2023年6月2日
过氧化氢(H2O2)既是氧化损伤的来源,也是一种信号分子。本实验方案介绍了如何在活酵母细胞中利用线粒体靶向的基因编码比率型生物传感器 HyPer7(mtHyPer7)来检测线粒体内的 H2O2,并详细说明了如何优化成像条件,以及如何使用免费软件进行定量的细胞和亚细胞水平分析。
线粒体是细胞内的细胞器,参与能量动员、中心代谢、重要大分子的合成、钙离子储存以及信号转导。因此,线粒体在细胞功能、细胞适应性及寿命调控中发挥着关键作用。我们的研究聚焦于利用出芽酵母(Saccharomyces cerevisiae)作为模式生物,探究线粒体对衰老过程的影响。
活细胞成像技术是我们观察线粒体功能变异的最佳工具。本文介绍一种利用基因编码的、具有比率检测特性的光谱转移生物传感器——线粒体型HyPer 7(mtHyPer 7)的方法。mtHyPer 7可检测过氧化氢,后者是一种活性氧,既可能损伤细胞组分,也可在活细胞线粒体中作为信号分子发挥作用。
MtHyPer 7 对过氧化氢具有高亲和力,且对 pH 值的敏感性较低。它被整合到酵母基因组中,可在酵母细胞群体中实现稳定且一致的表达。最后,它可被定量靶向至线粒体,且对细胞或线粒体的功能及适应性无明显影响。
像 mtHyPer 7 这样的生物传感器对于在亚细胞分辨率下研究线粒体功能、发现线粒体质量控制背后的机制,以及探究该过程如何影响细胞适应性、命运和寿命至关重要。与用于活性氧检测的有机染料相比,mtHyPer 7 能够提供稳定的标记。相较于基于 FRET 的传感器,mtHyPer 7 更为紧凑,并避免了FRET所存在的问题,例如激发光串扰、信号渗漏,以及对供体与受体精确位置和取向的要求。
首先,取1 mL表达线粒体靶向HyPer 7的对数中期芽殖酵母细胞培养液。在6,000 G离心30秒,弃去上清液,管中保留10至20微升。使用微量移液器轻轻吹打残留培养基,重悬细胞沉淀。
接下来,使用气吹或无绒布清洁载玻片,并在载玻片上加入1.8 µL细胞悬液。最后,将1.5号盖玻片以倾斜角度缓慢盖上,避免产生气泡。然后将载玻片置于显微镜载物台上。
为了成像细胞,需设置采集参数,以确保每个荧光通道均具有可检测的信号和可接受的分辨率。例如,在配备 sCMOS 相机的转盘共聚焦显微镜上,可使用 2×2 像素合并,激光功率为 20% 至 40%,曝光时间为 200 至 600 毫秒。接着,检查图像的直方图。
在12位图像中,确保像素值的总动态范围至少达到数百个灰度级,且未出现饱和。此外,该范围应比噪声水平高一个数量级。为计算噪声水平,需测量图像中无细胞区域像素值的标准差。
然后在无时间间隔的情况下连续采集延时图像,以评估成像条件对线粒体信号稳定性和氧化应激的影响。使用显微镜采集软件或 ImageJ 测量每个荧光通道的平均像素值,以确保信号稳定。如果实验不涉及延时成像,则需确保在两到三次重复采集的 Z 层扫描中荧光信号保持稳定。
对于出芽酵母,以0.5微米的Z轴间隔和总共六微米的Z轴堆栈深度采集图像。若采集Z轴堆栈图像,需确保数据集中所有图像的Z轴间隔相同,并包含完整的细胞。同时,采集透射光图像以记录细胞边界。
首先,在 Fiji 中打开一个多通道 Z 层图像,并打开所需的生物传感器分析脚本文件。在脚本编辑器窗口中点击“运行”以执行脚本,然后在弹出的对话框中输入所需信息。
选择用于比率计算的分子和分母对应的通道编号。对于线粒体靶向的 HyPer 7,分子为在 488 纳米激发的通道,分母为在 405 纳米激发的通道。如果存在透射光图像,请选择其通道编号;若无透射光图像,则选择 0。
然后选择所需的背景扣除方法。如果背景均匀,单击“选择图像区域”以测量图像中的背景水平。随后,选择所需的噪声扣除方法,以减少检测器读出中的随机波动。
