Name: 用于体外和体内骨组织工程的脱细胞苹果衍生支架 (视频) | JoVE Journal
Uploaded: 2024-02-23T13:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 49 s
Description: 了解苹果衍生纤维素支架用于骨组织工程的方法，评估其体外和体内机械性能及成骨潜力。该方案支持细胞侵袭和矿化，为生物材料研究提供新思路。

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本项目获得了加拿大自然科学与工程研究理事会（NSERC）（发现基金）和李嘉诚基金会的资助。M.L.L. 获得了安大略省卓越中心TalentEdge项目的支持，R.J.H. 获得了加拿大自然科学与工程研究理事会研究生奖学金和安大略省研究生奖学金（OGS）的资助。

实验方案已通过渥太华大学动物护理委员会的审查和批准。
1. 支架制备
<ol>
	<li>使用切片机将麦克金托什苹果（Canada Fancy）切成8 mm厚的片状，并将苹果片的花托组织切成5 mm × 5 mm的方块。</li>
	<li>将方形样品置于0.1%十二烷基硫酸钠（SDS）中处理2天。</li>
	<li>用去离子水清洗脱细胞样品，并在100 mM CaCl2&#160;中室温（RT）孵育过夜，以去除残留的表面活性剂。</li>
	<li>将样品（即支架）在70%乙醇中灭菌30分钟，用去离子水洗涤后，置于24孔细胞培养板中，待接种细胞。</li>
</ol>
2. 细胞培养与支架接种
<ol>
	<li>在细胞培养条件（37°C，95% 空气和 5% CO2 的湿润环境）下，将 MC3T3-E1 Subclone 4 细胞培养于直径为 10 cm 的细胞培养处理培养皿中。</li>
	<li>制备细胞培养基，成分为添加了 10% 胎牛血清（FBS）和 1% 青霉素/链霉素的 Eagle 最低必需培养基-α 改良型&#160;（α-MEM）。</li>
	<li>当细胞融合度达到 80% 时，使用胰蛋白酶消化法（0.05% 胰蛋白酶-EDTA）将细胞从培养皿上解离。</li>
	<li>将细胞悬液在约 200 × g 条件下离心 3 分钟，吸除上清液，并将细胞重悬于 α-MEM 中，浓度为每毫升 2.5 × 107 个细胞。</li>
	<li>取 40 µL 细胞悬液滴加至支架表面，在细胞培养条件下孵育 1 小时使细胞贴附；随后，在培养板的每个培养孔中加入 2 mL 培养基&#160;。</li>
	<li>每 2–3 天更换一次培养基，持续 14 天。</li>
	<li>在前述细胞培养基中添加 50 µg/mL 抗坏血酸和 4 mM 磷酸钠，制备成诱导分化培养基。</li>
	<li>将支架置于诱导分化培养基中孵育 4 周，以诱导 MC3T3-E1 细胞分化，每 3–4 天更换一次培养基。同时，将另一组支架置于未添加分化诱导成分的普通培养基&#160;（即非诱导分化培养基）中，在相同时间内按照相同的换液频率进行孵育，作为阴性对照&#160;。</li>
</ol>
3. 使用共聚焦激光扫描显微镜测量孔径大小
<ol>
	<li>用磷酸盐缓冲液（PBS）清洗脱细胞苹果来源的支架。</li>
	<li>将支架置于1 mL 10%（v/v）荧光增白剂Calcofluor White染液中，室温避光孵育25分钟。</li>
	<li>用PBS清洗&#160;支架&#160;（n = 3），并在每个支架上随机选择三个区域，使用高速共振共聚焦激光扫描显微镜（CLSM）以10倍放大倍数和DAPI通道进行成像，具体设置如下：
	<ol>
		<li>激光发射滤光片配置：405 nm（激光）；425–475 nm&#160;（发射）</li>
		<li>手动调节激光功率和探测器，以确保最佳图像采集效果。采集20层z轴堆栈图像，步长为5 µm。</li>
	</ol>
	</li>
	<li>使用ImageJ软件对共聚焦图像进行处理和分析，步骤如下：
	<ol>
		<li>使用&#160;“Z轴投影至最大强度”&#160;功能生成图像，并应用“查找边缘”功能以突出孔隙边缘。</li>
		<li>使用“自由手选择”工具手动勾勒孔隙轮廓。</li>
		<li>将每个孔隙拟合为椭圆，测量其长轴长度，汇总所有测量值（本研究共54个——每个支架3个随机区域，每个区域6个孔隙），并计算平均长度。</li>
	</ol>
	</li>
</ol>
4. 使用共聚焦激光扫描显微镜进行细胞分布分析
<ol>
	<li>用 PBS 将在非分化或分化培养基中培养的接种细胞支架洗涤三次。用 4% 多聚甲醛固定支架 10 分钟。</li>
	<li>用去离子水彻底洗涤每个支架，用 Triton-X 100 溶液对细胞进行通透处理 5 分钟，再用 PBS 再次洗涤。</li>
	<li>将支架在 1 mL 1% 高碘酸溶液中孵育 40 分钟，并用去离子水冲洗14,16。</li>
	<li>将支架置于 1 mL 含有 100 mM 焦亚硫酸钠和 0.15 M 盐酸并添加 100 µg/mL 碘化丙啶的溶液中孵育。确保支架完全浸没于该溶液中。</li>
	<li>用 PBS 洗涤支架，并在避光条件下将支架在 5 mg/mL DAPI 溶液中孵育 10 分钟以染色细胞核。再次彻底洗涤，并将支架保存于 PBS 中待成像。</li>
	<li>使用高速共振式共聚焦激光扫描显微镜（CLSM），在 10 倍放大倍数下，随机选取三个不同接种细胞支架的三个表面进行成像，采用 DAPI 和 TRITC&#160;通道，具体设置如下：
	<ol>
		<li>激光发射滤光片配置： 
		DAPI：激光：405 nm；发射：425–475 nm 
		&#8203;TRITC：激光：561 nm；发射：570–620 nm</li>
		<li>手动调节激光功率和探测器，以确保最佳图像采集效果。采集 z 轴方向共 20 张图像的 z-stack，步长为 5 µm。</li>
	</ol>
	</li>
	<li>使用 ImageJ 软件处理共聚焦图像，并利用 Z-Project to Maximum Intensity 功能生成 z 轴最大强度投影，用于图像分析&#160;。</li>
</ol>
5. 碱性磷酸酶分析
<ol>
	<li>用 PBS 将在非分化或分化培养基中培养的接种细胞支架洗涤三次。用 10% 中性缓冲福尔马林固定支架 30 分钟。同时固定空白支架（未接种细胞的支架）作为阴性对照。</li>
	<li>将一片 5-溴-4-氯-3'-吲哚磷酸盐/硝基蓝四唑盐（BCIP/NBT）试剂片溶解于 10 mL 去离子水中，配制 BCIP/NBT 染色液。</li>
