其他给予方法的差异。与空白对照组相比，无创经口咽插管组的血清TNF-α水平显著升高。肺组织干湿重比也升高，达到与手术气管插管组相同的水平。在寻找气管位置的过程中，应注意避免划伤气管。该技术还可用于以无创方式递送其他需要到达肺部的药物。

noninvasive-intratracheal-lipopolysaccharide-instillation-in-mice

Research

科研

JoVE Journal

Biology

生物学

小鼠无创气管内脂多糖滴注

经气管灌注可将溶质直接递送至肺部。该操作旨在将灌注液输送至肺的远端区域，因此常被用于肺泡相关研究。我们提供了一套详细的小鼠经气管灌注存活实验操作方案。...

直接向小鼠肺部气管内灌注溶质

我们通过气管途径，展示了一种将待测物质非手术递送至麻醉小鼠肺部的方法。该方法可使肺部暴露于细菌和病毒病原体、细胞因子、抗体、微珠、化学物质或染料中。我们进一步描述了肺组织及肺引流淋巴结（LDLNs）的采集与处理，以用于流式细胞术分析。...

小鼠非手术气管内灌注及通过流式细胞术分析肺组织和肺引流淋巴结

来源：Radulovic, K., et al. 向小鼠注射脂多糖以模拟肠道屏障受损后微生物来源产物的进入。 J. Vis. Exp.

小鼠腹腔注射细菌脂多糖以研究全身免疫反应

使用模拟人类肺部疾病状况的模型对于研究特定疾病的病理生理学和/或病因学以及开发治疗干预措施至关重要。本文介绍了一种可将外源性物质直接递送至小鼠肺部的无创经气管插管方法。...

无创气管插管法研究小鼠肺部病理与生理

宿主对病原体感染的免疫反应是一个受到严密调控的过程。利用小鼠脂多糖肺暴露模型，可对与疾病发病机制相关的复杂机制进行高分辨率评估。...

利用经口咽气管内给予PAMP及支气管肺泡灌洗评估小鼠宿主免疫反应

经插管介导的气管内（IMIT）试剂灌注是一种研究呼吸系统疾病以及将治疗性试剂直接递送至肺部的优良非侵入性方法。该方法快速且具有高度可重复性，适用于临床前测试。...

经插管气管内（IMIT）灌注：一种非侵入性、肺部特异性的递送系统

本文介绍了一种通过插管将博来霉素直接注入小鼠气管的快速简便方法。该方法的主要优点在于具有高度可重复性、易于掌握，且无需特殊设备或漫长的恢复时间。...

一种改进的小鼠气管快速插管方法

经气管给药 流感嗜血杆菌 在小鼠模型中研究气道炎症

本文介绍了一种通过直接气管内滴注脂多糖在小鼠中诱导急性肺损伤的逐步操作方法，以及对血液样本、支气管肺泡灌洗液和肺组织进行流式细胞术分析的方法。该方法具有侵入性小、操作简便、可重复性好以及可滴定疾病严重程度等优点。...

通过直接气管内滴注脂多糖在小鼠中诱导急性肺损伤

用于吸入的干粉制剂在治疗呼吸系统疾病方面具有巨大潜力。在开展人体研究之前，有必要通过临床前研究评估干粉制剂的疗效。本文介绍了一种通过气管途径在小鼠中给药干粉的简单且无创的方法。...

小鼠气管内给药干粉制剂

在本研究中，采用一种非侵入性气管内滴注技术，通过基本的喉镜确保将脂多糖（LPS）精确递送至肺部，从而在大鼠中建立急性肺损伤（ALI）模型。LPS被滴注入气管 通过 使用喉镜插入气管插管。在多个时间点评估肺损伤程度。...

非侵入性经气管给予脂多糖诱导啮齿类动物急性肺损伤

了解小鼠无创气管内脂多糖滴注方法，通过口咽插管技术将LPS精准递送至肺部，用于评估炎症反应和TNF-alpha水平变化。该技术减少手术创伤，适用于肺部药物递送和炎症研究的临床前实验。

小鼠非侵入性气管内脂多糖滴注

探索更多视频