单击“选择图像区域”。选择“固定值”选项以输入先前测得的噪声水平,如果成像条件保持恒定,此方法通常效果良好。为了准确且一致地检测线粒体,请选择一种阈值分割算法,例如 O2 或最大熵算法。
对实验中的所有图像使用相同的算法,但需确保准确识别线粒体。然后选择每个细胞的感兴趣区域数量。例如,若测量母细胞与芽细胞的差异,则选择两个。
选择用于保存测量结果和比率图像的输出文件夹。如需进行背景或噪声校正,请选择“选择图像区域”,然后根据提示使用矩形 ROI 工具绘制背景区域,再点击“确定”。在分析单个细胞或亚细胞区域时,应基于明场图像绘制感兴趣区域。
ROI 无需精确匹配细胞轮廓,因为仅会测量 ROI 内经过阈值处理的线粒体。创建每个 ROI 后,按 T 键将选定的 ROI 添加到 ROI 管理器中。在 ROI 管理器中勾选“显示全部”,以记录已标记的细胞。
每个添加的区域将以编号项的形式显示在ROI管理器列表中。若对每个细胞分析多个ROI,请对所有待分析细胞以相同的顺序标记ROI。当所有目标ROI均添加至ROI管理器后,单击“标记细胞”对话框中的“确定”按钮。
接下来,选择测量表格式。在多测量对话框窗口中,勾选“测量所有切片”和“每个切片对应一行”选项,以生成所需格式的表格。使用 ProcessMultiROITables。
用于处理使用“每切片一行”选项创建的表格的 R 脚本。请勿勾选“追加结果”选项。使用该脚本将输出文件保存到所选文件夹中。
现在在 Fiji 中打开比率 Z-栈图像,以生成彩色的比率图像。然后打开 colorize_ratio_image.ijm 脚本文件,在脚本编辑器窗口中点击运行。
将弹出一个对话框,提示输入所需信息。在“未调制”选项中,所有线粒体像素均以相同的亮度显示。由于暗像素和亮像素均会对比值图像产生影响,某些图像可能看起来存在噪声。
使用强度调制选项以降低噪声。在最小值和最大值显示方法中,选择接近实验中观察到的平均最小值和最大值的数值。为确保一致性,应使用相同的成像条件采集所有图像,并使用相同的最小值和最大值显示所有图像。
然后选择投影模式以投影Z轴层叠图像,并在着色前显示完整的线粒体群体。若要生成最大强度投影,请选择“Maximum”;若要生成平均强度投影,请选择“Average”。
最后,选择用于保存着色图像的文件夹。如果选择了“未调制”选项,请在出现的对话框中选择一种配色方案。可使用 Fiji 内置的 Fire 或 Rainbow RGB 查找表,或其他任何以 ImageJ 的 LUT 格式提供的所需查找表。
使用该脚本将输出文件保存至所选文件夹。线粒体标记的 HyPer 7 的氧化还原比对外源添加的过氧化氢浓度呈剂量依赖性响应,在外源添加的过氧化氢浓度达到 1 至 2 毫摩尔时达到平台期。在酵母细胞内观察到线粒体过氧化氢水平的差异。
与母细胞相比,在芽中的线粒体检测到过氧化氢生物传感器信号显著降低。
本研究探讨了在芽殖酵母 Saccharomyces cerevisiae 中线粒体功能,重点关注过氧化氢(H2O2)作为损伤因子和信号分子的双重作用。通过使用一种基因编码的比率型生物传感器 mtHyPer7,研究人员描述了一种在活细胞中定量测定线粒体 H2O2 的方法。
对活酵母细胞中线粒体过氧化氢进行定量成像,可精确评估线粒体氧化还原状态,这是细胞健康和疾病建模的关键决定因素。mtHyPer7 生物传感器为氧化应激提供了可靠且可重复的检测信号,有助于在发现研究流程中进行早期靶点验证和机制性风险排除。该技术能力增强了与衰老、代谢紊乱及细胞质量控制相关的线粒体功能研究的预测可靠性。
mtHyPer7 成像工作流程整合了从早期发现到检测方法开发及临床前研究的全过程,支持以假设为导向的研究和转化连续性。