	<li>用 0.05% Tween 溶液洗涤固定后的支架，然后在室温下用 BCIP/NBT 溶液染色 20 分钟。再次用 0.05% Tween 溶液洗涤染色后的支架，并将其保存在 PBS 中，待成像前使用。</li>
	<li>使用 1200 万像素数码相机对染色后的支架进行成像。</li>
</ol>
6. 钙沉积分析
<ol>
	<li>用 PBS 将在非分化或分化培养基中培养的接种细胞支架洗涤三次。用 10% 中性缓冲福尔马林固定支架 30 分钟。同时固定空白支架（未接种细胞的支架）作为阴性对照。</li>
	<li>配制 2% (w/v) 的茜素红 S (ARS) 染色液。</li>
	<li>用去离子水洗涤固定后的支架，加入 ARS 染色液在室温下染色 1 小时。染色后用去离子水洗涤支架，并在成像前保存于 PBS 中。</li>
	<li>使用 1200 万像素数码相机对染色后的支架进行成像。</li>
</ol>
7. 矿化分析
<ol>
	<li>用 PBS 将在非分化或分化培养基中培养的接种细胞支架洗涤三次。用 4% 多聚甲醛固定支架 48 小时。同时固定空白支架（未接种细胞的支架）&#160;作为阴性对照。</li>
	<li>按照先前所述方法23，将样品依次浸入浓度从 50% 逐步增加至 100% 的乙醇溶液中进行脱水处理。</li>
	<li>采用扫描电子显微镜（SEM）和能谱分析（EDS）对矿化沉积物进行如下分析：
	<ol>
		<li>按照制造商的操作说明24，使用临界点干燥仪对样品进行干燥。</li>
		<li>按照制造商的操作说明25，使用金溅射镀膜仪在支架表面镀上一层 5 nm 厚的金膜。</li>
		<li>使用扫描电子显微镜，在 3 kV 电压和 85 倍放大倍数下对支架表面进行成像。</li>
		<li>将扫描电子显微镜设定在 15 kV 电压下进行 EDS 分析。在每个支架上随机选取三个区域，采集 EDS&#160;谱图以分析矿化沉积物的成分。</li>
	</ol>
	</li>
</ol>
8. 杨氏模量测量
<ol>
	<li>将接种细胞的支架从相应的培养液中取出，并立即对样品进行测试。</li>
	<li>使用配备1.5 N力传感器的自制单轴压缩装置，以3 mm·min-1的恒定速率对支架（每组条件n = 3）进行压缩，直至达到支架高度10%的最大压缩应变。</li>
	<li>根据应力-应变曲线线性部分的斜率确定杨氏模量。在本研究中，模量的测定范围为9%至10%的应变区间。</li>
</ol>
9. 组织学分析细胞浸润和矿化：体外支架
<ol>
	<li>用 PBS 将接种细胞并在非分化或分化培养基中培养的支架冲洗三次。</li>
	<li>将接种细胞的支架用4%多聚甲醛固定48小时，然后在70%乙醇中重悬保存。</li>
	<li>组织学： 
	注意：在本研究中，整个&#160;后续步骤中所述的组织学制备（包埋、切片和染色）由渥太华大学Louise Pelletier组织学核心设施完成。
	<ol>
		<li>脱水并包埋于石蜡后，从支架内部1 mm处开始，将样品切成5-µm厚的连续切片，并将切片贴附于载玻片上。</li>
		<li>用苏木精和伊红（H&E）对切片进行染色&amp;#38;E）或冯库萨（von Kossa，VK）染色。</li>
		<li>使用切片扫描显微镜对切片进行成像&#160;40倍放大&#160;（n = 1 个支架）&#160;非分化培养基（n = 2个支架）和分化培养基（n = 2个支架）在本研究中</li>
		<li>使用 ImageJ 软件，通过视觉评估细胞浸润（H&amp;#38;E 染色）和矿化（VK 染色）。</li>
	</ol>
	</li>
</ol>
10. 大鼠颅骨缺损模型
<ol>
	<li>获得当地动物护理委员会审查并批准的实验方案。</li>
	<li>按照上述第1节所述方法，使用5 mm活检打孔器制备圆形（直径5 mm，厚度1 mm）去细胞支架。</li>
	<li>按照既定方案26进行双侧开颅手术，步骤如下：
	<ol>
		<li>使用异氟烷对雄性Sprague-Dawley大鼠进行麻醉，初始浓度为3%，直至大鼠失去意识，之后在手术过程中维持在2-3%。</li>
		<li>使用手术刀片切开覆盖的皮肤，暴露骨膜和颅骨，随后去除骨膜。</li>
		<li>使用配备直径5 mm环钻的牙科钻，在矢状缝两侧的顶骨上制造双侧骨缺损，同时持续用0.9% NaCl进行冲洗。</li>
		<li>用0.9% NaCl清洗周围骨组织，清除所有骨碎片。</li>
		<li>将圆形去细胞支架植入骨缺损处。</li>
		<li>使用4-0缝线缝合覆盖的皮肤。</li>
	</ol>
	</li>
	<li>术后大鼠自由进食饮水，并每日进行观察监测。</li>
	<li>植入后8周，通过CO2吸入并辅以胸腔穿刺作为二次安乐死措施处死大鼠。</li>
	<li>为暴露颅骨并取出植入物，使用手术刀片去除覆盖颅骨的皮肤。</li>
	<li>使用牙科钻在额骨和枕骨以及双侧顶骨侧面进行切割，完全移除颅骨顶部。</li>
</ol>
11. 推出试验
<ol>
	<li>将单轴压缩装置（配备 445 N 负载传感器）连接到 USB 数据采集模块。</li>
	<li>将数据采集模块连接至装有数据采集软件的计算机。</li>
	<li>颅骨取出后，立即将每个&#160;样本&#160;（本研究中来自 4 只动物的 7 个植入物）放置在单轴压缩装置的样品支架上，使骨的背侧朝上。</li>
	<li>以 0.5 mm/min 的速度降低冲头，直至轻微接触取出的植入物。</li>
	<li>通过数据采集软件以 0.5 mm/min 的恒定速度降低冲头，使冲头穿过植入物直至完全推出，从而启动测试。</li>
	<li>使用数据采集软件记录力-位移曲线上的峰值力。</li>
</ol>
12. 组织学分析细胞浸润和矿化： 体内 支架
<ol>
	<li>将提取的颅骨和植入物置于10%中性缓冲福尔马林中固定72小时，随后重悬于70%乙醇中保存。</li>
	<li>组织学： 
	注意：在本研究中，后续步骤中描述的所有组织学处理（包埋、切片和染色）均由Accel Labs（加拿大魁北克省蒙特利尔市）完成。
	<ol>
		<li>将样品（包埋于甲基丙烯酸甲酯中）在三个不同层面（顶部、底部及接近中心处）切成6 µm厚的切片，并贴附于显微镜载玻片上。</li>
		<li>使用H&amp;#38;E染色或Masson-Goldner三色染色（MGT）对切片进行染色。</li>
	</ol>
	</li>
	<li>使用载玻片扫描显微镜以40倍放大倍数对切片进行成像（本研究中包含来自2只动物的4个移植物样本）。</li>
	<li>利用ImageJ软件，通过视觉评估细胞浸润情况（H&amp;#38;E染色）和胶原沉积情况（MGT染色）。</li>
</ol>

Analyzing Cell-Seeded Decellularized Apple-Derived Scaffolds for Bone Tissue Engineering

<ol><li>Schmitz, J. P., Hollinger, J. O. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+critical+size+defect+as+an+experimental+model+for+craniomandibulofacial+nonunions%5BTitle%5D)+AND+%22Clinical+Orthopaedics+and+Related+Research%22%5BJournal%5D)">The critical size defect as an experimental model for craniomandibulofacial nonunions.</a> Clinical Orthopaedics and Related Research. 205, 299-308 (1986).</li>
<li>Yu, X., Tang, X., Gohil, S. V., Laurencin, C. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Biomaterials+for+bone+regenerative+engineering%5BTitle%5D)+AND+%22Advanced+Healthcare+Materials%22%5BJournal%5D)">Biomaterials for bone regenerative engineering.</a> Advanced Healthcare Materials. 4 (9), 1268-1285 (2015).</li>
<li>Parikh, S. N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Bone+graft+substitutes%3A+Past%2C+present%2C+future%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Postgraduate+Medicine%22%5BJournal%5D)">Bone graft substitutes: Past, present, future.</a> Journal of Postgraduate Medicine. 48 (2), 142-148 (2002).</li>
<li>Silber, J. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Donor+site+morbidity+after+anterior+iliac+crest+bone+harvest+for+single-level+anterior+cervical+discectomy+and+fusion%5BTitle%5D)+AND+%22Spine+%28Phila+Pa+1976%29%22%5BJournal%5D)">Donor site morbidity after anterior iliac crest bone harvest for single-level anterior cervical discectomy and fusion.</a> Spine (Phila Pa 1976). 28 (2), 134-139 (2003).</li>
<li>Amini, A. R., Laurencin, C. T., Nukavarapu, S. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Bone+tissue+engineering%3A+recent+advances+and+challenges%5BTitle%5D)+AND+%22Critical+Reviews+in+Biomedical+Engineering%22%5BJournal%5D)">Bone tissue engineering: recent advances and challenges.</a> Critical Reviews in Biomedical Engineering. 40 (5), 363-408 (2012).</li>
<li>Butler, D. L., Goldstein, S. A., Guilak, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Functional+tissue+engineering%3A+the+role+of+biomechanics%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Biomechanical+Engineering%22%5BJournal%5D)">Functional tissue engineering: the role of biomechanics.</a> Journal of Biomechanical Engineering. 122 (6), 570-575 (2000).</li>
<li>Karageorgiou, V., Kaplan, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Porosity+of+3D+biomaterial+scaffolds+and+osteogenesis%5BTitle%5D)+AND+%22Biomaterials%22%5BJournal%5D)">Porosity of 3D biomaterial scaffolds and osteogenesis.</a> Biomaterials. 26 (27), 5474-5491 (2005).</li>
<li>Bose, S., Roy, M., Bandyopadhyay, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Recent+advances+in+bone+tissue+engineering+scaffolds%5BTitle%5D)+AND+%22Trends+in+Biotechnology%22%5BJournal%5D)">Recent advances in bone tissue engineering scaffolds.</a> Trends in Biotechnology. 30 (10), 546-554 (2012).</li>
<li>Yoshikawa, H., Myoui, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Bone+tissue+engineering+with+porous+hydroxyapatite+ceramics%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Artificial+Organs%22%5BJournal%5D)">Bone tissue engineering with porous hydroxyapatite ceramics.</a> Journal of Artificial Organs. 8 (3), 131-136 (2005).</li>
<li>Fu, Q., Saiz, E., Rahaman, M. N., Tomsia, A. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Bioactive+glass+scaffolds+for+bone+tissue+engineering%3A+state+of+the+art+and+future+perspectives%5BTitle%5D)+AND+%22Materials+Science+%26+Engineering.+C%2C+Materials+for+Biological+Applications%22%5BJournal%5D)">Bioactive glass scaffolds for bone tissue engineering: state of the art and future perspectives.</a> Materials Science & Engineering. C, Materials for Biological Applications. 31 (7), 1245-1256 (2011).</li>
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<li>Venkatesan, J., Vinodhini, P. A., Sudha, P. N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Chitin+and+chitosan+composites+for+bone+tissue+regeneration%5BTitle%5D)+AND+%22Advances+in+Food+and+Nutrition+Research%22%5BJournal%5D)">Chitin and chitosan composites for bone tissue regeneration.</a> Advances in Food and Nutrition Research. 73, 59-81 (2014).</li>
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<li>Zhao, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Enhanced+healing+of+rat+calvarial+defects+with+sulfated+chitosan-coated+calcium-deficient+hydroxyapatite%2Fbone+morphogenetic+protein+2+scaffolds%5BTitle%5D)+AND+%22Tissue+Engineering.+Part+A%22%5BJournal%5D)">Enhanced healing of rat calvarial defects with sulfated chitosan-coated calcium-deficient hydroxyapatite/bone morphogenetic protein 2 scaffolds.</a> Tissue Engineering. Part A. 18 (1-2), 185-197 (2012).</li>
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<li><a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=%22tousimis+Critical+Point+Dryers+-+Samdri%C2%AE-PVT-3D%22">tousimis Critical Point Dryers - Samdri®-PVT-3D</a>. , https://tousimis.com/critical_point_dryers/detail.html?Pid=8755B (2022).</li>
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利益冲突声明：M.L.L、M.T、R.J.H.、C.M.C.、I.C. 和 A.P. 是由渥太华大学和 Spiderwort 公司提交的专利申请的发明人，这些专利申请涉及植物来源的纤维素在骨组织工程（BTE）中的应用。&#160;M.L.L.、R.J.H.、C.M.C. 和 A.P. 在 Spiderwort 公司拥有经济利益。

若干&#160;体外 和 体内 研究表明，植物来源的纤维素具有良好的生物相容性，并在组织工程中具有应用潜力14,15,16,18,19,20，更具体地说，用于支持成骨分化20,21本研究的目的是进一步探讨苹果来源的纤维素支架在骨组织工程（BTE）中的潜力，并评估这些支架的力学性能 体外 和 体内.
对于 体外 研究中，在去除苹果组织中的天然细胞后，将前成骨细胞（MC3T3-E1）接种于支架材料中。MC3T3-E1细胞常用于研究细胞外基质的生物矿化过程28,29,30支架随后在成骨分化培养基或非分化培养基中培养4周。结果表明，细胞在支架内增殖并发生分化，尤其是在分化培养基中培养时更为显著，从而凸显了源自苹果的纤维素支架支持骨组织发育的潜力。在支架孔隙中观察到大量细胞核，与先前研究报道的结果一致。14,15,16,17,20,21此外，与我们之前的研究结果相似14 另一组的那些21支架孔隙的平均直径为&#160;约154 µm，其中大多数孔径介于100 µm至200 µm之间（图1C）。这些尺寸与已知可促进骨生长的理想孔径范围（100–200 µm）相符7.
染色分析显示，在分化培养基中培养4周后，碱性磷酸酶（ALP）活性升高。在分化培养基中培养的接种细胞支架表面观察到更多的钙沉积。&#160;与空白支架以及接种细胞后培养的支架相比&#160;非分化培养基。在苹果来源的支架材料中培养的已分化 hiPSCs 也观察到了类似结果。21虽然本研究对碱性磷酸酶（ALP）的存在进行了定性评估，但仍可进行其他检测以实现定量分析。对支架材料的组织学评价进一步证实，浸润的成骨细胞在分化后使支架发生矿化。值得注意的是，培养构建物的周边区域在&#160;非分化培养基也用VK染色。残留的CaCl2 支架中的某些成分可能在脱细胞后导致了周边区域出现非特异性染色。为进一步评估矿化情况，对扫描电镜（SEM）图像进行了定性分析。培养后&#160;分化培养基中，接种细胞的支架显示出细胞外基质（ECM）矿化的迹象。支架表面可见矿化沉积物，尤其集中在孔隙边缘。这些观察结果与既往使用细胞外基质（ECM）的研究一致30 植物来源的支架材料21这些聚集体在未接种细胞的支架表面不存在。对聚集体进行的能谱分析（EDS）显示其中含有高水平的磷（P）和钙（Ca），提示存在磷灰石。需要注意的是，尽管本研究中描述的方案能够可视化细胞浸润和矿化现象的存在，但无法评估其随时间的进展过程。要全面评估这一进展，需在多个时间点进行组织学分析。此外，还需进一步分析以定量评估细胞浸润程度和矿化情况，不仅限于支架表面，还包括整个支架内部。最后，尽管矿化沉积物的元素组成已通过EDS测定，但仍可能需要其他表征技术（如X射线衍射，XRD）来提供有关所观察沉积物晶体结构的信息。
支架在培养后其杨氏模量显著升高&#160;分化培养基中的支架模量（约增加8倍）。相比之下，在非分化培养基中培养的支架其模量与空白支架（未接种细胞的支架）相近，这与先前关于苹果来源支架的研究结果相似。20. 尽管较高&#160;在分化培养基中培养的支架的杨氏模量仍远低于天然骨（松质骨为0.1至2 GPa，皮质骨为15至20 GPa）8，松质骨异体移植物（3.78 GPa）31由聚醚醚酮（3.84 GPa）制成的异体人工移植物31，钛（50.20 GPa）31，以及钴铬合金（53.15 GPa）31 植入物。因此，当前配方的支架可能不适用于承重应用。需要注意的是，杨氏模量可提供关于材料刚度的信息，但屈服强度也可作为参考，以更全面地理解支架的性能。&#160;机械性能
随后将脱细胞苹果支架植入大鼠双侧5毫米临界尺寸颅骨缺损中（n = 6只动物）。通过推出试验（对7个离体样本进行）评估支架与宿主颅骨的整合情况，结果显示平均峰值力为113.6 N ± 18.2 N，与先前报道的颅骨骨折载荷（127.1 ± 9.6&#8201;N）22相近，表明支架在&#160;周围骨组织中实现了良好整合。然而需要注意的是，推出试验仅能提供支架与周围组织界面的信息。既往研究已将推出试验与压痕试验相结合，以更全面地了解骨-植入物界面及支架本身的力学性能22。此外，双侧缺损模型更容易出现冲头对位不准的问题32。通过正确放置颅骨离体样本、采用单侧缺损模型或在万能试验机上增加夹紧系统，有望避免对位偏差32。
总之，本研究证实了苹果来源的纤维素支架能够促进前成骨细胞的黏附与增殖。此外，&#160;在分化培养基中培养的接种细胞支架内发生了矿化，导致支架的杨氏模量增加。然而，该模量&#160;显著低于天然骨组织。有趣的是，移除植入的苹果来源纤维素支架所需的力&#160;与颅骨的骨折载荷以及先前用于骨组织工程的其他类型支架相当22最后，与图中所示结果类似&#160;既往报道显示，细胞会浸润植入的支架并沉积胶原蛋白。总体而言，本研究证实了源自植物的纤维素支架在骨组织工程（BTE）应用中的潜力。这些发现与另一研究团队先前开展的研究结果一致，进一步佐证了植物来源纤维素支架适用于骨组织工程。21然而，支架刚度与松质骨或皮质骨之间的差异凸显了开发复合生物材料的重要性，这类材料能够更接近天然骨的力学性能。因此，尽管利用植物来源支架进行骨组织工程（BTE）的研究兴趣日益增加，其应用可能仍局限于非承重部位。正如我们先前所证实的16，重新设计&#160;通过化学修饰或与其他生物/合成聚合物复合来开发植物来源的纤维素支架，可能对承重应用至关重要。

由损伤或疾病引起的大型骨缺损通常需要生物材料移植来实现完全再生1。目前旨在改善骨组织再生的技术通常采用自体、同种异体、异种或合成移植材料2。自体骨移植被认为是修复大型骨缺损的&#160;&#34;金标准&#34;移植方法，其骨组织来源于患者自身。然而，这种移植手术存在多种局限性，包括骨块尺寸与形状受限、组织来源有限以及取骨部位的并发症3。此外，自体移植手术易发生手术部位感染、继发性骨折、取骨或重建部位血肿形成以及术后疼痛4。&#160;骨组织工程&#160;（BTE）为传统骨移植方法提供了一种潜在的替代方案5。该技术结合结构化生物材料与细胞，以构建新的功能性骨组织。在设计用于骨组织工程的生物材料时，关键在于整合大孔结构、促进细胞黏附的表面化学特性以及与天然骨组织相近的力学性能6。以往研究表明，用于骨组织工程的生物材料其理想孔径和弹性模量分别约为100–200 µm7和0.1–20 GPa，具体数值取决于移植部位8。此外，支架的孔隙率及孔间连通性是影响细胞迁移、营养物质扩散和血管生成的关键因素8。
在骨组织工程（BTE）领域，多种已开发和评估的生物材料作为骨移植替代方案展现出良好的应用前景。这些生物材料包括骨诱导性材料、杂化材料以及先进水凝胶8。骨诱导性材料可促进新骨结构的形成。杂化材料由合成和/或天然聚合物组成8。先进水凝胶能够模拟细胞外基质（ECM），并可递送必要的生物活性因子以促进骨组织整合8。羟基磷灰石是一种传统材料，因其组成成分和良好的生物相容性，常被用于BTE9。生物活性玻璃是另一类用于BTE的生物材料，已被证实可刺激特定细胞反应，激活成骨所必需的基因10,11。可生物降解聚合物，如聚乙醇酸（poly(glycolic acid)）和聚乳酸（poly(lactic acid)），也已在BTE中得到广泛应用12。此外，天然或来源于天然的聚合物，如壳聚糖、甲壳素和细菌纤维素，在BTE中也表现出令人鼓舞的效果13。然而，尽管合成与天然聚合物在BTE中均具有潜力，但要构建具有理想宏观结构的功能性支架，通常仍需复杂的制备流程。
相反，天然的宏观纤维素结构可轻松从多种植物中获得，我们研究团队此前已证明，源自植物的纤维素支架适用于不同的组织重建。事实上，经过简单的表面活性剂处理后，我们利用了植物材料的固有结构，突显其作为多功能生物材料的潜力14。此外，这些基于纤维素的支架可用于体外哺乳动物细胞培养应用14，具有良好的生物相容性，并可支持自发的皮下血管化14,15,16,17。我们研究团队及其他研究者均已证实，可根据预期用途从特定植物中获取此类支架14,15,16,17,18,19,20。例如，植物茎和叶中观察到的血管结构与动物组织中的结构表现出显著的相似性19。此外，源自植物的纤维素支架可轻易塑形，并可通过表面生化修饰以获得所需的特性16。在最近的一项研究中，我们在脱细胞过程中加入了盐缓冲液，从而在体外和体内环境中均观察到细胞黏附能力的增强16。在同一项研究中，我们通过在支架表面浇铸水凝胶，证明了植物源性纤维素支架在复合生物材料中的适用性。在近期的研究中，植物源性支架的功能化已被证明可增强其有效性18。例如，Fontana 等（2017年）的研究表明，经RGD涂层处理的脱细胞植物茎可支持人皮肤成纤维细胞的黏附，而未经涂层处理的茎则不具备此能力18。此外，作者还证明，可通过改良的模拟体液对脱细胞植物茎进行人工矿化。在更近的研究中，我们探讨了植物源性纤维素支架中力学敏感性成骨的可行性，并评估了其在&#160;BTE17,20中的潜力。此外，Lee 等（2019年）利用植物源性支架在体外环境中成功培养出类骨组织21。通过对不同植物来源的系统评估，作者发现苹果源性支架最适合人诱导多能干细胞（hiPSCs）的培养与分化。此外，作者&#160;提出，苹果源性支架的结构和力学特性在其适用性中起着关键作用。作为最早应用于组织工程的植物源性支架之一，苹果源性支架已被广泛证实其结构与人类骨组织极为相似，尤其是在孔径为100至200 µm的相互连通孔隙方面14,21。
在本研究中，我们进一步探讨了苹果来源的纤维素支架在骨组织工程中的应用潜力，并对其力学性能进行了分析 体外 和 体内尽管已有关于潜在性的研究&#160;苹果来源支架的&#160;BTE17,20,21，其力学性能尚未得到充分研究。结果表明，MC3T3-E1 前成骨细胞在支架中广泛侵入并发生成骨分化&#160;在分化培养基中培养4周。这些支架的杨氏模量为192.0 ± 16.6 kPa，该值为&#160;显著高于空白支架（未接种细胞的支架）的数值（31.6 ± 4.8 kPa）&#160;接种细胞的支架在培养中&#160;非分化培养基（24.1 ± 8.8 kPa）。然而需要注意的是，健康人骨组织的杨氏模量通常在松质骨中为0.1–2 GPa，皮质骨中约为15–20 GPa8然而，在大鼠颅骨缺损部位植入8周后，细胞接种支架与周围骨组织表现出良好的整合性，推出试验中平均峰值力为113.6 N ± 18.2 N，与既往报道的天然颅骨骨折载荷相近22总体而言，本研究获得的结果在非承重应用方面显示出显著前景。然而，目前苹果来源的纤维素支架尚不具备与植入部位周围骨组织精确匹配所需的力学性能。因此，仍需进一步开发以充分发挥这些支架的潜力。

<table><tbody><tr><td>4&amp;prime;,6-二脒基-2-苯基吲哚</td><td>ThermoFisher</td><td>D1306</td><td>DAPI</td></tr><tr><td>茜素红 S</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>A5533</td><td>ARS</td></tr><tr><td>抗坏血酸</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>A4403</td><td>细胞培养</td></tr><tr><td>氯化钙</td><td>ThermoFisher</td><td>AA12316</td><td>CaCl&lt;sub&gt;2&lt;/sub&gt;</td></tr><tr><td>卡乐氟白</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>18909</td><td></td></tr><tr><td>牙科钻头</td><td></td><td></td><td>手术工具</td></tr><tr><td>乙醇</td><td>ThermoFisher</td><td>615095000</td><td></td></tr><tr><td>胎牛血清</td><td>Hyclone Laboratories</td><td>SH30396</td><td>FBS</td></tr><tr><td>福尔马林</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>HT501128</td><td>10% 福尔马林</td></tr><tr><td>戈德纳三色染色液</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>1.00485</td><td>GTC</td></tr><tr><td>苏木精-伊红染色液</td><td>Fisher Scientific</td><td>NC1470670</td><td>H&amp;amp;E</td></tr><tr><td>高速共振共聚焦激光扫描显微镜</td><td>Nikon</td><td>Nikon Ti-E A1-R</td><td></td></tr><tr><td>盐酸</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>258148</td><td></td></tr><tr><td>ImageJ 软件</td><td>美国国立卫生研究院</td><td></td><td></td></tr><tr><td>灌洗用生理盐水</td><td>Baxter</td><td>JF7123</td><td>0.9% NaCl</td></tr><tr><td>MC3T3-E1 Subclone 4 细胞</td><td>ATCC</td><td>CRL-2593</td><td>前成骨细胞</td></tr><tr><td>麦克金托什苹果</td><td></td><td></td><td>加拿大特级品</td></tr><tr><td>甲基丙烯酸甲酯</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>M55909</td><td>组织学包埋</td></tr><tr><td>最低必需培养基</td><td>ThermoFisher</td><td>M0894</td><td>&amp;alpha;-MEM</td></tr><tr><td>多聚甲醛</td><td>Fisher Scientific</td><td>O4042</td><td>4%；PFA</td></tr><tr><td>青霉素/链霉素</td><td>Hyclone Laboratories</td><td>SV30010</td><td>细胞培养</td></tr><tr><td>过碘酸</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>375810</td><td></td></tr><tr><td>磷酸盐缓冲液</td><td>Hyclone Laboratories</td><td>2810305</td><td>PBS；不含 Ca&lt;sup&gt;2+&lt;/sup&gt; 和 Mg&lt;sup&gt;2+&lt;/sup&gt;</td></tr><tr><td>碘化丙啶</td><td>Invitrogen</td><td>p3566</td><td></td></tr><tr><td>扫描电子显微镜</td><td>JEOL</td><td>JSM-7500F FESEM</td><td>SEM 和 EDS</td></tr><tr><td>切片扫描显微镜</td><td>Zeiss</td><td>AXIOVERT 40 CFL</td><td></td></tr><tr><td>十二烷基硫酸钠</td><td>Fisher Scientific</td><td>BP166</td><td>SDS</td></tr><tr><td>亚硫酸氢钠</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>31448</td><td></td></tr><tr><td>磷酸钠</td><td>ThermoFisher</td><td>BP329</td><td></td></tr><tr><td>Sprague-Dawley 大鼠</td><td>Charles-River Laboratories</td><td>400</td><td>雄性</td></tr><tr><td>缝合线</td><td>Ethicon</td><td>J494G</td><td>4-0</td></tr><tr><td>环钻</td><td>ACE Surgical Supply Co</td><td>583-0182</td><td>5 mm 直径</td></tr><tr><td>曲拉通 X-100</td><td>ThermoFisher</td><td>807423</td><td></td></tr><tr><td>胰蛋白酶</td><td>Hyclone Laboratories</td><td>SH30236.02</td><td>细胞培养</td></tr><tr><td>吐温</td><td>Fisher Scientific</td><td>BP337</td><td></td></tr><tr><td>通用压缩装置</td><td>CellScale</td><td>UniVert</td><td></td></tr><tr><td>冯科萨染色</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>1.00362</td><td>组织学</td></tr></tbody></table>

脱细胞苹果来源支架在骨组织工程中的应用 体外 和 体内

Decellularized Apple-Derived Scaffolds for Bone Tissue Engineering In Vitro and In Vivo

植物来源的&#160;纤维素生物材料已被应用于多种组织工程领域。体内研究表明，来源于天然材料的纤维素支架具有显著的生物相容性。此外，这些支架具有适用于多种组织的结构特征，并能促进哺乳动物细胞的侵入和增殖。最近利用脱细胞化苹果花托组织的研究表明，其孔径大小与松质骨相似，&#160;并能有效支持成骨分化。本研究进一步&#160;探讨了苹果来源纤维素支架在骨组织工程（BTE）应用中的潜力，并评估了其体外和体内的力学性能。将MC3T3-E1前成骨细胞接种于苹果来源的纤维素支架中，随后&#160;评估其成骨潜能及力学性能。碱性磷酸酶和茜素红S染色证实，在成骨诱导培养基中培养的支架中发生了成骨分化。组织学检查显示细胞广泛侵入并出现支架内的矿化现象。扫描电子显微镜（SEM）观察到支架表面存在矿物聚集体，&#160;能量色散X射线光谱（EDS）&#160;进一步确认了磷酸根和钙元素的存在。然而，尽管细胞分化后杨氏模量显著增加，但仍低于健康骨组织的水平。体内研究显示，在大鼠颅骨植入8周后，脱细胞化的苹果来源&#160;支架中出现了细胞浸润及细胞外基质的沉积。此外，将支架从骨缺损处移除所需的力与先前报道的天然颅骨骨折载荷相近。总体而言，本研究证实苹果来源的纤维素是骨组织工程应用中一种具有前景的候选材料。然而，其力学性能与健康骨组织之间的差异可能限制其仅适用于低负荷承载场景。为进一步提升苹果来源纤维素支架在承重应用中的力学性能，可能需要进行额外的结构再设计与优化。

孔径测量、细胞分布和 体外 矿化图1 和 图2) 
经SDS和CaCl处理后，实现了苹果组织支架中天然细胞成分的完全去除2 (图1A）。支架呈现出高度多孔的结构，经共聚焦显微镜确认。图像定量分析显示平均孔径为 154 µm ± 40 µm孔径分布范围在 73 µm 和 288 µm然而，大多数孔径范围在 100 µm 和 200 µm (图1C).
在分化培养基中培养4周后，接种细胞的支架显示出广泛的白色矿物质沉积（图1A）。含有细胞的支架呈现不透明的白色，提示发生了矿化，而空白支架（未接种细胞的支架）则未观察到此现象。此外，共聚焦激光扫描显微镜分析显示，细胞在支架内呈均匀分布（图1B）。
无论是否接种细胞的支架均使用BCIP/NBT和ARS染色，以分别分析碱性磷酸酶（ALP）活性和矿化情况（图1D）。BCIP/NBT染色显示，在诱导分化培养基中培养的接种细胞支架内，ALP活性显著升高（表现为明显的紫色），相比之下，空白支架或在非诱导分化培养基中培养的接种细胞支架则无此现象。同样，在诱导分化培养基中培养的接种细胞支架经ARS染色后呈现更强烈的红色，表明其矿化程度高于空白支架或在非诱导分化培养基中培养的接种细胞支架。空白支架中观察到背景染色，可能源于脱细胞过程中使用的CaCl2。
对支架进行了染色（H&amp;E 和 VK 染色），以分析细胞浸润和矿化情况，并采用扫描电镜（SEM）和能谱分析（EDS）进一步评估矿化程度（图2）。H&amp;E 染色结果（图2A）显示，在未分化或成骨分化培养基中培养的接种细胞支架均表现出良好的细胞浸润，支架边缘及内部可见多个细胞核。此外，支架中还观察到呈淡粉色的胶原存在。另外，在成骨分化培养基中培养4周后对支架进行的 VK 染色显示，孔壁结构被染色；而在未分化培养基中培养的支架，钙沉积仅出现在孔壁的外缘，这可能是脱细胞处理过程中钙吸收所致。通过 SEM 分析观察到，在成骨分化培养基中培养4周的接种细胞支架表面存在局部矿化现象（图2B）。更具体而言，孔隙边缘可见类似球状聚集体的矿化沉积物。相比之下，在空白支架或在未分化培养基中培养4周的接种细胞支架上均未观察到矿化聚集体。EDS 谱图分析显示，在成骨分化培养基中培养4周的接种细胞支架上所观察到的矿化沉积区域（选定的兴趣区域）中，出现了明显的磷（P）和钙（Ca）特征峰（图2B）。
体外生物力学分析（图3） 
在非诱导分化或诱导分化培养基中培养4周后，测定接种细胞支架的杨氏模量（每种实验条件下n = 3）。并与空白支架（未接种细胞的支架）的杨氏模量进行比较（图3）。空白支架（31.6 kPa ± 4.8 kPa）与在非诱导分化培养基中培养的接种细胞支架（24.1 kPa ± 8.8 kPa；p = 0.88）之间的模量无显著差异。相比之下，空白支架（31.6 kPa ± 4.8 kPa）与在诱导分化培养基中培养的接种细胞支架（192.0 kPa ± 16.6 kPa；p &lt; 0.001）之间的模量存在显著差异。此外，在非诱导分化和诱导分化培养基中培养的接种细胞支架的杨氏模量之间也观察到显著差异（p &lt; 0.001）。补充图1展示了用于计算杨氏模量的典型应力-应变曲线。
体内生物力学性能与骨再生（图4 和 图5） 
共对6只Sprague-Dawley大鼠进行了开颅手术。使用环钻在颅骨双侧顶骨上制造直径为5 mm的缺损，并将未接种细胞的苹果来源纤维素支架植入颅骨缺损部位（图4A）。植入8周后，处死动物，取其颅骨上部组织，用于生物力学测试或组织学分析。
通过肉眼评估，支架似乎与颅骨周围组织整合良好。为定量评估支架在宿主颅骨中的整合情况（n = 7），进行了机械推出试验。动物安乐死后立即使用单轴压缩装置（图4B）进行测量。结果显示，最大作用力为113.6 N ± 18.2 N（表1）。
通过组织学分析评估植入支架内细胞浸润及细胞外基质沉积情况（图5）。苏木精-伊红（H&E）染色显示细胞已浸润至支架孔隙内，并观察到血管化的证据，表现为支架内存在血管结构。此外，马松三色（MGT）染色证实支架内有胶原蛋白沉积。
<img alt="利用显微镜图像、孔径大小直方图和染色结果对生物材料进行表征。" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/65226/65226fig1v2.jpg" data-altupdatedat="1788304762000" data-alt="图1"> 
图1支架图像、孔径分布和 体外 矿化。 (A) 分别展示去除天然细胞和表面活性剂后的苹果来源纤维素支架（左）以及接种MC3T3-E1细胞并在成骨分化培养基中培养4周后的支架（右）的代表性照片。比例尺为2 mm。 (B代表性共聚焦激光扫描显微镜图像，显示苹果来源的纤维素支架中接种的细胞在非分化培养基（“ND”）或成骨分化培养基（“D”）中培养4周后的生长情况。比例尺代表 50 µm对支架进行染色，使用碘化丙啶对纤维素（红色）染色，使用DAPI对细胞核（蓝色）染色。C) 脱细胞苹果来源的纤维素支架在接种MC3T3-E1细胞前的孔径分布，数据来自共聚焦图像z轴最大投影分析。该分析共检测了3个不同支架中54个孔（每个支架随机选取3个感兴趣区域，每个区域6个孔）。D用5-溴-4-氯-3'-吲哚磷酸盐与硝基蓝四氮唑盐（BCIP/NBT）染色支架的代表性图像，用于评估碱性磷酸酶（ALP）活性；以及用茜素红S（ARS）染色以显示钙沉积，指示矿化作用（比例尺 = 2 mm，适用于所有图像）。标记为“空白”（未接种细胞的支架）的支架在BCIP/NBT染色中无着色，表明无ALP活性。相反，在诱导分化培养基（“D”）中培养的接种细胞支架相较于在非分化培养基（“ND”）中培养的接种细胞支架显示出更高的ALP活性，表现为更明显的蓝色。在ARS染色中，空白支架和在非分化培养基（“ND”）中培养的支架均呈现出较浅的红色，而于分化培养基（“D”）中培养的支架则呈现强烈的深红色，表明存在钙沉积。每项分析均在三个不同的支架上进行（n = 3）。该图经Leblanc Latour（2023）许可改编27. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/65226/65226fig1v2large.jpg" target="_blank">请点击此处查看此图的放大版本。</a>
<img alt="组织学与扫描电镜分析；H&amp;E染色与VK染色结合EDX能谱分析；组织微结构研究" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/65226/65226fig02.jpg" data-altupdatedat="1788304762000" data-alt="图2"> 
图2组织学、扫描电子显微镜（SEM）和能谱分析（EDS） 体外 支架 (A) 支架顶部组织学横切面的代表性图像。将石蜡包埋的支架切成5-µm 经苏木精和伊红（H&E）染色的厚切片&amp;E）以可视化细胞浸润，或使用冯库萨（von Kossa, VK）染色以可视化支架内的矿化。支架中可见MC3T3-E1细胞浸润，表现为支架边缘及内部可见的蓝色（细胞核）和粉红色（细胞质）染色。胶原蛋白（浅粉色）亦清晰可见（“H”部分的放大插图）&amp;E - D”）。在非分化培养基（“ND”）中培养的支架中，矿化仅出现在孔壁边缘。而在分化培养基（“D”）中培养的支架，其孔壁完全呈黑色染色。该分析基于一个在非分化培养基（“ND”）中培养的支架和两个在分化培养基（“D”）中培养的支架进行（低倍镜图像比例尺 = 1 mm，高倍镜图像比例尺 = 50 µm). (B) 通过扫描电镜（SEM）获得的代表性显微照片及能谱（EDS）图谱。支架经溅射镀金处理后，使用场发射扫描电子显微镜在3.0 kV电压下成像（比例尺 = 100 μm - 适用于所有样本）。对每种支架材料均采集了EDS谱图，并在每张EDS谱图上标出磷（2.013 keV）和钙（3.69 keV）的特征峰。扫描电镜（SEM）和EDS分析均在三种不同的支架上进行。空白组：未接种细胞的支架。本图经Leblanc Latour（2023）许可改编。27. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/65226/65226fig02large.jpg" target="_blank">请点击此处以查看此图的放大版本。</a>
<img alt="杨氏模量图比较空白组、ND组和D组样品；带统计学显著性标注的柱状图。" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/65226/65226fig2v2.jpg" data-altupdatedat="1788304762000" data-alt="图3"> 
图3：杨氏模量 体外 在非分化培养基（“ND”）或分化培养基（“D”）中培养4周后的支架。 数据以每种条件下三个重复样本的均值 ± 均值标准误（SEM）表示。统计学显著性（* 表示 p&lt;使用单因素方差分析（ANOVA）和Tukey事后检验确定显著性差异（p < 0.05）。空白组：未接种细胞的支架。该图经Leblanc Latour（2023）许可改编。27. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/65226/65226fig2v2large.jpg" target="_blank">请点击此处以查看此图的放大版本。</a>
<img alt="组织操作装置示意图：用于结构分析的机械测试设备上的生物样本。" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/65226/65226fig04.jpg" data-altupdatedat="1788304762000" data-alt="图 4"> 
图 4：植入前支架照片及植入 8 周后的推出试验结果：（A）植入前支架的代表性照片；（B）用于推出试验的单轴压缩装置，其中载荷传感器由星号（*）标示，样本由箭头标示。本图经 Leblanc Latour（2023）许可改编27。<a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/65226/65226fig04large.jpg" target="_blank">请点击此处查看该图的放大版本。</a>
<img alt="组织学比较；H&amp;E 和 GTC 染色组织；显微镜放大图像；细胞细节。" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/65226/65226fig05.jpg" data-altupdatedat="1788304762000" data-alt="图5"> 
图5：组织学分析 体外 支架 植入8周后未接种支架的组织学横截面代表性图像。切片采用苏木精和伊红（H&amp;E）用于观察细胞，或采用马松-戈德纳三色染色（Masson-Goldner's trichrome, MGT）观察胶原。箭头指示红细胞。可见胶原的存在（比例尺 = 1 mm 且 200 μm （分别为左侧和右侧插图）。该图经 Leblanc Latour（2023）许可改编。27. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/65226/65226fig05large.jpg" target="_blank">请点击此处以查看此图的放大版本。</a>
<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always">
	<tbody>
		<tr>
			<td>样本编号</td>
			<td>峰值力 (N)</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>1</td>
			<td>92.8</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>2</td>
			<td>162.7</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>3</td>
			<td>140.3</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>4</td>
			<td>135.7</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>5</td>
			<td>37.7</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>6</td>
			<td>157.8</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>7</td>
			<td>67.9</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>平均值</td>
			<td>113.6</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>标准误 (SEM)</td>
			<td>18.2</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>
表1：推出试验测得的峰值力。
补充图1：用于计算杨氏模量的典型应力-应变曲线。 <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/65226/Supplementary%20Figure%201.jpeg" target="_blank">请点击此处下载该文件。</a>

在本研究中，我们详细描述了脱细胞化、物理表征、成像以及 体内 植物源性生物材料的植入，以及细胞在支架上的接种与分化方法。所述方法可用于评估植物源性生物材料在骨组织工程中的应用。

植物来源的纤维素生物材料已应用于多种组织工程领域。体内研究表明其具有显著的……

本研究的重点是评估苹果来源的纤维素支架在骨组织工程中的潜力，并在体外和体内评估其机械性能。研究涉及的问题包括支架的成骨潜能、支持细胞侵袭和矿化的能力，以及其机械性能。该研究领域的最新进展涉及利用来自多种植物的纤维素基支架进行组织重建。这些支架可被塑形和改性以获得期望的特性，并已采用功能化技术来增强其效能。本方案所解决的研究空白在于，针对苹果来源的纤维素在骨组织工程中力学性能的研究尚不充分。尽管先前的研究已探讨了此类支架的潜在应用，但其力学特性尚未得到深入系统的研究。本研究通过评估支架的机械性能，指出了其相较于健康骨组织的局限性，并强调了进一步开发以优化其性能的必要性。本研究的发现推动了该领域的研究进展，证实了来源于苹果的纤维素支架具有促进前成骨细胞黏附、成骨分化和增殖的潜力。在本研究基础上，可进一步提出如下问题：如何优化来源于植物的纤维素支架的机械性能，使其更接近或模拟天然骨组织的性能？可以采用化学修饰或复合策略来增强植物源性纤维素支架的刚性和承载能力，以用于骨组织工程应用。首先，使用切片机将麦金塔苹果切成八毫米厚的薄片。将苹果片的花托组织切成5毫米×5毫米的方块。将方形样品置于0.1% SDS中两天以进行脱细胞处理。孵育后，用去离子水洗涤样品，并在室温下用100毫摩尔氯化钙孵育过夜，然后将这些支架在70%乙醇中消毒30分钟。用去离子水洗涤后，将其放入24孔细胞培养板中。进行细胞接种时，使用在细胞培养条件下维持于直径10厘米的细胞培养处理皿中的MC3T3-E1亚克隆4细胞。同时准备一种细胞培养基，由添加了10%胎牛血清（FBS）和1%青霉素-链霉素的Alpha MEM组成。当细胞达到80%融合度时，通过胰酶消化法将其从培养皿上分离。将细胞悬液在200g下离心3分钟。吸除上清液，并将细胞重悬于Alpha MEM中。接着，用移液器将40微升细胞悬液滴加到支架表面，在细胞培养条件下孵育1小时，使细胞贴壁。随后，向每个培养孔中加入两毫升培养基。每两到三天更换一次培养基，持续14天。14天后，通过在细胞培养基中添加50微克/毫升的抗坏血酸和4毫摩尔的磷酸钠，制备分化培养基。将该培养基加入培养板中。将支架孵育四周以诱导MC3T3-E1细胞分化，并每隔三至四天更换一次培养基。首先，用磷酸盐缓冲液洗涤脱细胞苹果支架。进行孔径测量时，在避光、室温条件下，将支架材料置于1毫升10% Calcofluor White溶液中孵育25分钟。用PBS洗涤支架后，使用高速共振共聚焦激光扫描显微镜，并设置激光发射滤光片配置。手动调节激光功率和检测器，以确保获得最佳图像。以5微米的步长获取20张图像的Z轴层扫（Z-stack）。接着，在ImageJ软件中使用Z轴投影（Z Project）的最大强度投影功能生成图像，并应用“查找边缘”（Find Edges）功能以突出显示孔隙边缘。使用自由手选区（Freehand Selection）工具手动勾画孔隙轮廓。将每个孔拟合为膝部唇形，并测量其长轴长度。汇总所有测量数据并计算平均长度。对于细胞分布的分析，在使用PBS缓冲液将接种细胞并置于适当培养基中培养的支架洗涤三次后，用4%多聚甲醛固定10分钟。然后用去离子水彻底清洗每个支架，用 Triton X-100 溶液对细胞进行透化处理 5 分钟，再用 PBS 洗涤一次。将支架置于 1 毫升 1% 过碘酸溶液中孵育 40 分钟，随后用去离子水冲洗。接着将支架完全浸入 1 毫升染色液中进行孵育。用 PBS 清洗支架，并将支架置于 5 毫克/毫升的 DAPI 溶液中避光孵育 10 分钟，以染色细胞核。再次彻底清洗后，将支架保存在 PBS 中。使用此处所示设置，以 10 倍放大倍数通过高速共振共聚焦激光扫描显微镜对接种细胞的支架进行成像。手动调节激光功率和检测器，以确保获得最佳的图像采集效果，并采集步长为5微米、共20层的Z轴层扫图像。然后使用ImageJ软件处理共聚焦图像，通过Z轴投影的最大强度投影（maximum intensity projection）功能生成用于图像分析的Z轴最大强度投影图。共聚焦显微镜图像的定量分析显示，孔径分布范围为73至288微米，平均孔径约为154微米。大多数孔径在100至200微米之间。在分化培养基中培养后，观察到支架中出现矿化沉积物。接种细胞的支架呈现不透明的白色，提示发生了矿化，而空白支架中未观察到此现象。此外，共聚焦激光扫描显微镜分析显示，支架内细胞分布均匀。进行碱性磷酸酶检测和钙沉积检测时，先用 PBS 将在适当培养基中培养的接种细胞的苹果来源支架洗涤三次。用 10% 中性缓冲甲醛固定支架 30 分钟。进行碱性磷酸酶检测时，将一片BCIP/NBT染色片剂溶解于10毫升去离子水中，配制BCIP/NBT染色液。随后用0.05% Tween溶液洗涤固定后的支架，并在室温下用BCIP/NBT溶液染色20分钟。染色后再次用0.05% Tween溶液洗涤支架，并将其保存在PBS中。然后使用1200万像素的数码相机对染色后的支架进行成像。进行钙沉积检测时，配制2%（质量/体积）的茜素红S染色溶液。将固定后的支架用去离子水洗涤，再用茜素红S溶液在室温下染色1小时。用去离子水清洗染色后的支架，并在成像前将其保存在磷酸盐缓冲液（PBS）中。使用1200万像素的数码相机进行成像。为测定杨氏模量，需将接种细胞的支架从相应的培养介质中取出，并立即使用配备1.5牛顿力传感器的自制单轴压缩装置测试样品。以每分钟3毫米的恒定速率压缩支架，直至达到支架高度10%的最大压缩应变。根据应力-应变曲线线性部分的斜率确定杨氏模量。BCIP/NBT染色显示，在分化培养基中培养的接种细胞支架中，碱性磷酸酶活性显著高于空白组或非分化培养基培养的接种细胞支架。茜素红S染色结果类似，表明在分化培养基中培养的接种细胞支架具有更高的钙矿化程度。在分化培养基中培养的接种细胞支架的杨氏模量约为192.0千帕，显著高于空白组或非分化培养基培养的接种细胞支架，表明其刚性更高。

decellularized-apple-derived-scaffolds-for-bone-tissue-engineering

Research

科研

JoVE Journal

Bioengineering

生物工程

用于体外和体内骨组织工程的脱细胞苹果衍生支架

本文介绍一种制备具有纤维梯度排列的电纺纳米纤维支架的方案，并探讨其在调控细胞形态与取向中的应用。纳米纤维支架在物理和化学性质上的梯度特征在生物医学领域具有广泛的应用前景。...

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三维骨细胞外基质骨肉瘤模型

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